Руководство к практическим занятиям по патофизиологии

Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова 

Биологический факультет МГУ

РУКОВОДСТВО 

К ПРАКТИЧЕСКИМ ЗАНЯТИЯМ 

ПО ПАТОФИЗИОЛОГИИ 

Учебное пособие для студентов III курса 

биологического факультета МГУ имени М.В. Ломоносова, 

обучающихся по программе бакалавриата

Под редакцией 

А.А. Каменского и О.С. Тарасовой

Товарищество научных изданий КМК

Москва  2022

УДК [616-092+619](076.5)
ББК 52.52я73-5+48.3я73-5     
.        Р85

 
Руководство к практическим занятиям по патофизиологии : учебное пособие / 
под ред. А.А. Каменского и О.С. Тарасовой. – М.: Т-во научных изданий  КМК, 
2022. – 180 с. – ISBN 978-5-907533-45-5.

 

В этом учебном пособии представлены описания экспериментальных работ, пред-

назначенных для практического закрепления лекционных курсов по патофизиологии, 
а также общей и частной физиологии человека и животных, читаемых для студентов 
3-го курса бакалавриата на биологическом факультете МГУ имени М.В. Ло моносова. 
Программа занятий и подбор задач позволяют получить общее представление о 
механизмах патогенеза основных социально значимых заболеваний человека. Руководство 
необходимо для проведения учебных практических занятий на кафедре 
физиологии человека и животных, согласно учебному плану, а также будет полезным 
студентам естественных факультетов университетов и медицинских вузов при 
самостоятельной подготовке к занятиям по нормальной физиологии человека и животных 
и патофизиологии. Задачи, предлагаемые в данном пособии, также могут 
быть использованы для организации практических занятий по этим дисциплинам 
преподавателями вузов биологического, медицинского, педагогического, психологического, 
экологического, ветеринарного профиля.

Редакторы: 
А.А. Каменский — доктор биологических наук, профессор, заведующий кафе-

дрой физиологии человека и животных МГУ имени М.В. Ломоносова

О.С. Тарасова — доктор биологических наук, профессор кафедры физиологии 

человека и животных МГУ имени М.В. Ломоносова

Авторы (сотрудники кафедры физиологии человека и животных биологиче-

ского факультета МГУ имени М.В. Ломоносова): 

Аббасова К.Р. к.б.н., доц; Андреев-Андриевский А.А. к.б.н., с.н.с.; Артемьева 

М.М. к.б.н., н.с.; Богачева П.О. к.б.н., доц.; Балезина О.П. д.б.н., проф.; Глазова 
Н.Ю. к.б.н., с.н.с.; Граф А.В. к.б.н., доц.; Гусева А.А. к.б.н., доц.; Левицкая Н.Г. 
д.б.н., с.н.с.; Ловать М.Л. к.б.н., в.н.с.; Крушинская Я.В. к.б.н., с.н.с.; Кузьмин 
В.С. к.б.н., доц; Кушнир Е.А. к.б.н., вед. инж.; Маклакова А.С. к.б.н., с.н.с.; Ман-
ченко Д.М. к.б.н., с.н.с.; Маслова М.В. к.б.н., с.н.с.; Себенцова Е.А. к.б.н., с.н.с.; 
Селиванова Е.К. к.б.н., м.н.с.; Соколова Н.А. д.б.н., проф.; Тарасова О.С. д.б.н., 
проф.; Фадюкова О.Е. к.б.н., ст. преп.; Хиразова Е.Э. к.б.н., асс.; Цыба Е.Т., асп.

© Коллектив авторов, 2022.
© ООО «Товарищество научных 
изданий КМК», издание, 2022.

ISBN 978-5-907533-45-5

Содержание

ВВЕДЕНИЕ ...................................................................................................................7

Общие цели практикума по патофизиологии .........................................................7
Этические нормы обращения с лабораторными грызунами при выполнении 
практических задач ...................................................................................................8

Основные принципы .............................................................................................8
Содержание грызунов ...........................................................................................9
Классификация процедур по тяжести, оценка состояния животных .............12
Манипуляции с животными. ..............................................................................13
Рекомендованная литература ..............................................................................22

Правила техники безопасности при работе на практических занятиях.............23
Оформление отчетов по практическим задачам ..................................................27

РАЗДЕЛ 1. РОЛЬ ДОФАМИНОВОЙ СИСТЕМЫ ГОЛОВНОГО МОЗГА 
В РЕГУЛЯЦИИ ДВИГАТЕЛЬНОЙ АКТИВНОСТИ ...............................................30

Регуляция движений тела .......................................................................................30
Рецепторы дофамина: классификация, агонисты и антагонисты .......................35
Вопросы теоретической подготовки .....................................................................37
Рекомендованная литература .................................................................................38

ЗАДАЧА 1. ИЗМЕНЕНИЯ ПОВЕДЕНИЯ БЕЛЫХ КРЫС ПОД ВЛИЯНИЕМ 
ГАЛОПЕРИДОЛА .......................................................................................................39

Цель работы .............................................................................................................39
Объект исследования ..............................................................................................39
Материалы и оборудование ....................................................................................39
Ход работы ...............................................................................................................42
Анализ и обсуждение результатов .........................................................................43

РАЗДЕЛ 2. ТОКСИЧЕСКОЕ ДЕЙСТВИЕ ЭТАНОЛА. ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ 
ЭФФЕКТОВ ЭТАНОЛА И ФАРМАКОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ ..............45

Метаболизм и токсичность этанола ......................................................................45
Механизмы биологических эффектов этанола .....................................................47
Вопросы теоретической подготовки .....................................................................50
Рекомендованная литература .................................................................................50

ЗАДАЧА 2. ВЛИЯНИЕ ФАРМАКОЛОГИЧЕСКИХ ПРЕПАРАТОВ НА 
ИЗМЕНЕНИЯ ПОВЕДЕНИЯ ЖИВОТНЫХ, ВЫЗВАННЫЕ ЭТАНОЛОМ .........51

Цель работы .............................................................................................................51
Объект исследования ..............................................................................................51
Материалы и оборудование ....................................................................................51
Ход работы ...............................................................................................................51
Анализ и обсуждение результатов .........................................................................55

РАЗДЕЛ 3. ЭПИЛЕПСИЯ ...........................................................................................57

Классификация эпилептических припадков .........................................................57
Фармакологическое лечение эпилепсии ...............................................................58
Экспериментальные модели эпилепсии на животных. Пентилентетразоловая 
модель .......................................................................................................................59
Вопросы теоретической подготовки .....................................................................61
Рекомендованная литература .................................................................................62

ЗАДАЧА 3. РЕГИСТРАЦИЯ ИНДУЦИРОВАННЫХ ПЕНТИЛЕНТЕТРАЗОЛОМ
МОТОРНЫХ СУДОРОГ У КРЫС ............................................................................63

Цель работы .............................................................................................................63
Объект исследования ..............................................................................................63
Материалы и оборудование ....................................................................................63

Содержание

Ход работы ...............................................................................................................65
Анализ и обсуждение результатов .........................................................................65

РАЗДЕЛ 4. ДЕНЕРВАЦИОННО-РЕИННЕРВАЦИОННЫЙ СИНДРОМ 
В СКЕЛЕТНОЙ МУСКУЛАТУРЕ .............................................................................66

Общая характеристика денервационно-реиннервационного синдрома .............66
Влияние аксотомии на нейроны ............................................................................66
Влияние аксотомии на скелетную мышцу ............................................................68
Функциональные особенности новообразованных моторных синапсов ...........73
Вопросы теоретической подготовки .....................................................................74
Рекомендованная литература .................................................................................75

ЗАДАЧА 4.1. ПРОВЕДЕНИЕ ОПЕРАЦИИ ПО ДЕНЕРВАЦИИ 
СКЕЛЕТНОЙ МЫШЦЫ МЫШИ ПУТЕМ ПЕРЕДАВЛИВАНИЯ НЕРВА ..........76

Цель работы .............................................................................................................76
Объект исследования ..............................................................................................76
Материалы и оборудование ....................................................................................76
Расположение нерва и мышцы в задней конечности мыши ...............................76
Ход работы ...............................................................................................................77
Анализ и обсуждение результатов .........................................................................79

ЗАДАЧА 4.2. МИКРОЭЛЕКТРОДНАЯ РЕГИСТРАЦИЯ СПОНТАННОЙ 
АКТИВНОСТИ НОВООБРАЗОВАННЫХ МОТОРНЫХ СИНАПСОВ МЫШИ .....80

Цель работы .............................................................................................................80
Объект исследования ..............................................................................................80
Материалы и оборудование ....................................................................................80
Приготовление нервно-мышечного препарата .....................................................81
Ход работы ...............................................................................................................83
Анализ и обсуждение результатов .........................................................................84

РАЗДЕЛ 5. МОДЕЛИ ОЦЕНКИ БОЛЕВЫХ РЕАКЦИЙ У ГРЫЗУНОВ ...............87

Понятие боли и ноцицепции. Методики тестирования болевой 
чувствительности ....................................................................................................87
Вопросы теоретической подготовки .....................................................................88
Рекомендованная литература: ................................................................................89

ЗАДАЧА 5.1. ИЗМЕРЕНИЕ БОЛЕВОЙ РЕАКЦИИ С ПОМОЩЬЮ ТЕСТА 
ГОРЯЧЕЙ ПЛАСТИНЫ (HOT-PLATE) ....................................................................90

Цель работы: ............................................................................................................90
Объект исследования: .............................................................................................90
Материалы и оборудование: ...................................................................................90
Подготовка к эксперименту: ...................................................................................91
Ход работы ...............................................................................................................91
Анализ и обсуждение результатов .........................................................................93

ЗАДАЧА 5.2 ИЗМЕРЕНИЕ ОСТРОЙ БОЛИ С ПОМОЩЬЮ ТЕСТА 
ОТДЕРГИВАНИЯ ХВОСТА (TAIL-FLICK) ............................................................95

Цель работы .............................................................................................................95
Объект исследования ..............................................................................................95
Материалы и оборудование ....................................................................................95
Подготовка к эксперименту ....................................................................................96
Ход работы ...............................................................................................................96
Анализ и обсуждение результатов .........................................................................97

ЗАДАЧА 5.3. МОДЕЛИРОВАНИЕ И ОЦЕНКА СТОЙКОЙ БОЛИ 
С ПОМОЩЬЮ ФОРМАЛИНОВОГО ТЕСТА .......................................................100

Цель работы ...........................................................................................................100
Объект исследования ............................................................................................101
Материалы и оборудование ..................................................................................101

Содержание

Подготовка к работе ..............................................................................................101
Ход работы .............................................................................................................102
Анализ и обсуждение результатов .......................................................................104

ЗАДАЧА 5.4. МОДЕЛИРОВАНИЕ И ОЦЕНКА ВИСЦЕРАЛЬНОЙ БОЛИ 
С ПОМОЩЬЮ ТЕСТА «КОРЧИ» ..........................................................................106

Цель работы ...........................................................................................................106
Объект исследования ............................................................................................106
Материалы и оборудование ..................................................................................106
Ход работы .............................................................................................................107
Анализ и обсуждение результатов .......................................................................107

РАЗДЕЛ 6. ВОСПАЛЕНИЕ ......................................................................................109

Механизмы развития воспалительной реакции .................................................109
Использование модели отека лапы для изучения механизмов воспаления ..... 112
Вопросы теоретической подготовки: .................................................................. 113
Рекомендованная литература ............................................................................... 113

ЗАДАЧА 6. ИССЛЕДОВАНИЕ МЕХАНИЗМОВ ОСТРОГО ВОСПАЛЕНИЯ 
НА ПРИМЕРЕ МОДЕЛИ ВОСПАЛИТЕЛЬНОГО ОТЕКА ЛАПЫ .................... 114

Цель работы ........................................................................................................... 114
Объект исследования ............................................................................................ 114
Материалы и оборудование .................................................................................. 114
Подготовка к работе .............................................................................................. 114
Методика измерения объема лапы ....................................................................... 115
Ход работы ............................................................................................................. 116
Анализ и обсуждение результатов ....................................................................... 118

РАЗДЕЛ 7. ИНФАРКТ МИОКАРДА .......................................................................121

Электрокардиография: применение в медицине и в эксперименте .................121
Вопросы теоретической подготовки ...................................................................125
Рекомендованная литература: ..............................................................................127

ЗАДАЧА 7. ИССЛЕДОВАНИЕ ИЗМЕНЕНИЙ ЭКГ У КРЫС ПРИ 
МОДЕЛИРОВАНИИ ИНФАРКТА МИОКАРДА ПУТЕМ ПЕРЕВЯЗКИ 
ЛЕВОЙ КОРОНАРНОЙ АРТЕРИИ ........................................................................128

Цель работы: ..........................................................................................................128
Объект исследования: ...........................................................................................128
Материалы и оборудование: .................................................................................128
Ход работы .............................................................................................................129
Анализ и обсуждение результатов .......................................................................131

РАЗДЕЛ 8. ВЕГЕТАТИВНЫЕ НАРУШЕНИЯ ПРИ ОСТРОЙ ГИПОКСИИ ......135

Виды гипоксии и механизмы ее повреждающего влияния ...............................135
Показатели вариабельности ритма сердца и их физиологическая 
интерпретация .......................................................................................................137
Вопросы теоретической подготовки: ..................................................................139
Рекомендованная литература ...............................................................................139

ЗАДАЧА 8. АНАЛИЗ УЧАСТИЯ СИМПАТИЧЕСКОЙ И 
ПАРАСИМПАТИЧЕСКОЙ СИСТЕМ В РЕГУЛЯЦИИ РИТМА СЕРДЦА 
В ОТВЕТ НА ОСТРУЮ ГИПОКСИЮ ................................................................140

Цель работы ...........................................................................................................140
Объект исследования ............................................................................................140
Материалы и оборудование ..................................................................................140
Моделирование острой гипобарической гипоксии (ОГГ) .................................140
Регистрация электрокардиограммы (ЭКГ) .........................................................142
Ход работы: ............................................................................................................143
Анализ и обсуждение результатов .......................................................................144

Содержание

РАЗДЕЛ 9. АРТЕРИАЛЬНАЯ ГИПЕРТЕНЗИЯ .....................................................146

Экспериментальные модели артериальной гипертензии у грызунов ..............146
Вопросы теоретической подготовки ...................................................................148
Рекомендованная литература ...............................................................................149

ЗАДАЧА 9.1. ПРОВЕДЕНИЕ ОПЕРАЦИИ ПО СОЗДАНИЮ 
ВАЗОРЕНАЛЬНОЙ ГИПЕРТЕНЗИИ У КРЫС .....................................................150

Цель работы ...........................................................................................................150
Объект исследования ............................................................................................150
Материалы и оборудование ..................................................................................150
Подготовка к операции .........................................................................................151
Ход работы .............................................................................................................151
Анализ и обсуждение результатов .......................................................................154

ЗАДАЧА 9.2. ИЗМЕРЕНИЕ СИСТОЛИЧЕСКОГО АРТЕРИАЛЬНОГО 
ДАВЛЕНИЯ У КРЫС ФОТОПЛЕТИЗМОГРАФИЧЕСКИМ МЕТОДОМ ..........155

Цель работы ...........................................................................................................155
Объект исследования ............................................................................................155
Материалы и оборудование ..................................................................................155
Общие экспериментальные подходы ..................................................................156
Ход работы .............................................................................................................157
Анализ и обсуждение результатов .......................................................................159

РАЗДЕЛ 10. ЯЗВЕННЫЕ ПОРАЖЕНИЯ ЖЕЛУДОЧНО-КИШЕЧНОГО 
ТРАКТА ......................................................................................................................162

Факторы риска и патогенез язвенной болезни ...................................................162
Язва желудка, связанная с поражением Helicobacter pylori ..............................164
Язва желудка, связанная с приемом нестероидных противовоспалительных 
препаратов ..............................................................................................................165
Моделирование язвенной болезни желудка у лабораторных животных .........166
Вопросы теоретической подготовки ...................................................................167
Рекомендованная литература ...............................................................................167

ЗАДАЧА 10. ОСВОЕНИЕ ЭТАНОЛОВОЙ МОДЕЛИ ЯЗВЫ ЖЕЛУДКА 
У КРЫС ......................................................................................................................168

Цели работы ...........................................................................................................168
Объект исследования ............................................................................................168
Материалы и оборудование ..................................................................................168
Ход работы .............................................................................................................168
Анализ и обсуждение результатов .......................................................................170

РАЗДЕЛ 11. САХАРНЫЙ ДИАБЕТ ........................................................................172

Классификация и характеристика форм сахарного диабета .............................172
Экспериментальные модели сахарного диабета ................................................173
Вопросы теоретической подготовки ...................................................................174
Рекомендованная литература ...............................................................................174

ЗАДАЧА 11. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ МОДЕЛЬ САХАРНОГО 
ДИАБЕТА 1 ТИПА НА КРЫСАХ ...........................................................................175

Цель работы ...........................................................................................................175
Объект исследования: ...........................................................................................175
Материалы и оборудование: .................................................................................175
Индукция диабета .................................................................................................175
Проведение теста на толерантность к глюкозе ..................................................178
Анализ и обсуждение результатов .......................................................................179

ВВЕДЕНИЕ

Общие цели практикума по патофизиологии

Данное учебное пособие является руководством к выполнению 

практических задач в рамках курса «Патофизиология» для студентов 
3-го курса бакалавриата биологического факультета МГУ имени 
М.В. Ло моносова. Учебный практикум является неотъемлемой частью 
обучения студентов-физиологов, поскольку практически все знания и 
достижения современной физиологии базируются на результатах экспериментальных 
исследований. Работа на практикуме позволяет студентам 
лучше понять материал, с которым они знакомятся из учебников 
и на лекциях, способствует формированию у них научного мышления, 
их становлению как самостоятельных исследователей-физиологов. 

В этом разделе практикума студенты могут узнать новые принци-

пы работы организма млекопитающих, которые были не очевидными 
при изучении теоретического курса и выполнении практических 
задач по нормальной физиологии. Когда какая-либо физиологическая 
система «выведена из равновесия» в результате функционального 
напряжения или развития патологического процесса, это изменяет 
работу нормальных регуляторных механизмов и включает 
механизмы, не свойственные здоровому организму. 

Раздел «Патофизиология» позволяет студентам освоить экспе-

риментальные модели основных социально значимых заболеваний 
человека, а также познакомиться с принципами коррекции этих патологических 
состояний.

В задачи практикума входит:

● приобретение навыков хирургических манипуляций с лабора-

торными животными (грызунами), постановки и проведения физиологического 
эксперимента;

● знакомство с экспериментальными моделями заболеваний чело-

века, освоение методик их создания у животных;

● знакомство с некоторыми методиками коррекции и терапии пато-

логических состояний;

● освоение принципов анализа экспериментальных результатов и 

представления их в виде отчета, построенного по традиционному 
плану научной публикации. 
Практические навыки и сведения по патофизиологии могут при-

годиться будущим физиологам во время учебы в магистратуре и 
аспирантуре, а также в дальнейшей жизни: например, при проведении 
фундаментальных научных исследований или доклинических 
исследований фармакологических препаратов, в которых часто используются 
животные модели патологических состояний. 

Этические нормы обращения с лабораторными 
грызунами при выполнении практических задач

Основные принципы

Обязательным условием проведения физиологических экспери-

ментов является соблюдение правил гуманного обращения с животными. 
Для обеспечения данных правил разработаны рекомендации, 
а также ряд нормативных документов, описывающих все аспекты 
этой работы. К ним относятся: требования к генетическому и микробиологическому 
статусу; нормы содержания, ухода, требования 
к обогащению среды обитания и контролю за состоянием здоровья 
животных; алгоритм планирования и правила проведения экспериментов; 
оценка тяжести процедур и процесс обеспечения благополучия 
животных при соблюдении правил обезболивания, послеоперационного 
ухода при хирургии, применение гуманных конечных 
точек (гуманное умерщвление животного на этапе, подразумевающем 
получение необходимых экспериментальных данных, но до 
наступления у него сильной и/или продолжительной боли и страданий), 
использование допустимых методов эвтаназии и другие.

Основные принципы работы с лабораторными животными опи-

саны в Европейской конвенции об охране позвоночных животных, 
используемых для экспериментов и в других научных целях (ETS 
№ 123). В ней изложены следующие положения:
● Всякое животное, используемое или предназначенное для ис-

пользования в (научной или учебной) процедуре, должно иметь 
жилище, определенную среду, как минимум, некоторую свободу 
движения, питание, воду и уход, соответствующие его здоровью 
и состоянию. Всякое ограничение его способности удовлетворять 
свои физиологические и этологические потребности должно 
быть обосновано и по возможности минимизировано. Условия 
среды, в которых животное выращивается, содержится или 
используется, должны контролироваться ежедневно.

● При выборе между различными процедурами предпочтение 

должно отдаваться тем, которые: а) используют минимальное 
число животных, б) приводят к меньшим долговременным повреждениям, 
боли, страданиям или тревоге и в) могут дать наиболее 
удовлетворительные результаты.

● При планировании каждого эксперимента следует обосновывать 

необходимость использования лабораторных животных и рассматривать 
возможные альтернативные методы (использование компьютерных 
моделей, ферментных систем, культур клеток и тканей, 

Введение

беспозвоночных животных и т.п.) как более предпочтительные.

● По завершении всякого эксперимента принимается решение о 

сохранении животного в живых или его умерщвлении гуманным 
методом. Животное не оставляют в живых, если имеется основание 
полагать, что оно будет продолжать постоянно испытывать 
боль или тревогу, даже если состояние его здоровья во всех других 
отношениях нормализовалось.

● В учреждении должны быть выделены сотрудники, несущие от-

ветственность за содержание, уход и благополучие животных, а 
также функционирование соответствующего оборудования. К работе 
с животными допускаются только лица, прошедшие специализированное 
обучение и имеющие официальное разрешение от 
такого лица. 
Планирование научной или учебной работы с участием живот-

ных следует начать с оформления заявки в комиссию по биоэтике. 
Комиссия по биоэтике — независимая общественная структура — 
создается при организации, в которой проводятся эксперименты с 
участием животных и/или человека, и обычно состоит из наиболее 
опытных экспериментаторов, ветеринаров, представителей администрации 
и независимой общественности. В заявке следует описать: 
место проведения, вид и количество животных, даты и этапы 
эксперимента, оценить ожидаемую пользу от результатов опыта, а 
также описать вред, наносимый животным, выражающийся в определенной 
степени тяжести проводимых с ними процедур. Особое 
внимание уделяется мерам, которые будут предприняты исследователями 
для облегчения боли и страданий животных, а также гуманным 
конечным точкам и процедуре эвтаназии. Учебные задачи 
с использованием позвоночных животных рассматриваются данной 
Комиссией наряду с научными. 

Залогом здоровья и благополучия лабораторных животных и вос-

производимости экспериментов является соблюдение требований к 
условиям содержания. Правила содержания, ухода и основных манипуляций 
с лабораторными животными отражены в системе Межгосударственных 
стандартов (ГОСТ).

Содержание грызунов

Лабораторных мышей и крыс, согласно требованиям ГОСТ 

33216-2014, рекомендуется содержать при температуре 20–24 °С, 
влажности 30–70%, искусственном освещении яркостью до 400 лк, 
с 12-часовым фотопериодом. При необходимости осмотра животных 
в ночное время следует использовать светильники с рассеян-

Руководство к практическим занятиям по патофизиологии

ным красным светом, который грызуны не видят (включение освещения 
ночью стрессирует животных и нарушает их циркадный 
ритм). Солнечный свет, в сотни раз более яркий, чем искусственный, 
может вызвать слепоту у альбиносов, поэтому наличие окон в 
лаборатории или комнатах содержания не рекомендуется. Звуковая 
сигнализация, особенно в ультразвуковом диапазоне, является основным 
видом коммуникации для грызунов, поэтому следует избегать 
громких звуков, а также убедиться, что лабораторные приборы 
не создают шумовой фон в диапазоне частот 20–100 кГц. Чтобы воздух 
в помещениях содержания был чистым и не содержал микроорганизмов, 
частиц пыли и запахов, помещения следует оснащать 
приточно-вытяжной системой вентиляции, с приточными и вытяжными 
фильтрами тонкой очистки, поддерживающей кратность воздухообмена 
15–20 объемов помещения в час. В жаркое время года 
воздух следует охлаждать и осушать кондиционером, в холодное — 
увлажнять при помощи парогенератора. 

От соблюдения норм размещения животных в клетках зависит не 

только их благополучие и здоровье, но и чистота в помещениях. Поэтому 
следует рассаживать животных с учетом их размера: не более 
пяти взрослых крыс в стандартную клетку с площадью пола 1500 см2 
и не более шести взрослых мышей в клетку с площадью пола 435 см2 
(на каждую взрослую мышь должно приходиться не менее 80 см2 
пола клетки, а на взрослую крысу — не менее 400 см2). Не следует помещать 
новых животных в сложившуюся социальную группу: пересадка 
может привести к агрессивному поведению у доминантных животных (
сбриванию усов и шерсти, дракам, калечению и даже гибели 
животных). Индивидуальное содержание также является сильным 
стрессором для грызунов, поэтому следует прибегать к нему только 
в том случае, когда это требуется в рамках эксперимента (например, 
для измерения потребления корма и воды, при вживлении катетера, 
после хирургической операции и т.п.), строго на время такого эксперимента. 
По возможности следует обеспечить визуальный, слуховой 
и запаховый контакт изолированных животных с остальной группой. 

Подстил, на котором содержатся грызуны, не должен содержать 

пыли, смол, токсичных и различающихся от партии к партии компонентов, 
поэтому используются древесные гранулы из лиственных 
пород деревьев, либо из хвойных, но после экстракции из них смол, 
а также измельченные стержневые части початков кукурузы. 

В клетках с мышами необходимо размещать домики и/или гнез-

довой материал (нарезанная немелованная бумага, салфетки, картонные 
трубки или стаканчики в качестве укрытий и т.п.), крысам 
важнее предоставлять предметы для манипуляций и игр (деревян-

Введение

ные палочки или блоки, салфетки), а также картонные или пластиковые 
емкости в качестве укрытий и т.п., однако следует учитывать 
возможное влияние данных объектов на измеряемые в эксперименте 
параметры. Важно, чтобы все эти материалы были нетоксичны и 
не содержали патогенных микроорганизмов. Наличие компонентов 
для обогащения среды способствует снижению остроты социальных 
конфликтов и сохраняет стабильность групп, что обеспечивает 
надежность и воспроизводимость экспериментальных данных.

Смена грязных клеток проводится путем пересаживания живот-

ных в вымытые сухие клетки, заполненные чистым подстилом и 
гнездовым материалом. Бутылки для поения также подлежат замене 
на чистые (доливать воду в грязные бутылки не следует). Частота 
смены клеток зависит от плотности посадки, обычно — 1 раз в 
неделю. Смена клеток с загрязненным подстилочным материалом 
должна проводиться с такой периодичностью, чтобы, с одной стороны, 
удалять токсичные отходы жизнедеятельности и избыточные 
запахи, а, с другой, не приводить к дистрессу у животных при слишком 
частом изъятии важных для социальной активности грызунов 
запаховых меток. 

Корм, предоставляемый лабораторным животным, должен об-

ладать подтверждаемым документами полноценным составом по 
микро- и макроэлементам и питательными свойствами, соответствующими 
потребностям используемых животных (существуют 
специализированные корма для беременных и лактирующих, новорожденных 
животных, с высокожировым составом и т.п.), он должен 
быть свободен от патогенов и токсичных продуктов их жизнедеятельности. 
Состав корма не должен меняться от партии к партии 
и отвечать требованиям ГОСТ. 

Все работы с животными следует проводить в чистом халате, 

перчатках, маске и шапочке, чтобы не занести патогенные микроорганизмы 
животным и предотвратить собственное инфицирование, 
а также развитие у сотрудников аллергии, вызванной контактом с 
биологическими материалами от грызунов. 

На каждой клетке с животными должна присутствовать карточ-

ка, на которой указаны (как минимум) вид, линия, пол, возраст и количество 
животных, их источник и дата размещения, название или 
номер эксперимента, а также фамилия и контактная информация 
исследователя. 

В случае, когда требуется различать животных индивидуально, 

проводят их мечение. Для кратковременного (до 5 дней) мечения 
небольших групп грызунов подходит нанесение хирургическим 
нетоксичным маркером колечек на хвостах или пятен на шерсти. 

Руководство к практическим занятиям по патофизиологии

Для хронических экспериментов используют проколы ушей специальным 
дыроколом, миниатюрные ушные бирки с номером, тату-
аж ушей, лап или хвоста, подкожную имплантацию микрочипов. 
Отрезание частей конечностей категорически не рекомендуется, 
так как это негуманно и может изменить поведенческие или физиологические 
параметры животных. Нанесение в качестве меток 
медицинских препаратов (таких как фукорцин) допускается лишь в 
том случае, если их применение не может повлиять на результаты 
эксперимента (должно быть обосновано в заявке на проведение исследования). 


Приступая к работе, следует помнить, что лабораторные грызуны 

(мыши, крысы, морские свинки) и лагоморфы (кролики) в природе 
являются животными-жертвами. Они умеют скрывать поведение, 
сигнализирующее о боли или заболевании, чтобы уменьшить шансы 
быть съеденными хищниками. Поэтому нужно уметь распознавать 
признаки боли и неблагополучия и знать, какие меры следует принимать 
для их уменьшения. К признакам боли относятся: прижимание 
усов и ушей, наморщивание носа, сужение глаз, вокализация 
при касании, сгорбленная поза, длительная неподвижность, нарушение 
походки, взъерошенная, неопрятная шерсть и др. Важным и 
легко читаемым признаком неблагополучия у грызунов-альбиносов 
является появление порфирина (красно-бурого секрета гардеровой 
железы вокруг глаз и носа). В норме грызуны удаляют выделяющийся 
из глаз и носа секрет, содержащий порфирин, используя его 
в качестве защитной смазки для шерсти при умывании (груминге), 
скопление же порфирина говорит об отсутствии самообслуживания 
вследствие боли, болезни, страха или иного неблагополучия. 
Порфириновая корка, а также окрашивание шерсти в розовый цвет 
вследствие груминга может появляться после транспортировки в 
другой виварий или при смене корма, она пропадает через несколько 
дней после адаптации животных к новым условиям.

Классификация процедур по тяжести, оценка состояния 

животных

Согласно международной классификации, все процедуры с лабо-

раторными животными можно разделить на четыре группы.

1. Без выхода из наркоза. Процедуры под общим наркозом, в 

результате которых животное не должно прийти в сознание.

2. Легкая степень. Животные могут испытывать кратковремен-

ную боль, или страдание, соизмеримое с таковым от укола иглой 
шприца. К ним относится отбор небольших порций крови, подкож-

Введение

ная имплантация электродов или датчиков, биопсия уха, введение 
нетоксичных веществ подкожно, внутрибрюшинно или внутриже-
лудочно, одиночное содержание в течение суток.

3. Умеренная степень. Животные могут испытывать кратковре-

менную умеренную боль или страдание, либо продолжительную 
легкую боль или страдание. К таким процедурам относится введение 
умеренно токсичных препаратов, многократное введение веществ, 
лишение корма более чем на 12 ч, длительное одиночное содержание, 
кормление нестандартным кормом, приводящее к небольшому 
снижению массы тела (до 10%), операции под общим наркозом с послеоперационным 
обезболиванием, обучение с отрицательным подкреплением, 
неизбегаемое цилиндра плавание без истощения и т.п. 

4. Тяжелая степень. Животные могут испытывать сильную боль, 

страдание или дистресс ИЛИ продолжительную умеренную боль 
или страдание. Такие процедуры оказывают серьезное негативное 
влияние на общее состояние животных. К ним относятся исследования 
токсичности, в которых смерть является конечной точкой; вмешательства, 
приводящие к прогрессирующему заболеванию, индукция 
опухолевого роста, операции под наркозом, если они приводят к 
тяжелой или стойкой послеоперационной боли, или повреждениям; 
трансплантация органов; неизбегаемый электрический ток или плавание 
до изнеможения; содержание в боксах с жестким ограничением 
подвижности и др. Эксперименты тяжелой степени требуют 
тщательного продумывания мер по снижению страданий, таких как 
обезболивание, особые условия содержания, введение поддерживающих 
препаратов. Процедуры, при которых животные могут испытывать 
длительную и сильную боль, страдание, дистресс без 
возможности их скорого облегчения, проводиться не должны!

Задача исследователя — не превысить заранее определенную и 

согласованную с Комиссией по биоэтике степень тяжести эксперимента. 
Поэтому в любых экспериментах, сопровождающихся 
болезненными манипуляциями, заранее составляют бланк оценки 
благополучия животных с описанием ожидаемых негативных 
признаков; за каждый выявленный признак неблагополучия в ходе 
эксперимента выставляется балл (табл. 1). По достижении определенного 
числа баллов животное подлежит эвтаназии одним из допустимых 
для грызунов методов (гуманная конечная точка). 

Манипуляции с животными

До начала любого эксперимента, в котором животные будут ис-

пользованы без общего наркоза, следует провести приручение к ру-

Руководство к практическим занятиям по патофизиологии

кам — хендлинг. Для этого в первый день приучения к рукам исследователь 
помещает в домашнюю клетку с грызунами руку в перчатке. 

На следующий день мышей можно слегка приподнять над по-

лом клетки в закрытых ладонях, приоткрывая их, если животные не 
проявляют беспокойства, позволяя свободно возвращаться в клетку, 
почесывая пальцем шею, лопатки, грудку. Для хендлинга мышей 
также можно использовать пластиковый или картонный цилиндр, 
или пластиковый стаканчик, который помещают в клетку для ознакомления. 
Зашедшую в цилиндр/стаканчик мышь можно аккуратно 
приподнимать над полом клетки, прикрыв торцы ладонями и затем 
возвращать в клетку, позволяя ей свободно выходить из цилиндра 
(не вытряхивать!). 

Крыс после ознакомления с рукой приучают к взятию поглажива-

нием по спинке, мягким обхватом вокруг грудной клетки, небольшим 
подъемом над уровнем пола и последующим возвращением обратно 
с обязательной постановкой на все четыре лапы на пол клетки.

Дата осмотра:                           № клетки: 
№ животного

Категории
Показатели
1
2
3
4

Поведение 
животного 
в клетке

Мимические признаки боли (сужение глаз, 

наморщивание носа, надувание щек, положение 

ушей и вибрисс)

Поведенческие признаки боли (втягивание 

живота, выгибание спины «аркой», вытягивание 

задних лап)

Поза (естественная, вынужденная, заваливание 

на бок, сгорбленная)

Двигательная активность (неподвижность, 

гиперактивность, подскоки, замирание, вздраги-

вание, стереотипные движения)

Дыхание (учащенное/ редкое)

Выделение из носа/глаз

Состояние шерсти (пилоэрекция, алопеции, 

шерсть грубая/тусклая/загрязненная)

Поведение 
животного 
при взятии 
на руки

Вокализация

Агрессивное поведение

Осмотр 
клетки
Следы крови

Таблица 1. Пример бланка оценки общего состояния и благополучия грызунов