Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2014, № 3

ISSN 5181501959

сельскохозяйственные
животные

3

2014 ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Новости науки и практики

Кормление

Акушерство/гинекология/
биотехника размножения

Биохимия

Эпизоотология

Эмбриология

Лабораторная диагностика

Современные фармакои биопрепараты

РВЖ • СХЖ • № 3/2014
3

Генетика Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
3/2014

Новости науки и практики . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5 

Оригинальные статьи

Кормление

Кульмакова Н.И., Леонтьев Л.Б.
Кормовая добавка на основе терпеноидов 
в технологии производства свинины . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8

Акушерство/гинекология/биотехника размножения

Лаптев Г.Ю., Новикова Н.И., Ильина Л.А., 
Йылдырым Е.А., Думова В.А., Корочкина Е.А.
Исследование вагинальной слизи высокопродуктивных коров 
в послеотельный период посредством ПЦР в реальном времени . . . . . 10

Христиановский П.И., Гребенюк С.Е., Белименко В.В.
Изменение содержания прогестерона в крови коров 
и телок под влиянием гормональных препаратов и физиотерапии . . . 13

Биохимия

Ярцева И.С., Азарнова Т.О., Индюхова Е.Н., 
Антипов А.А., Найденский М.С., Зайцев С.Ю. 
Соотношение транспортных белков церулоплазмина, трансферрина 
и состояние «красной крови» при использовании некоторых
естественных метаболитов у цыплят кросса «Шейвер 2000» . . . . . . . 15

Эпизоотология

Зеленуха Е.А., Сидорчук А.А.
Серомониторинг при вакцинации свиней 
против парвовирусной инфекции в промышленном комплексе . . . . . 20

Эмбриология

Борхунова Е.Н., Кондратов Г.В., Титов В.Ю.
Морфобиохимическая характеристика скелетных мышц кур 
в эмбриогенезе на примере линий Б-56 и Б-79 . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Лабораторная диагностика

Георгиу Х., Белименко В.В.
Современные лабораторные методы диагностики 
анаплазмоза крупного рогатого скота и овец . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31

Современные фармако- и биопрепараты

Стокер Л., Эндрюс С., Вайменга В., Брю Т.
Исследование перекрестной защиты против 
вариантного штамма 793В вируса инфекционного бронхита кур 
при использовании различных сочетаний вакцин . . . . . . . . . . . . . . . . 34

Крейчи Р., Ньюберри Дж., Палиа В.
Actinobacillus pleuropneumoniae и перекрестная защита . . . . . . . . . . 36

News of science & practice . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 5 

Original articles

Feeding

Kulmakova N.I., Leontyev L.B.
Feed Additive Based on Terpenoids 
in Pork Production Technology . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8

Obstetrics/Gynaecology/ Biotechnics of the Reproduction

Laptev G.Yu, Novikova N.I., Ilyina L.A., 
Yyldyrym E.A., Dumova V.A., Korochkina E.A.
Research of Vaginal Bacterial Slime Matrix of High-yielding Cows 
in Postpartum Period by Real-time PCR-method . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10

Christianovsky P.I., Grebenyuk S.E., Belimenko V.V.
Dynamic of Progesterone Levels in the Blood of Cows 
and Heifers by Influence of Hormonal Therapy and Physiotherapy . . . . . . 13

Biochemistry

Yartseva I.S., Azarnova T.О., Indyukhova E.N.,
Antipov A.A., Naydensky M.S., Zaitsev S.Yu. 
Ratio of the Transport Proteins Сeruloplasmin, Transferrin, 
and the Status of the «Red-blood» when Using Some 
Natural Metabolites in Chickens Cross «Shaver 2000» . . . . . . . . . . . . . . 15

Epizootology

Zelenukha E.A., Sydorchuk A.A.
Seromonitoring at Vaccination against Parvovirus Infection 
of Pigs in an Industrial Farm . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 20

Embryology

Borkhunova E.N., Kondratov G.V., Titov V.Y.
Morphobiochemical Characteristic of Skeleton Muscles of Hens 
in an Embryogenesis on an Example of Lines Б-56 and Б-79 . . . . . . . . . . 22

Laboratory diagnostics

Georgiou Ch., Belimenko V.V.
Modern Laboratory Detection Methods 
of Anaplasmosis of Cattle and Sheeps . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31

Modern pharmacological drugs & biopreparations

Stooker L., Andrews S., Wijmenga W., Bru T.
Cross Protection Studies 
with Different Combinations of Vaccines against 
the Infectious Bronchitis 793 Strain . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

Krejci R., Newberry J., Palya V. 
Actinobacillus pleuropneumonia and the Importance of Cross Protection . . . 36

Содержание/Contents

Научнопрактический журнал
Издается с марта 2005 г.

«Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные
животные» входит в Перечень ВАК ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть
опубликованы основные научные результаты диссертации
на соискание ученой степени доктора и кандидата наук
(по зоотехническим и ветеринарным специальностям,
по биологическим наукам)

Учредитель: Издательский дом «Логос Пресс»
Директор М.В. Быльков 
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Шефредактор Г.В. Богданова
Компьютерный дизайн Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127055, Москва, а/я 9
Email: rvj@logospress.ru, info@logospress.ru
Сайт: http://logospress.ru
Тел.: +7/495/2204816, факс: +7/495/6890575

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС7757776 от 18.04.2014

Оформление подписки
Каталог «Почта россии» — 12594 (на год)

Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством. Редакция не несет ответственности за содержание рекламных материалов.
Мнение редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей 

Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение издания допускается без размещения знака информационной продукции.

Главный редактор
Ф.И. Василевич, докт. вет. наук, академик РАН, проф., ректор ФГБОУ МГАВМиБ

Выпускающий редактор
В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru)

Редакционная коллегия
Н.А. Балакирев, докт. с.х. наук, академик РАН, проф., проректор по научной работе ФГБОУ
МГАВМиБ
Н.П. Буряков, докт. биол. наук, проф. декан факультета ВЗО и ДО РГАУ—МСХА 
им. К.А. Тимирязева
О.А. Верховский, докт. биол. наук, проф., президент АНО «НИИ ДПБ»
Н.А. Власов, докт. биол. наук, проф. (Федеральная служба по ветеринарному и фитосанитарному
надзору)
Л.И. Грищенко, докт. вет. наук, эксперт в области ихтиопатологии, ФГБОУ МГАВМиБ
Н.В. Данилевская, докт. биол. наук, профессор, зав. кафедрой фармакологии и токсикологии
ФГБОУ МГАВМиБ
А.В.Жаров, докт. вет. наук, эксперт в области патологической анатомии (ФГБОУ МГАВМиБ)
С.Ю. Зайцев, докт. биол. наук, докт. хим. наук, проф., зав. кафедрой химии имени профессоров
С.И. Афонского, А.Г. Малахова (ФГБОУ МГАВМиБ)
В.И. Максимов, докт. биол. наук, проф. проректор Учебнометодического объединения вузов
РФ по образованию в области зоотехнии и ветеринарии, эксперт в области физиологии (ФГБОУ
МГАВМиБ)
А.В. Пронин, докт. биол. наук, проф. (Минздрав РФ)
В.В. Пронин,докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой морфологии, физиологии и ветсанэкспертизы
(Ивановская ГСХА имени академика Д.К. Беляева)
А.В. Санин, докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета НИИЭМ
им. Н.Ф. Гамалеи
А.А. Сидорчук, докт. вет. наук, проф., зав. кафедрой эпизоотологии и инфекционных болезней
ФГБОУ МГАВМиБ
Г.В. Сноз, докт. вет. наук, проф., эксперт в области диагностики болезней и терапии животных
(ФГБОУ МГАВМиБ)
Л.Ф. Сотникова, докт. вет. наук, проф., эксперт в области офтальмологии, зав. кафедрой
биологии и патологии мелких домашних, лабораторных и экзотических животных ФГБОУ
МГАВМиБ
Ю.Н. Федоров, докт. биол. наук, эксперт в области иммунологии (ВАК Минобразования и
науки РФ, член бюро Отделения ветеринарной медицины РАН) 

Журнал выпускается при участии:
Учебнометодического объединения высших учебных заведений 
Российской Федерации по образованию 
в области зоотехники и ветеринарии

Федеральной службы по ветеринарному 
и фитосанитарному надзору 
(Россельхознадзор)

Департамента ветеринарии 
Министерства сельского хозяйства РФ

Этот день мы отмечаем как важную государственную
дату впервые. Основанием для ее учреждения послужило распоряжение Правительства Российской Федерации от 08 мая 2014 года № 774-р, поручившее Министерству сельского хозяйства России принять нормативный акт об установлении профессионального праздника — Дня ветеринарного работника.
В соответствии с этим поручением Министерство
сельского хозяйства России приказом от 11 июня 2014
года постановило: профессиональный праздник — День
ветеринарного работника отмечать 31 августа.
Такому знаменательному для нас событию предшествовало обращение группы ученых и практиков к Святейшему Патриарху Московскому и всея Руси Кириллу
с просьбой закрепить своим святым благословением сложившееся почитание российскими ветеринарами святых мучеников Флора и Павла в день их церковной памяти 31 августа, а также благословить этот день как профессиональный праздник ветеринарной службы России.
Святейший Патриарх Кирилл нашел данную инициативу полезной для церкви и общества и 23 марта 2011 года издал указ, согласно которому день памяти святых
мучеников Флора и Павла 18/31 августа благословляется считать церковным праздником ветеринаров на канонической территории Русской Православной церкви.
Признания своих заслуг, авторитета и этой высокой
чести — учреждения Дня ветеринарного работника как
государственного праздника ветеринарные специалисты заслужили своей профессиональной и социально
значимой деятельностью на благо Отечества.

Только в сельском хозяйстве
трудится свыше 100 тысяч ветеринарных специалистов.
Несмотря на сложные, а порой
опасные условия работы они
самоотверженно сражаются с
болезнями животных и обеспечивают снабжение населения
доброкачественными и безвредными продуктами питания.
Значительная часть ветеринарных работников занята обслуживанием мелких домашних животных — так называемых животных-компаньонов. Их здоровье обеспечивают опытные профессионалы.
Ветеринарная составляющая заложена во многих директивных документах по пищевой и биологической
безопасности.
Впервые отметить День ветеринарного работника как
государственный праздник всех собрала Российская ветеринарная ассоциация. Символично, что 1 сентября
в День знаний на площадке Московской государственной академии ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина Российская ветеринарная ассоциация собрала представителей всех направлений ветеринарной отрасли. Теперь для Московской Ветеринарной Академии две ключевые даты — 31 августа 
и 1 сентября — будут отмечаться друг за другом еще
долгое время!

31 августа вся ветеринарная общественность отметила 
свой профессиональный праздник — День ветеринарного работника

РВЖ • СХЖ • № 3/2014
5

НОВОСТИ НАУКИ И ПРАКТИКИ

Приказ Министерства сельского хозяйства 
«Об установлении профессионального праздника — Дня ветеринарного работника»

МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА
РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ
(Минсельхоз России)

ПРИКАЗ
от 11 июня 2014 г.                                                                                   №188
Москва

Об установлении профессионального праздника — Дня ветеринарного работника

В соответствии с пунктом 2 Указа Президента Российской Федерации от 31 июля 2013 г.
№659 «О порядке установления в Российской Федерации памятных дней и профессиональных
праздников» приказываю:

Установить профессиональный праздник — День ветеринарного работника и отмечать его
31 августа.
Министр
Н.В. Федоров

Президент Российской
ветеринарной ассоциации 
П.П. Рахманин

августа вся ветеринарная общественность отметила свой профессиональный праздник — 
День ветеринарного работника

Всего в актовом зале академии собрались более 500 человек. Это представители Министерства сельского хозяйства РФ
и Россельхознадзора, Евразийской Экономической Комиссии
и руководство ветеринарных
служб наших соседей по Таможенному союзу, руководители
научно-исследовательских институтов и высших учебных заведений в сфере ветеринарии,
ветеринарные врачи животноводческих комплексов и птицеводческих хозяйств и частнопрактикующие ветеринарные специалисты, а также
преподаватели и студенты Академии.
Торжественное мероприятие открыл Исполнительный директор Российской ветеринарной ассоциации
Сергей Владимирович Лахтюхов, обозначив в своей речи значимость праздника — Дня ветеринарного работника — и надежду на дальнейшее объединение всех
специалистов отрасли.
С приветственными словами
также выступили: Президент
Российской ветеринарной ассоциации Павел Петрович Рахманин, Главный государственный
ветеринарный инспектор Российской Федерации, заместитель руководителя Россельхознадзора Евгений Анатольевич
Непоклонов, директор Департамента ветеринарии Министерства сельского хозяйства РФ
Светлана Георгиевна Дресвянникова, Председатель Центрального комитета профсоюзных работников Агропромышленного комплекса Российской
Федерации Наталья Николаевна Агапова, ректор Московской академии ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина Федор Иванович Василевич, вице-президент Ассоциации
практикующих ветеринарных врачей, президент Гильдии
ветеринарных врачей, директор ветеринарной клиники
«Мовет» Александр Викторович Ткачев-Кузьмин, заместитель директора департамента санитарных, фитосанитарных и ветеринарных мер Евразийской экономической комиссии Владимир Викторович Субботин, Гене
ральный директор Казахского
научно-исследовательского ветеринарного института Министерства сельского хозяйства Республики Казахстан Ахметжан Акиевич Султанов,
Начальник Главного управления ветеринарии Московской
области — главный государственный ветеринарный инспектор Московской области
Барсуков Юрий Иванович,
председатель Комитета ветеринарии города Москвы, главный государственный ветеринарный инспектор города Москвы Александр Николаевич Туник, Генеральный директор Национального
союза свиноводов Юрий Иванович Ковалев.
Были вручены Благодарности и Грамоты от Российской ветеринарной ассоциации,
Россельхознадзора и Главного управления ветеринарии
Московской области. В адрес
Ассоциации прозвучали ответные слова благодарности и пожелания успехов в деле повышения престижа ветеринарии.
В торжественном мероприятии приняли участие творческие коллективы студентов
Московской ветеринарной
академии и лауреаты различных Всероссийских и Международных конкурсов. Кульминацией праздника стало выступление хора Свято-Данилова монастыря.

Празднование Дня ветеринарного работника — это очередной повод собраться всем вместе, проанализировать текущую
ситуацию, наметить планы на
будущее, определить перспективы, вспомнить историю, а может
быть, и подтянуться под предшественников, многими из которых гордится не только наша
страна, но все мировое научное
сообщество.

6
РВЖ • СХЖ • № 3/2014

Исполнительный директор
Российской ветеринарной
ассоциации 
С.В. Лахтюхов

Председатель 
Центрального комитета
профсоюзных работников
Агропромышленного
комплекса 
Российской Федерации 
Н.Н. Агапова

Ректор МГАВМиБ 
Ф.И. Василевич

Выступление хора СвятоДанилова монастыря
Участники торжества

Директор Департамента
ветеринарии Министерства
сельского хозяйства РФ 
С.Г. Дресвянникова

Заместитель директора
департамента санитарных,
фитосанитарных 
и ветеринарных мер
Евразийской Экономической
Комиссии 
В.В. Субботин

Ключевые слова: абсолютный прирост, аминокислотный состав мяса, белок мяса, комплексная
кормовая добавка, свиноматка, среднесуточный
прирост

Введение
На рост и развитие животных, их продуктивные качества влияют порода, наследственность и условия
внешней среды. Из многих факторов внешней среды наибольшее значение имеет кормление. В настоящее время сельскохозяйственные предприятия зачастую сталкиваются с проблемой обеспечения животных полноценными кормами. Корма, выращенные
в условиях хозяйства, не всегда содержат в достаточном количестве биологически важные компоненты, необходимые для полноценного роста и развития животного. Вследствие этого при интенсивной
технологии содержания животные не могут полностью
реализовать свой генетический потенциал по продуктивным качествам.
По вопросам полноценного кормления в условиях
промышленного производства опубликовано достаточно работ, в которых не только констатируется само существование такой проблемы и раскрываются
причины ее возникновения, но аргументированно и
обоснованно указаны пути ее решения. Многие авторы одним из путей достижения сбалансированного
кормления считают применение различных кормовых
добавок.
За последние годы наукой и практикой решен большой круг вопросов по применению различных минерально-витаминных комплексных кормовых добавок,
что в значительной степени повлияло на интенсификацию производства свинины. Вместе с тем многие вопросы, связанные с использованием, поиском синтетических и природных комплексных кормовых добавок,
остаются актуальными [3, 5].
Большой практический интерес представляет использование в качестве кормовых добавок комплекса биологически активных веществ на основе терпеноидов.
Применяемые в настоящее время терпеноиды и смоляные кислоты нетоксичны, имеют высокую усвояемость,
легко смешиваются с кормами, оказывают стимулирующий эффект на рост и развитие животных [4].
В научно-производственном опыте мы использовали
кормовую добавку, представляющую собой смесь природных смоляных кислот, макро- и микроэлементов,
взятых в физиологически сбалансированных пропорциях, а также аминокислот и витаминов.

Цель исследования
Научно обосновать использование кормовой добавки
на основе терпеноидов в технологии производства свинины в условиях Чувашской Республики.

Материалы и методы
Для эксперимента по изучению влияния кормовой добавки на рост и развитие поросят были сформированы 2 группы (опытная и контрольная) поросят-отъемышей крупной белой породы (по n=10 в каждой), живой массой 15…16 кг. Содержание поросят-отъемышей — групповое, в одинаковых условиях. Поросята
контрольной группы получали комбикорма, составленные на основе местного зерна. Поросятам опытной
группы вместе с аналогичными комбикормами давали кормовую добавку из расчета 0,05 кг/кг живой
массы, курсами по 20 суток, с последующим перерывом 10 суток. Продолжительность опытов составила 210 суток.
Рост поросят оценивали путем контроля живой массы от начала опыта и до конца, с расчетом среднесуточного и абсолютного прироста. Взвешивали поросят в утренние часы до кормления.
В последующем проводили убой свиней. Химическому анализу подвергали длиннейшую мышцу спины. Определяли в ней содержание белка по ГОСТ
25011-81 «Мясо и мясные продукты. Методы определения белка» [2]. Аминокислотный состав белка
определяли посредством тонкослойной хроматографии [1].

Результаты и обсуждение
Результаты роста и развития поросят представлены 
в таблице.

Анализируя полученные результаты, можно указать
на то, что к 90-м суткам в опытной группе живая 

УДК 636.087.7

Кормовая добавка на основе терпеноидов
в технологии производства свинины

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Кормление 8
РВЖ • СХЖ • № 3/2014

Н.И. Кульмакова, доктор сельскохозяйственных наук (kni11@mail.ru), Л.Б. Леонтьев, доктор биологических наук
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования
«Российский государственный аграрный университет — МСХА имени К.А. Тимирязева» (Москва).

Включение в технологию выращивания свиней комплексной кормовой добавки на основе терпеноидов, макрои микроэлементов, аминокислот и витаминов приводит к повышению среднесуточного и абсолютного прироста
живой массы, а также к повышению пищевой и биологической ценности мяса.

Динамика роста и развития поросят

Группа 
поросят

Возраст
поросят,
сутки

Живая 
масса, кг

Прирост 
живой массы, кг

в начале опыта
в конце опыта
среднесуточный
абсолютный

Опытная

61…90
16,60±0,20
29,80±0,77
0,44±0,02
13,20±0,57

91…130
29,80±0,77
56,20±1,34
0,66±0,03
26,40±1,51

131…210
56,20±1,34
106,60±3,55
0,63±0,03
50,40±1,51

Контрольная

1…60
0,95±0,06
15,57±0,13
0,24±0,03
14,62±0,10

61…90
15,57±0,13
24,27±0,77
0,29±0,02
8,70±0,57

91…130
24,27±0,77
44,27±2,00
0,50±0,03
20,00±1,14

131…210
44,27±2,00
82,67±3,22
0,48±0,02
38,40±1,42

Кормовая добавка на основе терпеноидов в технологии производства свинины

масса у поросят была выше на 22,8 % (р<0,001), чем в
контрольной. К следующему сроку наблюдения,
130-м суткам, в опытной группе показатель был выше на 23,1 % (р<0,001). К концу периода наблюдений,
210-м суткам, разница в живой массе между группами
была 23,4 % (Р<0,001) в пользу опытной группы, как
и ранее.
Включение комплексной кормовой добавки на основе терпеноидов в рацион поросят-отъемышей в период выращивания до массы 100…110 кг отразилось на
интенсивности их роста. Так, среднесуточный прирост
живой массы у поросят опытной группы составил в
среднем 0,58±0,03 кг против 0,42±0,02 кг (р<0,001) у поросят контрольной группы. При этом валовой прирост
живой массы от 60 до 210 суток в опытной группе
составил 90,0 кг, в контрольной — 67,1 кг.
Анализ химического состава длиннейшей мышцы
спины свиней показал, что наиболее ценным в пищевом отношении было мясо, полученное от свиней опытной группы: количество белка в нем было выше, чем
в мясе, полученном от животных контрольной группы,
на 15,9 % (р<0,05).
Основным фактором биологической полноценности
белковых продуктов считают их аминокислотный состав [6]. В мясе животных опытной и контрольной группы содержание таких незаменимых аминокислот, как
валин, метионин, изолейцин, лейцин, триптофан не
имело достоверных различий. Однако их концентрация в мышечной ткани свиней, получавших комплексную кормовую добавку, была выше по сравнению с мышечной тканью свиней контрольной группы. В мясе
животных опытной группы был достоверно выше уровень следующих незаменимых аминокислот: треонина — на 43,5 % (р<0,05), фенилаланина — на 40,2 %
(р<0,05) и лизина — на 28,0 % (р<0,01) и заменимых аминокислот: глутаминовой кислоты — на 33,3 % (р<0,05),
аргинина — на 34,9 % (р<0,01). В контрольной группе
было обнаружено достоверное возрастание концентрации следующих заменимых аминокислот: глицина —
на 27,4 % (р<0,01), аланина — на 27,1 % (р<0,05).
Белково-качественный показатель, определенный по
соотношению количества триптофана к оксипролину,
в опытной группе составил 3,28, в контрольной — 2,54,
что указывает на полноценность белков мяса опытной группы.
Результаты наших исследований свидетельствуют о
том, что в белке мяса животных опытной и контрольной группы присутствовали все незаменимые аминокислоты в количестве 46,4 и 40,5 % по отношению к общему белку, соответственно. В белке мяса свиней опытной группы суммарное содержание незаменимых аминокислот по сравнению с аналогами контрольной
группы было выше на 7,84 г на 100 г белка.

В белке мяса свиней опытной группы было обнаружено четыре лимитирующих аминокислоты, причем первой из них оказался лейцин (скор=76,5 %), в
контрольной группе было выявлено пять лимитирующих аминокислот, первой также оказался лейцин
(скор=60,9 %).
Мясо свиней опытной группы характеризовалось
более высоким содержанием большинства незаменимых аминокислот. В контрольной группе, напротив,
было больше заменимых аминокислот, например, оксипролина, входящего в состав соединительнотканного белка коллагена, высокое содержание которого
снижает общую питательность мяса, придает жесткость и отрицательно сказывается на вкусовых качествах.
Результаты исследования подтверждают, что при
внесении комплексной кормовой добавки в рацион молодняка свиней в последующем удается получить мясо, характеризующееся более высокой пищевой и биологической ценностью за счет увеличения концентрации белка и незаменимых аминокислот, возрастания белково-качественного показателя
на 22,6 %.

Выводы
Включение в рацион поросят-отъемышей на стадиях выращивания и откорма кормовой добавки,
представляющей собой смесь природных смоляных
кислот, макро- и микроэлементов, взятых в физиологически сбалансированных пропорциях, а также аминокислот и витаминов, увеличивает среднесуточный и абсолютный прирост живой массы и
улучшает качество мяса: в нем возрастает содержание белка и незаменимых аминокислот. Применение указанной добавки следует считать технологически оправданным мероприятием, так как в результате выявляются дополнительные резервы увеличения производства продуктов свиноводства, что
было показано в эксперименте в условиях Чувашской Республики.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Антипова, Л.В. Методы исследования мяса и мясных продуктов / Л.В. Антипова,
И.А. Глотова, И.А. Рогов. — М.: Колос, 2001. — 376 с.
2. ГОСТ 25011-81 Мясо и мясные продукты. Методы определения белка. Введен
01.01.1983. — М.: Стандартинформ, 2010. — 8 с.
3. Константинов, В. Эффективность использования ферментных препаратов в рационах свиней / В. Константинов, Н. Солдатенков, Е. Кудряшов // Свиноводство. — 2005. —
№ 2. — С. 21–23.
4. Лаврентьев, А.Ю. Совершенствование технологии выращивания молодняка сельскохозяйственных животных с использованием кормовых добавок и биологически активных веществ: автореф. дис. … докт. с.-х. наук: защищена 31.05.07: утверждена 02.11.07
/ А.Ю. Лаврентьев. — Чебоксары: ЧГСХА, 2007. — 47 с.
5. Сечин, В.А. Биоконверсия протеина и энергии кормов / В.А. Сечин, О.А. Ляпин,
С.Н. Семенова // Свиноводство. — 2010. — № 3. — С.40–42.
6. Технохимический контроль производства мяса и мясопродуктов / Н.К. Журавлев
[и др.]. — М.: Колос, 2001. — 476 с.

РВЖ • СХЖ • № 3/2014
9

SUMMARY
N.I. Kulmakova, L.B Leontyev
Russian State Agrarian University — MAA named after K.A. Timiryazev (Moscow).

Feed Additive Based on Terpenoids in Pork Production Technology. Including in pig breeding complex feed additive based on terpenoids macroand micronutrients, amino acids and vitamins, increases the
average of daily and absolute weight of gain, and at slaughter it allows to get meat that is highly nutritional
and biological value.

Ключевые слова: высокопродуктивные коровы, микробиоценоз влагалища, послеродовый период, ПЦР в
реальном времени
Сокращения: ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота,
ПЦР-РВ — полимеразная цепная реакция в реальном
времени

Введение
Иммунодепрессия, выражающаяся в ослаблении устойчивости организма к воздействию патогенной и условно-патогенной микрофлоры, служит результатом
современного ведения животноводства, часто связанного с неблагоприятными условиями содержания и
кормления животных. Ослабленная иммунная система, а также стрессовое состояние организма матери, особенно в период беременности, негативно
отражаются на течении родов и послеотельного периода (задержание последа, субинволюция матки, острые
послеродовые эндометриты) [3, 4]. Данная патология очень часто приводит к снижению воспроизводительной способности, увеличению сервис-периода
в среднем на 17…30 дней, снижению оплодотворяемости на 17,7…23,3 % и выхода приплода на 7…11 %,
уменьшению молочной продуктивности в среднем
на 24 %, возникновению общей интоксикации организма с последующим поражением почек и печени и,
как следствие, преждевременной выбраковке животных [12, 14]. Поэтому так актуальны своевременная
диагностика и профилактика акушерской патологии
у коров [5, 6].
В настоящее время существует достаточно большой спектр методик исследования половой системы самок, основными являются экспресс-метод диагностики гипотонии матки и эндометритов у коров;
экспресс-метод диагностики острых послеродовых
эндометритов; цитологическое исследование маточных выделений; определение клеточного состава цервикально-вагинальной слизи; прижизненное гистологическое исследование эндометрия; цитологичес
кая диагностика эндометритов у коров и др. Однако число скрининговых методик, используемых в ветеринарном акушерстве, весьма ограничено. Из-за
некоторых особенностей микрофлоры половых путей (преимущественно — некультивируемые виды
анаэробных микроорганизмов [17]) лабораторные исследования не всегда бывают информативными и достоверными.
Появление и развитие современных молекулярно-генетических методов сделало возможным изучение разнообразия микроорганизмов без ограничений, сопутствующих традиционным методам микробиологии,
то есть, минуя стадию культивирования. Один из наиболее перспективных молекулярно-генетических методов — анализ с использованием ПЦР-РВ (количественная ПЦР). С помощью данного метода можно за короткий срок определять содержание бактерий, дрожжей, мицелиальных грибов в половых путях коров,
дифференцировать состояние физиологического равновесия и дисбаланса, на ранних стадиях выявлять возбудителей заболеваний, оценивать действие профилактических и лечебных препаратов, влияющих на микрофлору.

Цель исследования
Провести сравнительный анализ микробиоценоза влагалища высокопродуктивных коров в послеотельный
период с использованием метода ПЦР-РВ.

Материалы и методы
Эксперименты по изучению состава микрофлоры
влагалищных выделений проводили в ЗАО ПЗ «Гатчинское» Ленинградской области на коровах голштинизированной черно-пестрой породы в послеотельный
период. Возраст коров — от 3 до 7 лет, среднегодовая
молочная продуктивность — 8115 кг. Пробы были отобраны у 3 клинически здоровых и 4 больных коров 
(с диагнозом «острый гнойно-катаральный послеродовой эндометрит»).

УДК 577.213.3: 579.62: 636

Исследование вагинальной слизи
высокопродуктивных коров 
в послеотельный период 
посредством ПЦР в реальном времени

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Акушерство / гинекология / биотехника размножения 10
РВЖ • СХЖ • № 3/2014

Г.Ю. Лаптев1, доктор биологических наук (deniz@biotrof.ru), Н.И. Новикова1, кандидат биологических наук,
Л.А. Ильина1, кандидат биологических наук, Е.А. Йылдырым1, кандидат биологических наук, В.А. Думова1,
Е.А. Корочкина2, кандидат ветеринарных наук (e.kora@mail.ru).

1 ООО «Биотроф» (СанктПетербург).

2 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «СанктПетербургская государственная

академия ветеринарной медицины» (СанктПетербург).

Цель данных исследований состояла в сравнительном анализе посредством ПЦР в реальном времени вагинального
микробиоценоза высокопродуктивных коров в послеотельный период. Согласно результатам исследований,
коровы с диагнозом «острый послеродовый эндометрит» имеют более высокое содержание условно-патогенных
и патогенных микроорганизмов по сравнению с клинически здоровыми животными.

Исследование вагинальной слизи высокопродуктивных коров в послеотельный период посредством ПЦР 
в реальном времени

Пробы влагалищных выделений брали из верхнебокового свода влагалища на уровне шейки матки с соблюдением условий асептики.
Состав микрофлоры влагалища коров определяли 
посредством ПЦР-РВ. Принцип метода основан на 
использовании процесса амплификации ДНК, заключающемся в повторяющихся циклах: температурной
денатурации ДНК, отжиге праймеров с комплементарными последовательностями и последующей достройкой полинуклеотидных цепей с этих праймеров термостабильной ДНК-полимеразой. Для анализа количества бактерий, входящих в состав микрофлоры влагалища коров, использовали праймеры, представленные 
в таблице 1. Условия амплификации соответствовали каждому праймеру согласно исследованиям. Для
проведения ПЦР-РВ использовали амплификатор
детектирующий ДТ Lite-4 (ООО «НПО ДНК-Технология», Россия).
После прохождения ПЦР-амплификации в реальном
времени на основании «стандартов» с известной концентрацией геномов программно рассчитывали общее
количество всех бактерий, а также количество микроорганизмов, входящих в отдельные группы [1].
Математическая и статистическая обработки результатов проведены по стандартным методикам дисперсионного анализа [2] с использованием программного обеспечения EXCEL 2010.

Результаты
Сравнительный анализ микробиоценоза вагинальных
выделений показал, что представители нормофлоры,
а также условно-патогенной и патогенной микрофлоры присутствовали во влагалищных выделениях коров обеих опытных групп (табл. 2).
Во влагалищных выделениях коров с диагнозом «эндометрит» наблюдали угнетение представителей нормофлоры: кислот-утилизирующих бактерий Megasphaera spp., Veillonella spp. и Dialister sрp. и стрептококков. Полученные нами данные согласуются с результатами экспериментов [17], согласно которым процентное соотношение представителей филы Firmicutes,
а именно Streptococcus suis, St. uberis и Veillonella spp.,
было значительно ниже во влагалищных выделениях

коров с диагнозом «эндометрит» по сравнению с клинически здоровыми животными.
Содержание во влагалищных выделениях коров из
обеих опытных групп представителей нормофлоры —
молочнокислых бактерий Lactobacillus spp. — находилось ниже предела достоверных значений.
Анализ результатов исследования численности микроорганизмов Lachnobacterium spp., Clostridium spp.,
Staphylococcus spp., актиномицетов Atopobium spp.,
а также дрожжей Candida spр. не выявил достоверных различий между опытными группами. Вероятно,
данные микроорганизмы не являются этиологическим
началом послеотельного эндометрита у коров.
Дисбиотический характер изменения состава микрофлоры у коров с диагнозом «эндометрит» заключался в возрастании численности условно-патогенной
и патогенной групп микроорганизмов по сравнению
с клинически здоровыми коровами. Спектр данных
микроорганизмов включал в себя представителей

РВЖ • СХЖ • № 3/2014
11

1. Праймеры и условия амплификации для анализа количества бактерий, входящих в состав микрофлоры 
влагалища коров, посредством ПЦРРВ

Микроорганизмы
Праймер (5'3')
Ссылка на исследование

Универсальные праймеры на общее количество бактерий
HDA1: ACT CCT ACG GGA GGC AGC AG
HDA2: GTA TTA CCG CGG CTG CTG GCA
22

Lactobacillus sрp.
Lac1: AGC AGT AGG GAA TCT TCC A
Lab667r: CAC CGC TAC ACA TGG AG
22

Megasphaera spp., Veillonella spp., Dialister sрp.
Mega142F: GATGGGGACAACAGCTGGA
MegaX: GACTCTGTTTTTGGGG
15

Streptococcus spp.
SE16SF: AATTCTAATACGACTCACTATAGGGCAAGTCGAGCGAACAGACGA
SE16S R: TGTCACCGGCAGTCAACTTA
24

Lachnobacterium spp. и Clostridium spp.
P930: GTGAAATGCGTAGAGATTAGGAA
P932: GATYYGCGATTACTAGYAACTC
7

Atopobium spp.
10f: AGTTTGATCCTGGCTCAG
534r: ATTACCGCGGCTGCTGG
21

Staphylococcus spp.
TStaG422: GGC CGT GTT GAA CGT GGT CAA ATC
TStaG765: TIA CCA TTT CAG TAC CTT CTG GTA A
22

Candida spр.
Calb28SF: AATTCTAATACGACTCACTATAGGGCGATACTGCCAGCCTAGACC
Calb28S: CGCTCTTCCAGCCATAAGAC
24

Fusobacteriaceae
Fs619F: CGCAGAAGGTGAAAGTCCTGTAT
Fs719R: TGGTCCTCACTGATTCACACAGA
20

Enterobacteriaceae
EnterobacF: CAT TGA CGT TAC CCG CAG AAG AAG C 
EnterobacR: CTC TAC GAG ACT CAA GCT TGC
22

Prevotella spp. и Porphyromonas spp.
BacPre: GAGTACGCCGGCAACGGTGA
rBacPre: TCACCGTTGCCGGCGTACTC
23

Mobiluncus spp. и Corynebacterium spp.
C240F: GGAAGGAYGCATCTTGGCAGTCT
C445R: CATYGGGAARTCRCCGATGA
11

Peptostreptococcus spp.
For: AGAGTTTGATCMTGGCTCAG
Rev: ACGGGCGGTGTGTRC
16

Eubacterium spp.
For: TCCCTTACTAGGCACCCA
Rev: AGGGAAUGAUCCGUGGGU
21

2. Общее количество бактерий и содержание некоторых 
групп микроорганизмов в пробах, lg геномов/г

Группа 
микроорганизмов

Клинически 
здоровые 
коровы (n=3)

Коровы 
с диагнозом
«эндометрит» (n=4)

Общее количество бактерий
6,6±3,9
7,6±5,1

Нормофлора

Lactobacillus spp. (лактобактерии)
<п.д.о.*
<п.д.о.

Megasphaera spp., Veillonella spp. и
Dialister sрp.
5,3±2,8
4,8±2,2

Streptococcus spp.
4,1±1,7
3,5±0,9

Условнопатогенная микрофлора

Lachnobacterium spp. и Clostridium spp.
5,9±3,5
5,8±3,1

Atopobium spp. (актиномицеты)
2,5±0,2
2,5±0,3

Staphylococcus spp.
3,0±1,0
3,1±0,8

Candida spр. (дрожжи)
3,9±1,5
3,8±1,1

Патогенная микрофлора

Fusobacteriaceae
5,3±2,6
6,0±3,8

Enterobacteriaceae
5,1±3,0
6,4±4,1

Prevotella spp. и Porphyromonas spp.
(бактероиды)
6,4±4,4
7,4±5,2

Mobiluncus spp. и Corynebacterium spp.
(актиномицеты)
4,7±1,9
5,1±2,5

Peptostreptococcus spp.
5,4±3,2
5,8±3,8

Eubacterium spp.
5,5±3,0
5,9±3,6

Примечание. <п.д.о.* — предел достоверного определения посредством ПЦРРВ