Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2018, № 6

СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫЕ ЖИВОТНЫЕ

ISSN 2500-4379
DOI: 10.32416/issue_5c050ab6bb8c35.10041723

6

2018

Инфекционная патология

Иммунология

Новости науки и практики

Современные фармакои биопрепараты

Дезинфектология

• РВЖ • № 6/2018 •
3

Юров К.П., Алексеенкова С.В. Коитальная экзантема 
лошадей, диагностика и идентификация возбудителя...........5

Иммунология

Симанова И.Н., Макарова В.Н., Бадеева О.Б., Корюкина М.В., 
Мникова, Л.А. Ишкова Т.А., Соколова Н.А., Горбатов А.В.,
Юров К.П. Динамика антител в крови и молозиве коров, 
иммунизированных трехкомпонентной 
вирусно-бактериальной вакциной..........................................9

Сидорчук А.А. История создания вакцин и вакцинации. 
Часть II. Оспа и сибирская язва...............................................12

Макаров В.В. Африканская чума свиней................................15

Федоров Ю.Н., Клюкина В.И., Богомолова О.А., 
Романенко М.Н. Молозиво и пассивный иммунитет 
у новорожденных телят: обзор..............................................20

Ожерелков С.В., Кожевникова Т.Н., Санин А.В., Конюшко О.И., 
Ворович М.Ф., Иванова А.Л. Исследование антивирусной 
активности Глутоксима при инфицировании клеточной 
линии фибробластов вирусом везикулярного стоматита ...........25

Татарчук О.П. RISE-микроскопия в оценке качества 
многокомпонентных порошкообразных
дезинфицирующих средств.....................................................30

Содержание/Contents

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

ЛЕКЦИИ
LECTURES

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ
ORIGINAL ARTICLES

VITAL TOPIC

6/2018

Yurov K.P., Alexeyenkova S.V. Coital exanthema of horses: 
diagnosis and identification of the pathogen..................................5

Immunology

Simanova I.N., Makarova V.N., Badeeva O.B., Korukina M.V., 
Mnikova L.A., Ishkova T.A., Sokolova N.A., Gorbatov A.V., 
Yurov K.P. Dynamic of antibodies in blood and colostrum 
of cows immunized with three-component viral 
and bacterial vaccine....................................................................9

Sidorchuk A.A. History of Vaccines and Vaccination. 
Part II. Рox and anthrax................................................................12

Makarov V.V. African swine fever..................................................15

Fedorov Yu.N., Klukina V.I., Bogomolova O.A., 
Romanenko M.N. Colostrum and passive immunity 
in newborn calves: а review..........................................................20

Ozherelkov S.V., Kozhevnikova T.N., Sanin A.V., Konyushko O.I., 
Vorovich M.F., Ivanova A.L. Study of Glutoxim antiviral 
activity in the fibroblast cell line infected with vesicular 
stomatitis virus.............................................................................25

Tatarchuk O.P. RISE microscopy 
for evaluation of compounded disinfection 
products.......................................................................................30

ОБЗОРЫ

СОВРЕМЕННЫЕ ФАРМАКО- И БИОПРЕПАРАТЫ

ДЕЗИНФЕКТОЛОГИЯ

REVIEWS

MODERN PHARMACOLOGICAL DRUGS & BIOPREPARATIONS

DESINFECTOLOGY

НОВОСТИ НАУКИ И ПРАКТИКИ
NEWS OF SCIENCE & PRACTICE

• РВЖ • № 6/2018 •

Главный редактор

Василевич Ф.И., докт. вет. наук, Заслуженный работник высшей школы, академик РАН, проф. кафедры паразитологии и ветеринарно-санитарной 
экспертизы, ректор ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Выпускающий редактор

В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru)

Редакционная коллегия

Акбаев Р.М., канд. вет. наук, доцент кафедры паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина 
(Москва)

Балакирев Н.А., докт. с/х наук, академик РАН, проф. кафедры мелкого животноводства, рыбоводства и пчеловодства ФГБОУ ВО МГАВМиБ — 
МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Буряков Н.П., докт. биол. наук, проф., Почетный работник АПК России, зав. кафедрой кормления и разведения животных ФГБОУ ВО РГАУ — 
МСХА имени К.А. Тимирязева (Москва)

Верховский О.А., докт. биол. наук, проф., президент АНО «НИИ ДПБ» (Москва)

Власов Н.А., докт. биол. наук, проф. (Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному надзору) (Москва)

Грищенко Л.И., докт. вет. наук, эксперт в области ихтиопатологии, проф. кафедры мелкого животноводства, пчеловодства и рыбоводства ФГБОУ ВО 
МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Данилевская Н.В., докт. биол. наук, проф. кафедры физиологии, фармакологии и токсикологии ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина 
(Москва)

Дюльгер Г.П., докт. вет. наук, зав. кафедрой морфологии и ветеринарии факультета зоотехники и биологии ФГБОУ ВО РГАУ — МСХА им. К.А. Тимирязева (Москва)

Зайцев С.Ю., докт. биол. наук, докт. хим. наук, проф., зав. кафедрой химии им. проф. С.И. Афонского, А.Г. Малахова ФГБОУ ВО МГАВМиБ — 
МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Максимов В.И., докт. биол. наук, проф. кафедры физиологии, фармакологии и токсикологии ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Пронин А.В., докт. биол. наук, проф. (Минздрав РФ) (Москва)

Пронин В.В., докт. биол. наук, проф., Почетный работник Высшего профессионального образования, зав. кафедрой морфологии, физиологии
и ветсанэкспертизы ФГБОУ ВО «Ивановская ГСХА им. ак. Д.К. Беляева», (Иваново), Центр доклинических исследований ФГБУ ВНИИЗЖ (Владимир)

Сансызбай А.Р., докт. вет. наук, проф., генеральный директор «НИИ проблем биологической безопасности» КН МОН (Республика Казахстан)

Санин А.В., докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета НИИЭМ им. Н.Ф. Гамалеи (Москва)

Сидорчук А.А., докт. вет. наук, проф. кафедры эпизоотологии и организации ветеринарного дела ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина 
(Москва)

Сноз Г.В., докт. вет. наук, Заслуженный работник высшей школы Российской Федерации, проф. кафедры диагностики болезней и терапии животных 
ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Сотникова Л.Ф., докт. вет. наук, проф., эксперт в области офтальмологии, зав. кафедрой биологии и патологии мелких домашних, лабораторных 
и экзотических животных ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина (Москва)

Федоров Ю.Н., докт. биол. наук, член-корреспондент РАН, Заслуженный деятель науки РФ, проф., эксперт в области иммунологии (Москва)

Юров К.П., докт. вет. наук, Заслуженный деятель науки РФ, проф., зав. лабораторией вирусологии ФГБНУ ВИЭВ им. Я.Р. Коваленко (Москва)

Научно-практический журнал 
Издается с марта 2005 г.

Издательство «Логос Пресс»
Директор М.В. Гейне 
Издатель ИП Солодилов Е.В.
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н. 
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева 
Менеджер по маркетингу М.А. Шугуров 
Компьютерный дизайн Е.И. Курукина

Адрес редакции: 127018, Москва, ул. 2-я Ямская, 2 
E-mail: info@logospress.ru, http://logospress-vet.ru 
Тел.: +7/495/689-85-16, +7/495/220-48-16

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС77-67320

«РОССИЙСКИЙ ВЕТЕРИНАРНЫЙ ЖУРНАЛ»
цитируется в международной базе данных AGRIS ФАО ООН

Журнал выпускается при участии

Федеральной службы по ветеринарному и фитосанитарному надзору 
(Россельхознадзор)

Департамента ветеринарии Министерства сельского хозяйства РФ

Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством. 
Редакция не несет ответственности за содержание рекламных материалов.

Мнение редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей 

Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение издания допускается без размещения знака информационной продукции.

• РВЖ • № 6/2018 •
5

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

Коитальная экзантема лошадей: 
диагностика и идентификация возбудителя 

К.П. Юров, доктор ветеринарных наук, профессор, зав. лабораторией вирусологии (konstyurov@yandex.ru), 
С.В. Алексеенкова, кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории вирусологии 
(116176@mail.ru).

Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр — Всероссийский научно-исследовательский 
институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко» Российской академии наук (109428, Москва, Рязанский 
проспект, д. 24, корп. 1).

Выполнены комплексные исследования в период острой вспышки заболевания лошадей с симптомами экзантематозного поражения наружных половых органов, зарегистрированной в 2018 г. Поражение наружных половых 
органов проявлялось в виде отечности преддверия влагалища и вульвы у конематок и препуция у жеребцов, образования на слизистой оболочке и коже папул, везикул и пустул, в последней стадии — изъязвления и формирования корок на пораженных участках. В соскобах с пораженных участков методами молекулярно-генетического 
анализа обнаружили фрагмент генома герпесвируса лошадей типа 3 — возбудителя коитальной экзантемы. 
Результаты определения нуклеотидных последовательностей показали высокую степень филогенетического 
родства со штаммом «YS-1», выделенным от больных лошадей в Японии в 2017 г. Гомология выравнивания нуклеотидных последовательностей в пределах исследуемого участка генома — фрагмента гена gpG (813…1292 п.о.) —
составила 100 %. В 90 % проб, содержащих ДНК вируса коитальной экзантемы, также была найдена ДНК вируса 
ринопневмонии–вирусного аборта (ГВЛ-1) и только в 10 % случаев наблюдали моноинфекцию ГВЛ-3. Участие в 
инфекционном процессе ГВЛ-1 было подтверждено ретроспективным серологическим исследованием. В РН антитела к ГВЛ-1 выявляли в титре 1:16…1:32. Сравнительный анализ ретроспективных данных показал, что 
подобная вспышка коитальной экзантемы, наблюдавшаяся в 1980–81 гг., была обусловлена моноинфекцией ГВЛ-3.

Ключевые слова: коитальная экзантема, ринопневмония, герпесвирус, лошади, полимеразная цепная 
реакция.
Сокращения: ГВЛ-1 — герпесвирус лошадей типа 1, 
ГВЛ-3 — герпесвирус лошадей типа 3, ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота, ОРС — открытая рамка 
считывания, п.о. — пара оснований, ПЦР — полимеразная цепная реакция, РН — реакция нейтрализации, 
ТЦД — тканевая цитопатогенная доза, gpG — glycoprotein G (гликопротеин G), INSDC — International 
Nucleotide Sequence Data Collaboration (Международная база данных нуклеотидных последовательностей).

Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства науки и высшего образования России 
по государственному заданию № 0578-2014-0023. 
Авторы не имеют конфликта интересов.

Введение
Герпесвирусы животных и человека ассоциируются с 
различной патологией — от неврологического синдрома 
и эмбриональной смертности до бессимтомной латентной инфекции или локальных поражений кожи и слизистых в виде пустул. Последние названные патологии обусловливает ГВЛ-3 — представитель рода Varicellovirus, 
семейства Herpesviridae, порядка Herpesvirales —
возбудитель коитальной экзантемы лошадей. Вирус 
вызывает поражения на коже и слизистой оболочке по
Для цитирования: Юров, К.П. Коитальная экзантема лошадей: диагностика и идентификация возбудителя / К.П. Юров, С.В. Алексеенкова // Российский 
ветеринарный журнал. — 2018. — № 6. — С. 5–8. DOI:10.32416/article_5c050ab891e319.94298054
For citation: Yurov K.P., Alexeyenkova S.V., Coital exanthema of horses: diagnosis and identification of the pathogen, Rossijskij veterinarnyj zhurnal (Russian veterinary 
journal), 2018, No.6, pp. 5–8. DOI:10.32416/article_5c050ab891e319.94298054

ловых органов кобыл и жеребцов в виде папул, пустул, 
везикул, язв. При обнюхивании  пораженных участков 
у жеребцов могут наблюдаться пустулезные поражения 
слизистой оболочки носоглотки и трахеи. У жеребцов 
с обширными повреждениями отмечают угнетение и 
потерю охоты [2].
Несмотря на локальный характер поражений, заболевание наносит экономический  ущерб в период случной компании, поскольку больные жеребцы и кобылы 
отказываются от случки. Источником возбудителя 
инфекции служат лошади — скрытые вирусоносители. 
Возбудитель передается главным образом при случке, 
а также ятрогенным путем — через инфицированные 
резиновые перчатки, ультразвуковой зонд, предметы 
ухода и др. [4].
ГВЛ-3 инфекция обнаружена в разные годы во 
многих странах мира: США, Канаде, Великобритании, Норвегии, Дании, Японии, Турции, Бразилии, Австралии. Вирус впервые был изолирован 
в 1968 г. одновременно в США, Канаде и Австралии. 
В CCCР вспышку коитальной экзантемы на одном из 
конных заводов Центрального региона России наблюдал 
К.П. Юров (отчет ВИЭВ, 1981 г.).
Заболевание причиняет значительный экономический ущерб племенному коневодству. Прямые финансовые потери связаны со снижением числа жеребых 
кобыл и, следовательно, числа полученных жеребят, 
затратами на лечение и ограничительные мероприятия [5].

УДК 619: 616.98: 578

• РВЖ • № 6/2018 •
6

К.П. Юров, С.В. Алексеенкова

Диагноз устанавливают на основании результатов 
клинико-эпизоотологических  данных и лабораторного 
исследования — изоляции вируса в культуре клеток, 
РН, обнаружения вирусной ДНК с помощью ПЦР 
«классической» или в реальном времени. В последние 
годы для диагностики коитальной экзантемы используют технологию изолированной изотермической ПЦР 
(iiPCR), в основе которой лежит принцип конвекции 
Рэлея–Бенара [8].

Цель исследования
Цель работы — диагностика заболевания лошадей с 
симптомами экзантематозного поражения наружных 
половых органов; идентификация и молекулярно-генетическая характеристика возбудителя — ГВЛ-3.

Материалы и методы
Исследование проводили по теме НИР 0578-2014-0023. 
Финансовая поддержка работы обеспечена Министерством науки и высшего образования России. Работу 
выполняли в лаборатории вирусологии ФГБНУ ФНЦ 
ВИЭВ РАН и в одном из племенных хозяйств Южного 
федерального округа РФ, неблагополучном по репродуктивным болезням лошадей.
Объектом исследования являлись чистокровные 
лошади во время вспышки заболевания, характеризовавшегося экзантематозным поражением наружных 
половых органов. Материалом для исследования служили кровь от больных и переболевших животных, 
соскобы с пораженных участков кожи и слизистой 
оболочки половых органов.
ДНК выделяли на спин-колонках с компонентами 
коммерческого набора «K-Сорб» (ЗАО «Синтол») по 
протоколу фирмы-изготовителя. Концентрацию и 
чистоту выделенной ДНК определяли на спектрофотометре. Для исследования отбирали ДНК с чистотой 
1,8…1,9 по соотношению А260/А280 в концентрации 
500 нг.
Реакцию амплификации для выявления вирусного 
генома с помощью олигонуклеотидов-праймеров, 
комплементарных фрагменту гена gpG герпесвируса 
лошадей типа 3, проводили по методу, предложенному 
K. Dynon et al. 2001 [3].
Дифференциальную диагностику для обнаружения 
ГВЛ типов 1, 2, 4, 5 проводили по методикам, описанным ранее [1, 3, 7]. Олигонуклеотиды-праймеры были 
синтезированы ЗАО «Синтол». Фрагменты ПЦР анализировали с помощью электрофореза в 1,5%-м агарозном геле, содержащем бромид этидия в концентрации 
0,5 мкг/мл. Результаты учитывали на среднечастотном 
трансиллюминаторе в ультрафиолетовом свете с длиной волны 312 нм. Нуклеотидные последовательности 
определял на генетическом анализаторе сотрудник 
ЗАО «Синтол» О.П. Малюченко.
Множественное выравнивание выполнено с помощью компьютерной программы Clustal (Европейский 
институт биоинформатики). Для сравнения использовали нуклеотидные последовательности фрагмента гена 
gpG референтных штаммов и изолятов ГВЛ-3 из базы 
данных INSDC (GenBank).
Количественное определение вируснейтрализующих 
антител к ГВЛ-1 выполняли в РН в 96-луночных культуральных планшетах против 100…300 ТЦД50/мл вируса.

Результаты и обсуждение
Во время вспышки заболевания конематок наблюдали 
поражение половых органов в виде отечности преддверия влагалища и вульвы, затем образование везикул 
и пустул; в последней стадии у части кобыл отмечали 
изъязвление и корки на пораженных участках. Высыпания обычно имели очаговый характер. Вследствие 
слияния отдельных эрозий образовывались экссудативные язвенные поражения кожи. В единичных случаях 
отмечали паховый лимфаденит.
Исследовали пробы сыворотки крови больных и 
переболевших лошадей и соскобы с пораженных участков слизистой и кожи наружных половых органов. 
В соскобах с пораженных участков методами молекулярно-генетического анализа обнаружили фрагмент 
генома ГВЛ-3 — возбудителя коитальной экзантемы.
Результаты определения нуклеотидных последовательностей показали высокую степень филогенетического родства со штаммом «YS-1», выделенным 
от больных лошадей в Японии в 2017 г. Гомология 
выравнивания нуклеотидных последовательностей в 
пределах изучаемого участка генома — фрагмента гена 
gpG (813…1292 п.о.) — составляла 100 %. Исследуемый 
участок генома является высококонсервативным. 
Однако некоторые изоляты и штаммы содержат 
нуклеотидные замены, например японский штамм 
«SS-1» имеет 3 замены: С(А) — на позиции 905 п.о., 
А(С) — 1103 п.о., G(T) — 1264 п.о. В отличие от С(A) и 
G(T), замена А(С) является нейтральной (сайлент-мутация), но имеется только у некоторых новых вариантов 
вируса, обнаруженных в 2017–2018 гг., в том числе у 
российского изолята «VG-1» (рис.).
Геном ГВЛ-3 был полностью расшифрован в 2014 г. 
группой ученых из Аргентины и Бельгии. Инвентарный номер в базе данных GenBank — KM051845. 
Геном вируса относится к классу D и состоит из длинного и короткого уникальных участков (UL и US), 
фланкированных инвертированными повторами TRL/
IRL и IRS/TRS. Общий размер генома — 151601 п.о. 
ОРС расположены так же, как и у других альфагерпесвирусов лошадей, кроме ОРС 76, которая находится 
внутри повтора IRS/TRS и дублируется. Геном ГВЛ-3 
содержит 76 различных генов, 4 из которых дублируются (ОРС 64, 65, 66 и 76), то есть всего 80 генов. 
ГВЛ-3 существенно отличается от ГВЛ других типов 
(сходство в пределах гомологичных генов 62,1…64,9%), 
тогда как ГВЛ-1, ГВЛ-4, ГВЛ-8 и ГВЛ-9 идентичны 
между собой не менее чем на 78,2% [6].
Известно, что герпесвирусы часто подвержены генетической рекомбинации. Возможно, что коинфекция 
герпесвирусов разных типов приводит к появлению 
новых вирулентных вариантов, вследствие этого затрудняется выяснение этиологии заболевания. Для уточнения этиологии заболевания с симптомами коитальной 
экзантемы смывы от больных лошадей дополнительно 
исследовали в ПЦР, чтобы исключить ГВЛ других 
типов — 1, 2, 4, 5. В 90 % проб, содержащих ДНК вируса 
коитальной экзантемы, также была найдена ДНК вируса ринопневмонии-вирусного аборта (ГВЛ-1) и только 
в 10 % случаев наблюдали моноинфекцию ГВЛ-3. 
Участие в инфекционном процессе ГВЛ-1 было подтверждено ретроспективным серологическим исследованием. В РН антитела выявляли в титре 1:16…1:32.

• РВЖ • № 6/2018 •
7

Коитальная экзантема лошадей: диагностика и идентификация возбудителя 

Рис. Сравнительный анализ нуклеотидных последовательностей фрагмента гена, кодирующего гликопротеин G (gpG) ГВЛ-3, российского изолята «VG-1» и 
штаммов из базы данных INSDC. Идентичность референтному штамму YS-1 указана пунктиром, замены — буквенным кодом для обозначения нуклеотидов

Fig. Comparative analysis of the nucleotide sequences of the gene fragment encoding the glycoprotein G (gpG) of equine herpesvirus type 3, the Russian isolate 
«VG-1» and strains from the INSDC database. The identity of the reference strain YS-1 is indicated by a dotted line, the replacement is indicated by the letter 
code for nucleotides

• РВЖ • № 6/2018 •
8

К.П. Юров, С.В. Алексеенкова

Вспышку коитальной экзантемы, обусловленную 
моноинфекцией ГВЛ-3, наблюдали в 1980–1981 гг. 
(К.П. Юров, неопубликованные данные). Энзоотия  возникла вследствие введения в хозяйство нового жеребца. 
После случки у кобыл на слизистой влагалища, коже 
наружных половых органов наблюдали поражения в 
виде папул, которые затем формировали везикулы и 
пустулы. В то же время наблюдали заболевание новорожденных жеребят и один случай аборта.
Диагноз был поставлен путем изоляции возбудителя в первичной культуре почки эмбриона лошади. 
Цитопатические изменения в виде очагов округлившихся клеток, многоядерных клеток и симпластов 
в зараженной культуре клеток отмечали на вторые-третьи сутки. Инфекционный титр изолятов не превышал 
1…3 lg TЦД50/мл. При электронной микроскопии методом негативного контрастирования препаратов из культуральной жидкости наблюдали частицы с характерной 
для герпесвируса морфологией (Г.А. Надточей). В РН с 
сывороткой крови переболевших лошадей и вирусом 
ринопневмонии (ГВЛ-1) со всеми пробами получили 
отрицательные результаты.
Коитальная экзантема широко распространена в 
мире, однако этой проблеме не всегда уделяется должное внимание. Заболевание высококонтагиозное, но в 
то же время возбудитель является низкоинвазивным. 
Типичные клинические признаки можно обнаружить 
только у лошадей при первичном заражении, прежде 
всего у молодых. Повторная инфекция протекает, как 
правило, бессимптомно, но лошади остаются скрытыми 
вирусоносителями, поэтому коитальная экзантема часто диагностируется как неинфекционное заболевание. 
Причиной этого, по-видимому, являются особенности 
патогенеза инфекции. ГВЛ-3 реплицируется в стратифицированных клетках эпидермиса кожи и эпителия 
слизистых оболочек, вызывая активную локальную 
воспалительную реакцию. При этом возбудитель 
ограничивается репликацией в клетках эпителия и не 
затрагивает базальную мембрану и собственную пластинку слизистой оболочки (lamina propria), а также 
мононуклеарные лейкоциты, что в корне отличает его 
от других альфагерпесвирусов: возбудителей болезни 
Ауески, ринотрахеита крупного рогатого скота, простого 
герпеса человека, ларинготрахеита кур [4]. Ключевым 
звеном служит механизм латенции↔реактивации вируса, свойственный герпесвирусным инфециям. Реактивация вируса не всегда сопровождается манифестацией 
типичных изменений. Выделение вируса в окружающую 
среду происходит одновременно с циркуляцией гуморальных антител, титр которых значительно варьирует. 
Переболевшие лошади становятся скрытыми вирусоносителями и представляют угрозу как источник возбудителя инфекции.

Заключение
В весенний период 2018 г. зарегистрирована острая 
вспышка половой экзантемы лошадей. В соскобах с 
пораженных участков слизистой оболочки и кожи 
наружных половых органов конематок и жеребцов 
методами молекулярно-генетического анализа выявлены фрагменты генома ГВЛ-3. Результаты определения 
нуклеотидных последовательностей участков генома 
показали высокую степень филогенетического родства 

со штаммом «YS-1», выделенным от больных лошадей в 
Японии в 2017 г. Гомология выравнивания нуклеотидных 
последовательностей в пределах исследуемого участка 
генома — фрагмента гена gpG (813…1292 п.о.) — составляла 100 %. В 90 % проб, содержащих ДНК вируса 
коитальной экзантемы, также была найдена ДНК вируса 
ринопневмонии-вирусного аборта (ГВЛ-1) и только в 10 % 
случаев наблюдали моноинфекцию ГВЛ-3. Участие в 
инфекционном процессе ГВЛ-1 было подтверждено 
ретроспективным серологическим исследованием. 
В РН антитела к ГВЛ-1 выявляли в титре 1:16…1:32. Сравнительный анализ ретроспективных данных показал, что 
подобная вспышка коитальной экзантемы в 1980–81 гг.  
была обусловлена моноинфекцией ГВЛ-3.

Библиография
1. 
Алексеенкова, С.В. Диагностика вирусных болезней лошадей методом 
ПЦР / С.В. Алексеенкова, Г.К. Юров, К.П. Юров // Российский ветеринарный 
журнал. — 2011. — № 3. — С. 37–39.
2. 
Barrandeguy, M. Experimental infection with equid herpesvirus 3 in seronegative and seropositive mares / M. Barrandeguy, A. Vissani, C.G. Olguin, 
L. Becerra, M.S. Tordoya, S. Miño, E. Thiry // Veterinary Microbiology. — 2012. — 
Vol. 160. — рр. 319–326. dx.doi.org/10.1016/j.vetmic.2012.06.024.
3. 
Dynon, K. Identification of equine herpesvirus 3 (equine coital exanthema virus), 
equine gammaherpesviruses 2 and 5, equine adenoviruses 1 and 2, equine arteritis 
virus and equine rhinitis A virus by polymerase chain reaction / K. Dynon, A. Varrasso, N. Ficorilli, S. Holloway, G. Reubel, F. Li, C. Hartley, M. Studdert, H. Drummer // Australian Veterinary Journal. — 2001. — Vol. 79(10). — рр. 695–702.
4. 
Seki, Y. Replication characteristics of equine herpesvirus 1 and equine herpesvirus 3: 
comparative analysis using ex vivo tissue cultures / Y. Seki, Y.M. Seimiya, G. Yaegashi, 
S. Kumagai, H. Sentsui, H. Negussie, Y. Li, T. Sisay Tessema and H.J. Nauwynck // 
Veterinary Research. — 2016. — Vol. 47. — рр. 19. DOI 10.1186/s13567-016-0305-5.
5. 
Nishimori, T. Occurrence of Equine Coital Exanthema in Pastured Draft 
Horses and Isolation of Equine Herpesvirus 3 from Progenital Lesions / 
T. Nishimori,  R. Ishihara // Journal of Veterinary Medical  Science. — 2004. — 
Vol. 66 (12). — рр. 1503–1508. 
6. 
Sijmons, S. Complete Genome Sequence of Equid Herpesvirus 3 / S. Sijmons, 
A.Vissani, M.S. Tordoya, B. Muylkens, E. Thiry, P. Maes, J. Matthijnssens, 
M. Barrandeguy, M. Van Ransta // Genome Announcements. — 2014. — 
Vol. 2(5). — рр. e00797-14. doi:10.1128/genomeA.00797-14.
7. 
Varrasso, A. Identification of equine herpesviruses 1 and 4 by polymerase 
chain reaction / A. Varrasso, K. Dynon, N. Ficorilli, C.A. Hartley, M.J. Studdert, 
H.E. Drummer // Australian Veterinary Journal. — 2001. — Vol. 79(8). — рр. 563–569.
8. 
Vissani, M.A. On-site detection of equid alphaherpesvirus 3 in perineal and 
genital swabs of mares and stallions / M.A.Vissani, M.S. Tordoya, Y.L. Tsai, 
P.Y.A. Lee, Y.H. Shen, F.C. Lee, H.T.T. Wang, V. Parreño, M. Barrandeguy // 
Journal of Virological Methods. — 2018. —Vol. 257. — ррр. 29–32. doi.
org/10.1016/j.jviromet.2018.04.002.

References см. на сайте издательства logospress.ru

ABSTRACT

K.P. Yurov, D.Sc, Ph.D in Veterinary, professor, Head of Laboratory 
of Virology, S.V. Alexeyenkova Ph.D in Biology, leading researcher of 
Laboratory of Virology.

Federal Research Center — All-Russian Research Institute of Experimental Veterinary Medicine 
named after K.I. Skrjabin and Y.R. Kovalenko of the Russian Academy of Sciences (24-1, 
Ryazanskyi prospect str., Moscow, 109428).

Coital exanthema of horses: diagnosis and identification of the pathogen. Comprehensive studies 
were performed during an acute outbreak of horses with symptoms of exanthematous lesions of 
the external genitalia, observed in 2018. The lesion of the external genital organs was observed 
in the form of puffiness of the vestibule of the vagina and vulva in mares and prepuce in stallions, 
formation on the mucous membrane and skin of papules, vesicles and pustules, in the last stage - 
ulceration and crusts on the affected areas. A fragment of the genome of equine herpesvirus 
type 3, the causative agent of coital exanthema, was found in scrapings from the affected areas 
using the methods of molecular genetic analysis. The results of the determination of nucleotide 
sequences showed a high degree of phylogenetic relationship with the strain «YS-1» isolated 
from sick horses in Japan in 2017. The homology of alignment of nucleotide sequences within 
the studied region of the genome — a fragment of the gpG gene (813…1292 bp) — was 100 %. 
In 90 % of the samples containing the DNA of the coital exanthema virus, DNA of the virus of 
rhinopneumonia-viral abortion (equine herpesvirus type 1) was also found, and only in 10 % of 
cases monoinfection of EHV-3 was observed. Participation in the EHV-1 infectious process was 
confirmed by a retrospective serological study. In NT, antibodies to EHV-1 were detected in a titer 
of 1: 16…1: 32. A comparative analysis of retrospective data showed that a similar outbreak of 
coital exanthema observed in 1980–81 was due to EHV-3 monoinfection.
Keywords: coital exanthema, rhinopneumonitis, herpesvirus, horses, polymerase chain 
reaction (PCR). 

DOI:10.32416/article_5c050ab891e319.94298054

• РВЖ • № 6/2018 •
9

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ. ИММУНОЛОГИЯ

Динамика антител в крови и молозиве коров, 
иммунизированных трехкомпонентной 
вирусно-бактериальной вакциной

И.Н. Симанова1, ведущий научный сотрудник отдела по изучению болезней животных инфекционной этиологии, 
соискатель (Irina_simanowa@mail.ru), В.Н. Макарова1, кандидат ветеринарных наук, старший научный 
сотрудник отдела по изучению болезней животных инфекционной этиологии, О.Б. Бадеева1, старший научный 
сотрудник отдела по изучению болезней животных инфекционной этиологии, М.В. Корюкина1, младший 
научный сотрудник отдела по изучению болезней животных инфекционной этиологии, Л.А. Мникова2, кандидат 
биологических наук, ведущий научный сотрудник лаборатории вирусологии, Т.А. Ишкова2, научный сотрудник 
лаборатории вирусологии, Н.А. Соколова2, кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник 
лаборатории микробиологии, А.В. Горбатов2, кандидат ветеринарных наук, и.о. заведующего лабораторией 
микробиологии, К.П. Юров2, заслуженный деятель науки РФ, доктор ветеринарных наук, профессор, 
заведующий лабораторией вирусологии (konstyurov@yandex.ru).

Вологодский филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр — Всероссийский 
научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук» 
(160009, г. Вологда, ул. Чехова, д. 10), (nivs35@mail.ru)
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Федеральный научный центр — Всероссийский научно-исследовательский 
институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко» Российской академии наук (109428, г. Москва, Рязанский 
проспект, д. 24, корп. 1). (viev@mail.ru)

В статье представлены результаты изучения иммунного статуса коров, привитых трехкомпонентной вирусно-бактериальной вакциной. Установлено, что препарат индуцирует у глубокостельных животных высокий 
титр антител к рота- и коронавирусу крупного рогатого скота, а также к адгезинам E. coli: К 99, F 41, Att 2. 
Цель исследования. Изучить динамику образования антител в крови и молозиве коров, иммунизированных 
трехкомпонентной вирусно-бактериальной вакциной.
Материалы и методы. Исследования проводили на базе двух хозяйств Вологодской области, неблагополучных по 
вирусно-бактериальным инфекциям. Материалом для лабораторного исследования служили сыворотки крови 
новорожденных животных, полученных от коров-матерей, иммунизированных вирусно-бактериальной вакциной (опытные группы), а также — от телят, рожденных от невакцинированных коров (контрольные группы). 
Глубокостельным коровам опытных групп вводили трехкомпонентную вирусно-бактериальную вакцину в 
среднюю треть шеи подкожно в дозе 5 мл двукратно с интервалом 20 дней. В сыворотке крови телят титр 
антител к рота-, коронавирусу устанавливали с применением набора «АНТИТЕЛА-РОДИКОР-ИФА ВИЭВ». 
Антиадгезивные антитела выявляли в развернутой реакции агглютинации.
Результаты. Иммунный ответ на введение вакцины производства ФГБНУ ВИЭВ выявлен у всех животных, 
тогда как в сыворотке крови коров контрольных групп он оказался значительно ниже. В молозиве первого удоя 
титры антител к рота- и коронавирусу были достоверно выше, по сравнению с контрольными. Все показатели 
свидетельствуют о достаточной антигенной активности испытуемой вакцины.
Заключение. Проведенные исследования показали, что иммунизация стельных коров трехкомпонентной вируснобактериальной вакциной способствует выработке антител к компонентам препарата в достаточно высоких 
титрах, что обеспечит высокий уровень колострального иммунитета у новорожденных телят.

Ключевые слова: вакцинация, стельные коровы, молозиво, титры антител, иммунитет.
Сокращения: ИФА — иммуноферментный анализ, 
КРС — крупный рогатый скот

Введение

Желудочно-кишечные инфекции занимают одно 
из ведущих мест в патологии молодняка КРС и рассматриваются как серьезная экономическая проблема 
современного животноводства. По данным литературы, 
ведущими факторами в этиологии энтеритов являются ротавирус и коронавирус КРС, энтеропатогенные 

Для цитирования: Симанова, И.Н. Динамика антител в крови и молозиве коров, иммунизированных трехкомпонентной вирусно-бактериальной вакциной / 
И.Н. Симанова, В.Н. Макарова, О.Б. Бадеева, М.В. Корюкина, Л.А. Мникова, Т.А. Ишкова, Н.А. Соколова, А.В. Горбатов, К.П. Юров // Российский ветеринарный 
журнал. — 2018. — № 6. — С. 9–11. DOI: 10.32416/article_5c050ab7ca8b27.10355831
For citation: Simanova I.N., Makarova V.N., Badeeva O.B., Korukina M.V., Mnikova L.A., Ishkova T.A., Sokolova N.A., Gorbatov A.V., Yurov K.P., Dynamic of antibodies 
in blood and colostrum of cows immunized with three-component viral and bacterial vaccine, Rossijskij veterinarnyj zhurnal (Russian veterinary journal), 2018, No.6, 
pp. 9–11. DOI: 10.32416/article_5c050ab7ca8b27.10355831

УДК 619.636.615.371

бактерии группы E. coli, роль других инфекционных 
агентов менее значительна [1, 3, 4].
От иммунологического статуса коров-матерей зависит здоровье телят в ранний постнатальный период. 
Антитела, которые являются в этот период основными 
факторами защиты от патогенов, они получают с молозивом матери — единственным источником специфических иммуноглобулинов [2, 7…10]. Для иммунизации стельных коров во многих странах, в том числе 
и в России, применяют разные модификации вакцин 
против рота-, коронавируса и эшерихиоза (колибактериоза) с адгезивными антигенами. Однако, эти болезни 

• РВЖ • № 6/2018 •
10

продолжают лидировать по широте распространения 
[5, 6, 11]. В связи с этим сотрудниками лабораторий 
вирусологии и микробиологии ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН 
(г. Москва) разработана ассоциированная инактивированная вирусно-бактериальная вакцина, в состав которой входят рота- и коронавирус КРС, а также адгезины 
E. coli (К 99, F 41, Att 25).

Цель исследования
Изучить динамику антител в крови и молозиве коров, 
иммунизированных трехкомпонентной вирусно-бактериальной вакциной.

Материалы и методы
Коров иммунизировали трехкомпонентной вирусно-бактериальной вакциной (утв. 27 января 2014 г.) 
в животноводческом хозяйстве Вологодской области, 
неблагополучном по желудочно-кишечным инфекциям. Лабораторные исследования осуществляли в отделе по изучению болезней животных инфекционной 
этиологии Вологодского филиала ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ 
РАН, в лабораториях вирусологии и микробиологии 
ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН (г. Москва).
Сформировали 2 группы глубокостельных коров: 
опытную (n=30) и контрольную (n=10). Животным 
опытной группы вакцину вводили подкожно в среднюю 
треть шеи в дозе 5,0 мл двукратно с интервалом 20 дней. 
Коров контрольной группы не иммунизировали. Пробы 
крови брали до вакцинации (за 40 дней до отела), перед 
ревакцинацией (за 20 дней до него) и на третий день после рождения телят. Полученный материал исследовали 
на наличие антител к рота- и коронавирусу методом 
ИФА, с помощью набора «АНТИТЕЛА-РОДИКОР-ИФА 
ВИЭВ», антиадгезивные антитела в молозиве выявляли 
в развернутой реакции агглютинации. Постановку тестов, учет и интерпретацию полученных данных проводили согласно инструкциям каждого из наборов. Работа 
выполнена в рамках Госзадания № 0578-2014-0024.

Результаты и обсуждение
Трехкомпонентная вирусно-бактериальная вакцина 
при применении стельным коровам индуцировала интенсивный синтез специфических антител в организме 
иммунизированных животных (табл. 1).
Так, титр антител к ротавирусу КРС в сыворотке 
крови коров опытной группы до начала опыта состав
лял 391,0±103,4, а через 20 дней после иммунизации 
трехкомпонентной вирусно-бактериальной вакциной 
он увеличился в 4,6 раза (Р≥0,999). Спустя 23 дня после 
ревакцинации (на третий день после отела) он стал выше 
в 1,2 раза (Р≥0,95) по сравнению с предыдущим исследованием. У животных контрольной группы средние 
показатели титра антител к ротавирусу в эти периоды 
возрастали незначительно, что говорит о возможном 
контакте с возбудителем, но были ниже, чем таковые 
в опытной группе в 4…5 раз.
По результатам ИФА титр антител к коронавирусу 
КРС в сыворотке крови коров опытной группы после иммунизации значительно превышал исходные 
значения. До вакцинации этот показатель был равен 
230,0±66,7; за 20 дней до отела (перед ревакцинацией) 
увеличился в 4,9 раза (Р≥0,999), а спустя 23 дня после 
повторной иммунизации возрос в 1,5 раза (Р≥0,999). 
В контрольной группе коров в эти же сроки средние показатели титра антител оставались на одном 
уровне — 314,9±176,5.
В молозиве вакцинированных животных концентрация антител к ротавирусу равнялась 14040,0±817,2 
(Р≥0,999) и превышала контрольные значения в 20 раз. 
Средний уровень молозивных антител к коронавирусу у 
привитых животных был выше в 17,6 раза, чем таковой 
в контрольной группе, составляя 15200,0±783,9 (Р≥0,999).
В молозиве первого удоя коров опытной группы средние значения титра антител к адгезинам E. coli составляли к К 99 — 6765,7±366,6 (Р≥0,999); к F 41 — 
1868,6±427,6 (Р≥0,999) и к Att 25 — 1382,8±474,9 
(Р≥0,999). В контрольной группе животных они были 
значительно ниже — 400,0±295,35; 80,0±28,3 и 27,5±7,5, 
соответственно.
Титр антител к адгезинам E. coli у коров изменялся 
следующим образом (табл. 2).
Анализ результатов исследования показал, что среднее значение уровня антител к адгезину К 99 в опытной 
группе коров, привитых вирусно-бактериальной вакциной, за 40 дней до отела (до вакцинации) составил 
68,5±26,4, через 20 дней после иммунизации он стал 
достоверно выше в 9 раз (617,1±369,6). В контрольной 
группе коров этот показатель изменялся незначительно 
(64,3±39,6), по сравнению с первоначальным (60,0±45,0).
К адгезину F 41 в опытной группе уровень антител 
до введения вакцины был равен 240,0±180,0, после 
иммунизации он увеличился в 2,7 раза и составил 
667,0±307,0. В контроле средний показатель титра анти
1. Содержание антител к рота- и коронавирусу крупного рогатого скота в сыворотке крови и молозиве коров
The content of antibodies to bovine Rota-and coronavirus in blood serum and colostrum of cows

Период исследования

Титр антител к ротавирусу 
(М±m) по группам
Титр антител к коронавирусу 
(М±m) по группам

опытная 
контрольная 
опытная
контрольная 

За 40 дней до отела (до вакцинации)
391,0±103,4
380,0±96,2
230,0 ± 66,7
279,1±170,4

За 20 дней до отела (после первой вакцинации)
1815,4±144,5***
404,3±191,4
1138,5±72,5***
314,0±189,4

Через 3 дня после отела
2248,2±148,9*
411,0±210,7
1706,7±33,5***
314,9±176,5

Молозиво первого удоя
14040,0±817,2***
702,5±243,1
15200,0±783,9***
862,0±695,7

Примечание: * Р0,95; *** Р0,999 — достоверность разницы средних величин между периодами исследования.

Симанова И.Н., Макарова В.Н., Бадеева О.Б., Корюкина М.В., Мникова, Л.А.
Ишкова Т.А., Соколова Н.А., Горбатов А.В., Юров К.П. 

• РВЖ • № 6/2018 •
11

Динамика антител в крови и молозиве коров, иммунизированных трехкомпонентной вирусно-бактериальной вакциной

тел к этому адгезину стал равен 50,6±24,0 за 20 дней 
до отела, по сравнению с первоначальным значением 
(48,6±19,8) за 40 дней до отела.
К адгезину Att 25 в опытной и контрольной группах титр антител до вакцинации был равен 255,4±91,6 
и 46,6±18,4, соответственно. Через 20 дней средний 
показатель стал равен 937,14±792,0 — в опыте и 
50,0±17,6 — в контроле.
Титр секреторных антител к адгезину К 99 в молозиве первого удоя у коров опытной группы составлял 
675,5±154,9, к адгезину F 41 — 728,9±148,7, к адгезину 
Att 25 — 1022,0±120,6. Эти показатели были достоверно 
выше контрольных (Р0≥0,95, Р≥0,99, Р≥0,999).

Заключение
Проведенные исследования показали, что иммунизация 
стельных коров трехкомпонентной вирусно-бактериальной вакциной способствует выработке антител к 
компонентам препарата в достаточно высоких титрах, 
что обеспечит высокий уровень колострального иммунитета у новорожденных телят.

Библиография
1. 
Воеводина, Ю.А. Результаты применения гаммаглобулиновых фракций 
гипериммунной сыворотки к адгезинам E. coli. / Ю.А. Воеводина, В.Н. Макарова, А.В. Горбатов и др. // Труды ВИЭВ. — 2013. — № 77. — С. 52–54.
2. 
Писаренко Н.А. Молозиво, его состав, свойства и значение для новорожденных телят: методическое пособие / Н.А. Писаренко. — Ставрополь: 
Издательство Ставропольского научно-исследовательского института 
животноводства и кормопроизводства, 2004. — 19 с.
3. 
Макарова, В.Н. Видовой спектр микробных ассоциаций, выделенных 
от телят с желудочно-кишечными заболеваниями / В.Н. Макарова, 
И.Н. Симанова, О.Б. Бадеева // Российский ветеринарный журнал. — 
2015. — № 4. — С. 34–35.
4. 
Юров, К.П. Современный подход к диагностике респираторных инфекций крупного рогатого скота, вызываемых корона- и герпесвирусами / 
К.П. Юров, С.В. Алексеенкова, А.В. Пчельников и др. // Ветеринария. — 
2013. — № 9. — С. 23–29.
5. 
Яромчик, Я.П. Иммуногенность ассоциированной инактивированной 
вакцины против ротавирусной инфекции и колибактериоза крупного 
рогатого скота / Я.П. Яромчик // Ученые записки УО ВГАВМ. — 2012. — 
№ 48. — С. 59–62.
6. 
Badiei, K. Fecal rotavirus antigen in diarrheic calves of high and average 
producing Holstein dairy cows / K. Badiei, M. Pourjafar, M. Ghane // Global 
Veterinaria. — 2010. — No. 5. — pp. 175–179.
7. 
Brennet, J. Passive Lactogenic Immunity in Calves. / J. Brennet // Israel 
J. Vet. Med. — 1991. — No. 46. — pp. 1–12.
8. 
Donovan, D.C. Effect of maternal cell transferred with colostrum on cellular responses to pathogen antigens in neonatal calves / D.C. Donovan, 
A.J. Reber, J.D. Gabbard et al. // Amer. J. Vet. Res. — 2007. —No. 68. — 
pp. 778–782.

9. 
Etzei, L.R. Development of automated turbidimetric immunoassay 
for quantification of bovine serum immunoglobulin / L.R. Etzei, 
R.E. Strohberhn, J.K. McVicer // Amer. J. Vet. Res. — 1997. — No. 58. — 
pp. 1201–1205.
10. 
Gooden, S.M. Colostrum management for dairy calves / S.M. Gooden // Vet. 
Clinics Food Anim. — 2008. — Mar. 24 (1) — pp. 19–39.
11. 
Johnson, J.L. Effects of feeding heat-treated colostrums on passive transfer 
of immune and nutritional parameters in neonatal dairy calves / J.L. Johnson, 
S.M. Godden, T. Molitor et al. // J. Dairy Sci. — 2007.  — No. 11 — pp. 589–591.

References см. на сайте издательства logospress.ru

ABSTRACT
I.N. Simanova1, leading researcher of the Department for the study of animal diseases 
of infectious etiology, the applicant, V.N. Makarova1, candidate of veterinary Sciences, 
senior researcher of the Department for the study of animal diseases of infectious 
etiology, O.B. Badeeva1, senior researcher of the Department for the study of animal 
diseases of infectious etiology, M.V. Korukina1, Junior researcher of the Department 
for the study of animal diseases of infectious etiology, L.A. Mnikova2, candidate of 
biological Sciences, leading researcher of the laboratory of Virology, T.A. Ishkova2, 
researcher of the laboratory of Virology, N.A. Sokolova2, candidate of biological 
Sciences, leading researcher of the laboratory of Microbiology, A.V. Gorbatov2, 
candidate of veterinary Sciences, acting head of Microbiology laboratory, K.P. Yurov2, 
honored worker of science of the Russian Federation, doctor of veterinary Sciences, 
Professor, head of Virology laboratory.

1 Vologda branch of the Federal State Budgetary Scientific Institution «Federal Research 
Center — All-Russian Scientific Research Institute of Experimental Veterinary Medicine named 
after K.I. Scriabin and Ya.R. Kovalenko» of the Russian Academy of Sciences (Vologda branch 
of the FSBI FNTS VIEV RAS) (10, Chekhova str., Vologda, Russia, 160009) (nivs35@mail.ru).

2 Federal State Budgetary Scientific Institution «Federal Research Center — All-Russian 
Scientific Research Institute of Experimental Veterinary Medicine named after KI. Scriabin and 
Ya.R. Kovalenko» of the Russian Academy of Sciences (Federal State Scientific Institution FSBI 
VIV RAN) (building 1, 24, Ryazansky Prospect, Moscow, 109428) (viev@mail.ru)

Dynamic of antibodies in blood and colostrum of cows immunized with three-component viral 
and bacterial vaccine. The article presents the results of testing the immune status of cows 
vaccinated with a three-component viral-bacterial vaccine. It was found that vaccine induces 
in deep-seated cows a high titers of serum antibodies to the bovine rotavirus and coronavirus, 
as well as adhesines of E. coli.
Purpose. To study the dynamics of the formation of antibodies in the blood and colostrum of 
cows immunized with a three-component viral-bacterial vaccine.
Materials and methods. Cows were immunized with a three-component viral-bacterial vaccine 
(approved on January 27, 2014) in a cattle-breeding farm in the Vologda Oblast, unfavorable for 
gastrointestinal infections. The obtained material was examined for the presence of antibodies to 
the rota- and coronavirus using the ELISA method, using the ANTI-TELA-RODIKOR-ELISA VIEV 
kit, anti-adhesive antibodies in colostrum were detected in the developed agglutination reaction.
Results. The immune response to the introduction of the vaccine produced by FGBNU VIEV was 
detected in all animals, whereas in the serum of cows in the control groups it was significantly 
lower. In the colostrum of the first milk yield, the titers of antibodies to the rota and coronavirus 
were significantly higher compared with the control ones. All indicators indicate sufficient 
antigenic activity of the tested vaccine.
Conclusion. Studies have shown that immunization of pregnant cows with a three-component 
viral-bacterial vaccine contributes to the development of antibodies to the components of the drug 
in sufficiently high titers, which will ensure a high level of colostral immunity in newborn calves.
Keywords: vaccination, stele cows, colostrum, antibody titers, immunity.

DOI: 10.32416/article_5c050ab7ca8b27.10355831

2. Уровень специфических антител к адгезинам E. coli в реакции агглютинации 
2. The level of specific antibodies to adhesins E. coli agglutination reaction

Материал, 
время взятия

Титр антител к адгезинам E. coli, M±m, по группам
К 99
F 41
Att 25
опытная
контрольная
опытная
контрольная
опытная
контрольная

Сыворотка крови
до вакцинации
(за 40 дней до отела)
68,5±26,4
60,0±45,0
240,0±180,0
48,6±19,8
255,4±91,6
46,6±18,4

Сыворотка крови после 
первой вакцинации
(за 20 дней до отела)
617,1±369,6
64,3±39,6
667,0±307,0
50,6±24,0
937,14±792,0
50,0±17,6

Молозиво первой
лактации
675,5±154,9*
240,0±34,9
728,9±148,7**
150,0±15,05
1022,0±120,6***
210,0±22,3

Примечание: * — Р0,95; ** — Р0,99; *** — Р0,999 — достоверность разницы средних между опытной и контрольной 
группой.