Программа контроля кампилобактериоза в птицеводческих хозяйствах

  МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ 

 

ДЕПАРТАМЕНТ ОБРАЗОВАНИЯ, НАУЧНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ 

ПОЛИТИКИ И РЫБОХОЗЯЙСТВЕННОГО КОМПЛЕКСА 

 

САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ  

УНИВЕРСИТЕТ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ 

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 

 
 

ПРОГРАММА КОНТРОЛЯ  
КАМПИЛОБАКТЕРИОЗА 

 В ПТИЦЕВОДЧЕСКИХ ХОЗЯЙСТВАХ 

 

Методические рекомендации 

 
 
 
 
 
 
 

 
 
 
 
 
 

 
 
 

Санкт-Петербург 

2021 

- 2 - 

 

УДК 616.98:579.843.1:636.5 

 

Авторы: 

Сухинин А.А. – профессор кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, 

ФГБОУ ВО СПбГУВМ, д.б.н.; 

Рождественская Т. Н. – заведующая лабораторией болезней птиц,  

ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН, д.в.н.; 

Смирнова Л.И. – доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии,  

ФГБОУ ВО СПбГУВМ, к.в.н.; 

Макавчик С.А. – доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии,  

ФГБОУ ВО СПбГУВМ, к.в.н.; 

Кузьмин В.А. – профессор кафедры эпизоотологии им. Урбана В.П.,  

ФГБОУ ВО СПбГУВМ, д.в.н.; 

Панкратов С.В. – ассистент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, 

ФГБОУ ВО СПбГУВМ, к.в.н.; 

Моисеева К.А. – аспирант кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии, 

ФГБОУ ВО СПбГУВМ; 

Приходько Е.И. – доцент кафедры микробиологии, вирусологии и иммунологии,  

ФГБОУ ВО СПбГУВМ, к.в.н. 

Рецензенты: 

Белова Л.М. – зав. кафедрой паразитологии им. В.Л. Якимова  

ФГБОУ ВО СПбГУВМ, д.б.н.; 

Данко Ю.Ю. – доцент кафедры эпизоотологии имени Урбана В.П.  

ФГБОУ ВО СПбГУВМ, д.в.н. 

 
 

Программа контроля кампилобактериоза в птицеводческих хозяйствах : мето-

дические рекомендации / А.А. Сухинин, Т.Н. Рождественская, Л.И. Смирнова,  
С.А. Макавчик, В.А. Кузьмин, С.В. Панкратов, К.А. Моисеева, Е.И. Приходько ; 
МСХ РФ, СПбГУВМ. – Санкт-Петербург : Изд-во СПбГУВМ, 2021. – 23 с. 

   
На основании литературных данных и результатов собственных исследова-

ний авторов представлены материалы по кампилобактериозу птиц, дана характеристика 
эпизоотологических и эпидемиологических особенностей. Освещены вопросы 
лабораторной диагностики, профилактики и мероприятий по контролю 
кампилобактериоза в птицеводческих и птицеперерабатывающих предприятиях, 
направленных на достижение эпидемиологического благополучия населения. Высокая 
степень инфицирования стада птиц C. jejuni обуславливает присутствие этих 
бактерий в разных видах птицеводческой продукции. Вследствие этого продукты 
из птицы считаются основным источником и фактором передачи возбудителей 
кампилобактериоза человеку.  

Новизной 
данных 
Методических 
рекомендаций 
является 
изучение 

биологических свойств и алгоритмов диагностики Campylobacter hepaticus, 
который является возбудителем пятнистой болезни печени у кур-несушек. 

Методические рекомендации предназначены для ветеринарных врачей и 

специалистов 
птицеводческих 
и 
птицеперерабатывающих 
предприятий. 

Методические рекомендации могут быть использованы для самостоятельной 
работы студентов по направлению подготовки 36.03.01 «Ветеринарно-санитарная 
экспертиза» (уровень бакалавриата), 06.03.01 «Биология» (уровень бакалавриата), 
36.05.01 «Ветеринария» (уровень специалитет).  

 

Рекомендовано для издания методическим советом ФГБОУ ВО СПбГУВМ  

Протокол № 9 от 13.12.21г.   

 

                                                   © ФГБОУ ВО СПбГУВМ, 2021 

- 3 - 

 

ВВЕДЕНИЕ 

 

Кампилобактериоз 
– 
зооантропонозная 
инфекционная 
болезнь 

сельскохозяйственных, домашних и диких птиц, животных и человека, 
вызываемая микроорганизмами рода Campylobacter, характеризующаяся 
различной степенью тяжести и полиморфностью проявлений.  

К 
возбудителям 
кишечного 
кампилобактериоза 
относятся 

термофильные бактерии рода Campylobacter, видов C. jejuni, C. coli, C. lari, 
C. upsaliensis и C. helveticus основным резервуаром которых являются дикие 
и 
домашние 
птицы, 
в 
первую 
очередь 
куры. 
Наибольшую 

эпидемиологическую значимость имеет C. jejuni, который вызывает 
основную часть (85–90 %) случаев кампилобактериоза у людей.  

Высокая 
степень 
инфицированности 
стада 
птиц 
C. 
jejuni 

обуславливает все более частое обнаружение этих бактерий в разных видах 
птицеводческой продукции. Как следствие, сырье и продукты из птицы 
считаются основным источником и фактором передачи возбудителей 
кампилобактериоза и представляют собой наибольший риск для здоровья 
человека, поскольку куриное мясо и яйцо в структуре питания населения 
занимают одно из доминирующих мест. 

По оценкам ВОЗ уже на протяжении многих лет одной из основных 

причин развития острых кишечных инфекционных болезней у людей 
зоонозной природы является кампилобактериоз, который в последнее время 
по распространѐнности превосходит сальмонеллезы.  

Значительная 
доля 
бактерионосительства 
C. 
jejuni 
среди 

птицепоголовья 
при 
нарушении 
системы 
ветеринарно-санитарных 

мероприятий в хозяйстве и на фоне других скрытых инфекций может 
наносить существенный экономический ущерб птицеводству за счет 
снижения яйценоскости, живой массы, падежа птицы и увеличения затрат 
на оздоровительные мероприятия. 

Как правило, система контроля распространения кампилобактериоза в 

птицеводческих хозяйствах и на птицеперерабатывающих предприятиях 
основана 
на 
использовании 
общих 
противоэпизоотических 
и 

противоэпизоотических 
мероприятий, 
что 
не 
всегда 
позволяет 

предотвратить инфицирование птицепоголовья, птицеводческой продукции 
и, соответственно, людей. В этой связи актуальным является разработка 
программы контроля кампилобактериоза в птицеводческих хозяйствах 
Российской 
Федерации 
с 
целью 
обеспечения 
эпидемиологического 

благополучия населения. 

 

ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ 

 

Возбудителями кампилобактериоза являются серповидно и спирально 

изогнутые подвижные хемоорганотрофные микроаэрофильные бактерии, 
принадлежащие к роду Campylobacter семейства Spirillaceae.  

- 4 - 

 

Некоторые виды объединяют подвиды и биовары. Вид C. jejuni вклю-

чает подвиды jejuni и doylei, вид C. sputorum – биовары sputorum, bubulus и 
fecalis. 

Несмотря на длительный период изучения, вопросы таксономии бак-

терий рода Campylobacter окончательно не решены. С одной стороны, постоянно 
расширяется перечень видов микроорганизмов, которые предлагается 
ввести в состав этого таксона, а с другой – отдельные виды, ранее принадлежавшие 
к роду Campylobacter, в настоящее время выделены в новые 
роды.  

Все микроорганизмы рода Campylobacter целесообразно разделить по 

наличию у них фермента каталазы на каталазонегативные, слабокатала-
зонегативные и каталазопозитивные. Этот принцип позволяет классифицировать 
Campylobacter по упрощѐнной схеме (рис. 1). 

 

 

Рисунок 1 - Дифференциальная диагностика рода Campylobacter  

по биохимическим свойствам. 

 

Каталазопозитивные Campylobacter можно разделить на две самостоя-

тельные нетаксоносмические группы – термофильные (термотолерантные) и 
нетермофильные. Отнесенные к группе термофильных Campylobacter: C. je-
juni, C. coli, C. laridis имеют наибольшее значение в патологии человека и 
наиболее часто выделяются от сельскохозяйственной и дикой птицы.  

Бактерии рода Campylobacter широко распространены среди живот-

ных и птиц. Вопрос о взаимосвязи отдельных видов Campylobacter с отдельными 
видами хозяев изучен ещѐ недостаточно. При этом известно, что абсолютной 
связи «вид Campylobacter – вид хозяев» не существует, определѐн-
ные микроорганизмы данного рода наиболее часто выделяются от нескольких 
видов животных. 

Изучение видов Campylobacter, выделяемых от птиц, показало, что из 

этих видов чаще всего встречаются C. jejuni, C. coli, C. laridis, C. hyointesti-
nales и C. hepaticus, которые имеют разную степень патогенности для людей 
и птиц. Так для людей патогенными являются C. jejuni и C. coli, а для птиц 
C. hepaticus. 

- 5 - 

 

C.  hepaticus является возбудителем пятнистой болезни печени у кур-

несушек. 

Пятнистая болезнь печени (Spotty Liver Disease, SLD) – острый, очаго-

вый некротический гепатит птиц, вызывающий смертность до 10 % стада и 
снижение яйценоскости на 10-15 %. Болезнь возникает в основном у кур при 
напольном содержании во время пика яйценоскости. 

Возбудителем очагового некротического гепатита признан термо-

фильный Campylobacter hepaticus, который впервые был изолирован от кур-
несушек с пятнистой болезнью печени в Великобритании (2015), в Австралии (
2016) и в Америке. 

Бактерии C. hepaticus очень прихотливы, медленно растут при первич-

ном выделении на средах, используемых для обычного культивирования 
Campylobacter. 

Представители рода Campylobacter семейства Spirillaceae имеют ха-

рактерную S-образную форму с одним витком или более.   Толщина клеток 
0,2-0,8 мкм, длина – 0,5-5 мкм и более. В мазках из патологического материала 
и из «молодых» культур бактерии часто располагаются попарно и напоминают 
крылья летящей чайки, спор и капсул не образуют, по Граму окрашиваются 
отрицательно.  

Campylobacter подвижны, обладают быстрым, винтообразным движе-

нием. Клетки имеют по одному полярному жгутику на одном или обоих 
концах. Жгутики могут быть в 2-3 раза длиннее клетки. По строению жгутики 
Campylobacter не имеют принципиальных отличий от жгутиков других 
грамотрицательных бактерий. Жгутик прикрепляется к телу бактериальной 
клетки в кратерообразном углублении, жгутиковые чехлы отсутствуют. 
Каждый жгутик состоит из нити, крючка и базального тельца, прикреплѐн-
ного к расположенному в толще клеточной стенки диску. 

Строение внешней клеточной мембраны подобно строению аналогич-

ного органоида у других грамотрицательных бактерий. Цитоплазматическая 
мембрана имеет характерные утолщения в полярных областях.  

Бактериям рода Campylobacter присущ дыхательный тип метаболизма. 

Они получают энергию из цикла трикарбоновых кислот и при расщеплении 
аминокислот. В качестве источника энергии используют аминокислоты и некоторые 
другие органические кислоты, но не могут утилизировать углеводы. Кислород 
необходим для их роста, однако в избыточном количестве он токсичен. 
Диапазон концентраций кислорода, в котором возможен рост Campylobacter, 
достаточно широк – от 3 до 15 %, но для большинства видов Campylobacter, по-
видимому, оптимальной является концентрация 3-6 %. Отдельные виды Cam-
pylobacter способны к росту в аэробных условиях, а некоторые виды растут как 
в микроаэрофильных, так и в анаэробных условиях. Чувствительность Campylo-
bacter к действию кислорода при росте на питательных средах зависит от посевной 
дозы и может быть в определѐнной мере преодолена путѐм еѐ увеличения.  

C. jejuni обладает выраженной устойчивостью к воздействию различ-

ных физико-химических факторов. При нагревании Campylobacter быстро 

- 6 - 

 

инактивируются (при нагревании до 60 °С гибель C. jejuni отмечается через 
61 секунду), при кипячении погибают через несколько секунд, при комнатной 
температуре сохраняются до 2 недель, в сене, воде, навозе - до 3 недель. 
Campylobacter устойчивы к низким температурам. При глубоком замораживании 
в культурах и желтковой суспензии микроорганизмы сохраняются от 
5 до 24 месяцев, при температуре +4 °С в инфицированной ткани и желчи – 
до 7 дней, при +25 °С сохраняется 12 дней. В замороженных тушах животных - 
несколько месяцев. Микроорганизмы способны длительно сохраняться 
и размножаться в пищевых продуктах при низких концентрациях содержащегося 
в них кислорода (продукты в герметичной оболочке). Из растворов 
хлористого натрия жизнеспособные C. jejuni выделяются более 14 суток. 

В помѐте птиц 50 % C. jejuni погибают через 10 часов, но некоторая 

часть может сохраняться до 16 часов.  

По уровню чувствительности к дезинфектантам Campylobacter близки 

к кишечным палочкам. Натрия гидрохлорид в концентрации 1,25 мг/л;  
0,15 % растворы фенольных соединений, йодоформ (10мг/л), 70 °С этиловый 
спирт, четвертичные аммонийные соединения (1:50000) и 0,125 % глу-
таровый альдегид вызывают гибель C. jejuni в течение 1 минуты. 

Campylobacter обладают полным набором факторов патогенности: ад-

гезивными, инвазивными и токсигенными свойствами. Способность к адгезии 
и инвазивная активность возбудителя имеет существенное значение в 
патогенезе, в начальной стадии развития патологического процесса. Адгезия 
определяет способность Campylobacter колонизировать всю поверхность 
тонкого и толстого кишечника. Инвазивная активность проявляется, прежде 
всего в подвижности Campylobacter, обуславливается работой жгутиков и 
способностью вырабатывать цитолитические экзотоксины, обеспечивающие 
проникновение Campylobacter в глубину эпителия, в котором они способны 
паразитировать. 

В кишечной стадии развития патологического процесса существенную 

роль играют токсины. Campylobacter обладают выраженными токсигенными 
свойствами: образуют термолабильный и термостабильный энтеротоксины.  

У птиц и животных генерализованную форму кампилобактериоза мо-

гут вызывать стресс-факторы. Одновременно возможно субклиническое 
бактерионосительство. У птиц это основной вид взаимоотношений между 
возбудителем и макроорганизмом. 

Campylobacter обладают сложным термолабильным и термостабиль-

ным антигенными комплексами. Клеточная стенка Campylobacter содержит 
эндотоксин, который выделяется при разрушении микробных клеток. Действие 
этого токсина напоминает действие эндотоксина сальмонелл и иерси-
ний; некоторые виды Campylobacter способны продуцировать энтеротоксин, 
действие которого напоминает действие токсина Vibrio cholerae, а также 
присущий исключительно Campylobacter цитотоксин уникального строения, 
воздействие которого на слизистую оболочку толстого кишечника человека 
приводит к изменениям дизентериеподобного характера. 

- 7 - 

 

ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ДАННЫЕ 

 

Бактерии рода Campylobacter распространены повсеместно. Основ-

ным биологическим резервуаром Campylobacter являются сельскохозяйственные, 
домашние, дикие животные и птицы. Существенное эпизоотологическое 
значение имеет среда, в которой обитают или содержатся 
животные и птицы. 

Инфицированные животные и птицы могут являться носителями Cam-

pylobacter в течение длительного времени без клинического проявления болезни. 


C. jejuni (или C. coli) были выделены почти у каждого вида обследо-

ванных теплокровных животных, включая экзотических животных и птиц в 
зоопарках. Особенно широко Campylobacter типа C. jejuni распространены 
среди птиц. Дикая птица является естественным биологическим резервуаром 
Campylobacter.  

Процент выделения Campylobacter от дикой птицы высокий, может 

достигать 70 и даже 90 %. Так, у чаек они выделены в 70 %, у ворон –  
в 90 %. Процент выделения был особенно высок у тех диких птиц, которым 
были доступны места свалок в городских районах.  

Географические ареалы обитания птиц создают естественные резерву-

ары накопления Campylobacter. Главным из таких резервуаров являются во-
доѐмы. 

Различные Campylobacter, включая C. jejuni и С. coli, могут быть вы-

делены из водоѐмов: озѐр, рек, ручьев и даже из морской воды у берега. Поскольку 
они всегда ассоциированы с фекальными колиморфными бактериями, 
то предполагается, что они происходят из кишечного тракта животных. 
Таким образом, потребление необработанной или недостаточно обработанной 
воды, приводит к возникновению инфекции у человека. Питьевая вода 
играет определѐнную роль в распространении кампилобактериоза среди 
промышленной птицы, возможно и в заносе возбудителя на птицефабрики, 
что зависит от чистоты используемого водного резервуара.  

Несмотря на высокую долю вероятности возникновения кампилобак-

териоза в птицеводческих хозяйствах вследствие использования некачественной 
воды, все же основная роль в возникновении кампилобактериоза 
на птицефабриках принадлежит грызунам. Кроты, мыши и крысы являются 
естественным биологическим резервуаром и загрязняют внешнюю среду – 
подстилку, кормушки и другие объекты, выделяя Campylobacter. Носитель-
ство Campylobacter у крыс установлено более чем в 35 %. 

По данным разных авторов при исследовании помѐта различных видов 

сельскохозяйственной птицы выделение термофильных Campylobacter 
наблюдается в 10 – 100 % случаях. 

Разный процент выделения Campylobacter объясняется тем, что инфи-

цированность Campylobacter зависит от эпизоотической ситуации в каждом 
конкретном хозяйстве.  

- 8 - 

 

Тем не менее, приведѐнные данные показывают, что как дикая, так и 

сельскохозяйственная птица являются наиболее значимым биологическим резервуаром, 
представляющим наибольшую эпидемиологическую опасность. 

Термофильные Campylobacter часто являются безвредными комменса-

лами пищеварительного тракта сельскохозяйственных животных и птиц. 

В большинстве случаев C. jejuni являются сапрофитами, и их обнару-

живают в кишечном тракте птиц, не имеющих клинических признаков болезни. 
Однако, попадая в организм животных или человека, он может вызывать 
кампилобактериоз. 

 

ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКАЯ ОПАСНОСТЬ  

ПРОДУКТОВ ПТИЦЕВОДСТВА 

 

Мясо домашней птицы считается одним из основных факторов пере-

дачи возбудителей, а домашние куры в условиях промышленного птицеводства – 
как важный резервуар инфекции, что связано с высокими показателями 
их инфицированности и особенностями переработки, не позволяющими 
получить эпидемиологически безопасную продукцию. 

Особая опасность циркуляции C. jejuni в стадах птицы обусловлена 

способностью этого микроорганизма вызывать болезнь у человека.  Существуют 
по крайней мере два пути передачи C. jejuni от птицы людям: это 
прямое заражение персонала птицеводческих хозяйств и перерабатывающих 
предприятий при контакте с инфицированной птицей и употребление в пищу 
недостаточно термически обработанных продуктов птицеводства.   

Важным звеном при контаминации птицеводческой продукции раз-

личными видами Campylobacter являются птицеперерабатывающие предприятия. 
На птицеперерабатывающие предприятия Campylobacter заносятся 
с инфицированной птицей, что в дальнейшем приводит к обсеменению оборудования, 
рабочих поверхностей и сточных вод. Наличие C. jejuni на тушках 
цыплят значительно уменьшается в процессе их шпарки при температуре 
58 °С и выше, но повышаются при ощипке, потрошении и сборе потрохов. 
Повторное снижение заражения тушек наблюдается при погружном 
охлаждении в ваннах охлаждения. Потрошение особенно важная операция с 
точки зрения заражения тушек и обусловливает перекрѐстное заражение. 
Это происходит вследствие разрывов кишечника и попадания на тушки его 
содержимого. Кроме того, Campylobacter нередко присутствуют в субпродуктах, 
в том числе сердце и печени. Хотя уровни заражения Campylobacter 
конечного продукта невысоки, они тем не менее потенциально опасны для 
человека, особенно если продукт изготовлен и упакован при недостаточно 
строгом гигиеническом контроле, недостаточно проварен или прожарен, соприкасался 
с полуфабрикатами, не прошедшими тепловой обработки. 

Приведѐнные данные свидетельствуют о недостатках современных 

способов убоя и послеубойной обработки, которые способствуют микробной 
обсеменѐнности птицепродуктов. 

- 9 - 

 

 К дополнительной контаминации на конечном этапе технологи-

ческого процесса приводит бактериальное загрязнение рук рабочих, 
осуществляющих сортировку, упаковку готовой продукции. Недостаточно 
очищенная тара, в которую упаковывается птица, также может служить 
источником вторичного обсеменения тушек. 

 

ДИАГНОСТИКА 

 

Диагноз на кампилобактериоз у птиц ставят на основании эпизоотоло-

гических данных и лабораторных исследований.  

Лабораторные методы диагностики кампилобактериоза птиц включа-

ют в себя бактериологическое исследование (культивирование и изучение 
биохимических свойств, выделенных изолятов Campylobacter) и молекулярно-
генетические исследование.  

Для диагностики кампилобактериоза птиц используют смывы с яиц и 

из клоаки, пробы помета, слизистую оболочку кишечника, отходы инкубации, 
трупы цыплят и нежизнеспособных цыплят. 

Посев материала, предназначенного для исследования на Campylobac-

ter, должен быть осуществлѐн без промедления. Для взятия смывов следует 
использовать стерильные зонд-тампоны в комплекте с пробирками. При 
необходимости транспортировки предварительно в промаркированные пробирки 
асептически вносят по 5 см3 транспортную среду типа Cary-Blair. 

После взятия смыва каждый зонд-тампон следует быстро погрузить в 

пробирку с средой, избегая встряхивания. Полученные пробы предпочтительно 
помещать в стерильные герметичные пакеты с газогенерирующими 
агентами для Campylobacter согласно инструкции. 

При необходимости транспортировки проб помета, превышающей 

один час с момента забора, следует применять пробирочные транспортные 
среды: физиологический раствор хлористого натрия (срок хранения материала 
при комнатной температуре - 3-5 часов), тиогликолевую среду (до 3 суток). 
В любую из перечисленных транспортных сред, разлитую по пробиркам 
в объѐме 4,0-5,0 мл, помещают навеску помѐта массой 0,5 г. Охлаждение 
до 4 °С позволяет удлинить сроки транспортировки образцов в транспортных 
средах в 2-3 раза.  

Доставку проб в лабораторию для исследования проводят в макси-

мально короткие сроки. 

Для культивирования Campylobacter необходимо использовать специ-

альные питательные среды, в основу которых должны входить среды для 
выделения бруцелл. Однако в эти среды необходимо добавлять вещества, 
повышающие аэротолерантность Campylobacter и снижающие окислительно-
восстановительный потенциал среды. Необходимо добавлять кровь, а 
также одно или несколько соответствующих химических веществ, например, 
сульфат закисного железа, метабисульфит натрия, пируват натрия, тио-
гликолат натрия. Благодаря этим добавкам Campylobacter приобретают спо-

- 10 - 

 

собность расти при концентрации кислорода 15-20 %. Также используют 
смеси антибиотиков, подавляющих весь спектр сопутствующей микрофлоры. 
Оптимальной средой для выделения Campylobacter является кровяно-
угольный эритрит агар с селективными добавками. Однако при культивировании 
C. avium или C. hepaticus следует учитывать их чувствительность к 
ряду противомикробных препаратов (например, к цефоперазону), используемых 
в селективных средах для других видов Campylobacter. 

Бактериоскопический метод диагностики основан на выявлении в 

препарате клеток микроорганизмов с характерной морфологией либо клеток 
с характерной морфологией в сочетании с активной подвижностью. Для этого 
применяют бактериоскопию мазков, окрашенных фуксином, либо изучают 
препараты в фазово-контрастном или тѐмнопольном микроскопе. 

 Микроскопия мазков 
Из типичных колоний готовят мазки, фиксируют термическим спосо-

бом и окрашивают фуксином Циля, разведенным 1:5. 

 КОН-тест 
Учитывая плохую прокрашиваемость Campylobacter, этот тест может 

быть рекомендован вместо окраски по Граму. На предметное стекло наносится 
капля 3 % КОН, в которой суспендируют в течение 30 сек полную 
петлю исследуемой культуры. Грамотрицательные микроорганизмы при 
этом разрушаются с выходом нуклеиновых кислот, что делает содержимое 
капли вязким. 

Культурально-биохимические свойства 
При дифференциации бактерий рода Campylobacter важна постановка 

температурного теста. Она возможна как на плотной, так и на полужидкой 
среде, причем последняя более предпочтительна. Посев культуры 
осуществляют в столбик полужидкого агара в 3 пробирки, после чего одну 
инкубируют при 25 °С, вторую - при 37 °С, а третью - при 43 °С. Инкубацию 
осуществляют в аэробных или микроаэрофилъных условиях в течение 48 ч. 
При использовании для осуществления температурного теста плотной среды 
посевы обязательно инкубируют в микроаэрофильных условиях. 

Термофильные бактерии рода Campylobacter не способны к росту при 

температуре 25 °С. 

На практике для культивирования Campylobacter, как правило, ис-

пользуют питательные среды, богатые частично расщеплѐнным белком. 
Разработаны синтетические питательные среды для культивирования этих 
микроорганизмов. В их состав входят аминокислоты (аргинин, серин, лейцин, 
изолейцин, валин), другие факторы роста (НАД, кальция пантотенат) и 
минеральные соли  

C. sputorum на кровяном агаре образуют сероватые, блестящие, глад-

кие, округлые колонии с тонкими неправильной формы краями. Диаметр 
колоний 1-2 мм. Некоторые варианты способны давать слабый альфа-
гемолиз. На жидких питательных средах дают лѐгкое равномерное помутнение. 
На полужидком агаре дают лѐгкое помутнение в верхней трети среды.