Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные, 2017, № 5

2017

ISSN 2500-4379

мелкие домашние и дикие животные

Кардиология

Офтальмология

Ортопедия

Стоматология

Диетология

Современные фармакои биопрепараты

ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Содержание/Contents

Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
5/2017

• РВЖ • № 5/2017 •
3

КАРДИОЛОГИЯ

Илларионова В.К. 

Клинический случай переходящего утолщения 

миокарда у кошки . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

Офтальмология

Шилкин А.Г., Войтеха М.А., 

Павлова Т.Н., Ротанов Д.А., Новикова К.А.

Отдаленные результаты клинического 

применения обогащенной тромбоцитами 

плазмы в ветеринарной офтальмологии . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 9

Ортопедия

Подскребкина О.А., Позябин С.В., Качалин М.Д.

Клинико-морфологические параллели 

в сонографической диагностике патологий 

коленного сустава у собак . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Стоматология

Фролов В.В.

Клинические типы прикуса у собак . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18

СОВРЕМЕННЫЕ ФАРМАКО- И БИОПРЕПАРАТЫ

Переслегина И.О., Дубровина Т.С., 

Клинцова Т.Ю., Агафонова А.Д., Зотова С.Н. 

Сравнение двух схем лечения панлейкопении кошек . . . . . . . . . 24

Корнюшенков Е.А. 

Применение Медитина (медетомидина) 

в качестве компонента седации . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 30

Пархоменко С.А., Зейналов О.А.

Терапевтическая эффективность Фелиферона®

при вирусе иммунодефицита кошек . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

ДИЕТОЛОГИЯ

Pro Plan Dog OptiAge . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 38

CARDIOLOGY

Illarionova V.K.

Clinical Case of a Transient 

Myocardial Thickening in a Cat . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

ORIGINAL ARTICLES

Ophthalomology

Shilkin A.G., Voitekha M.A.,

Pavlova T.N., Rotanov D.A., Novikova K.A. 

Long-term Results of Clinical 

Use of Platelet-Enriched Plasma

in Veterinary Ophthalmology . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 9

Orthopedics

Podskrebkina O.A., Pozyabin S.V., Kachalin M.D.

Clinical and Morphological Parallels

in Sonographic Diagnosis of Knee

Joint Pathologies in Dogs . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Dentistry

Frolov V.V.

Tipes of Bite in the Dogs . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 18

MODERN PHARMACOLOGICAL DRUGS & BIOPREPARATIONS

Pereslegina I.O., Dubrovina T.S.,

Klintzova T.Yu, Agafonova A.D., Zotova S.N. 

Comparison of Two Protocols of Feline Panleukopenia Treatment . . 24

Kornyushenkov E.A. 

Application of Meditin (medetomidine) 

as a Component of Sedation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 30

Parkhomenko S.A., Zeynalov O.A.

Therapeutic Efficacy of Feliferon®

in the Feline Immunodeficiency Virus . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34

ДИЕТОЛОГИЯ

Pro Plan Dog OptiAge . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 38

Издательство «Логос Пресс»
Директор: Гейне М.В
Издатель: ИП Солодилов Е.В.
Руководитель проекта: Шугурова И.М., к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга: Лебедева Е.В.
Компьютерный дизайн Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127018, Москва, ул. 2-я Ямская, 2
E-mail: info@logospress.ru, http://logospress-vet.ru
Тел.: +7/495/689-8516, +7/495/220-4816

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС77-67320 от 30 сентября 2016

Журнал выпускается при участии
Учебно-методического объединения высших учебных заведений Российской
Федерации по образованию в области зоотехники и ветеринарии
Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение 
издания допускается без размещения знака информационной продукции.
Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством. Редакция не
несет ответственности за содержание рекламных материалов. Мнение
редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей.
Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Журнал выходит 
при поддержке

ООО «Биоконтроль», 
ИРСО, 
ВИТАР

Главный редактор

С.А. Ягников, докт. вет. наук, проф. (РУДН, Центр вет. хирургии «ВетПрофАльянс», Москва)

Выпускающий редактор

В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru) 

Редакционная коллегия

Акбаев Р.М., канд. вет наук, доцент кафедры паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина

Бажибина Е.Б., канд. вет. наук, эксперт в области лаб. диагностики (Сеть вет. клиник «Свой доктор», Москва)

Бардюкова Т.В., канд. биол. наук, эксперт в области кардиологии (Вет. клиника «Центр», Москва)

Василевич Ф.И., докт. вет. наук, академик РАН, проф., ректор ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина

Васильев Д.Б., докт. вет. наук, ведущий герпетолог Московского зоопарка 

Данилевская Н.В., докт. биол. наук, профессор кафедры физиологии, фармакологии и токсикологии ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина

Ермаков А.М., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой биологии и общей патологии ДГТУ, вет. клиника Центр (Ростов-на Дону)

Зуева Н.М., канд. биол. наук, эксперт в области ультразвуковой диагностики болезней животных, президент Ветеринарного общества 
по методам визуальной диагностики (Вет. клиника «Центр», Москва)

Илларионова В.К., канд. биол. наук, эксперт в области кардиологии (Вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

Козловская Н.Г., канд. биол. наук, помощник гл. редактора «РВЖ.МДЖ» (вет. центр «А.М.Вет», Москва)

Корнюшенков Е.А., канд. биол. наук, эксперт в области анестезиологии, реаниматологии, интенсивной терапии (Клиника экспериментальной 
терапии ФГБУ «РОНЦ им. Н.Н. Блохина» Минздрава России, вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

Кузнецова А.Л., канд. биол. наук, эксперт в области онкологии-химиотерапии (Клиника экспериментальной терапии ФГБУ «РОНЦ им. Н.Н. Блохина»
Минздрава России, вет.клиника «Биоконтроль»)

Максимов В.И., докт. биол. наук, профессор кафедры физиологии, фармакологии и токсикологии  ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина

Митрохина Н.В., руководитель Вет. центра патоморфологии и лабораторой диагностики доктора Митрохиной (Москва)

Самошкин И.Б., докт. вет. наук, проф. (ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина, Центр травматологии животных ГУ «Мосветобъединение»)

Санин А.В., докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета ФГБУ ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи Минздрава РФ (Москва)

Середа С.В., канд. вет. наук, президент Российской ассоциации практикующих ветеринарных врачей, действительный член WSAVA и FECAVA (Москва)

Сережина Л.А., эксперт в области терапии (вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

Слесаренко Н.А., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой анатомии, гистологии и морфологии ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина

Фролов В.В., докт. биол. наук, проф., эксперт в области стоматологии, ортодонтии, амбидекстрологии, челюстно-лицевой хирургии 
(СГСЭУ, вет. клиника «Центральная на Московской», Саратов)

Чернов А.В., канд. вет. наук, эксперт в области эндоскопических и малоинвазивных методов диагностики и лечения патологий животных 
(вет.клиника «Эндовет», г. Курган; «ВетЭндоШкола», г. Москва)

Шилкин А.Г., канд. мед. наук, эксперт в области офтальмологии (Центр ветеринарной офтальмологии доктора Шилкина А.Г., Москва),
лауреат премии «Золотой скальпель» (2014) и медали им. В.Н. Митина «За вклад в клиническую ветеринарную медицину» (2013)

Ягникова Я.А., канд. вет. наук, эксперт в области хирургии и травматологии (Центр вет. хирургии «ВетПрофАльянс», Москва)

Якунина М.Н., докт. вет. наук, эксперт в области общей онкологии (вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

• РВЖ • № 5/2017 •
5

«Российский ветеринарный журнал» входит в Перечень ВАК ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть
опубликованы основные научные результаты диссертации на соискание ученой степени доктора и кандидата наук (по зоотехническим и ветеринарным специальностям, по биологическим наукам)

Научно-практический журнал                                                                  
Издается с марта 2005 г.

Ключевые слова: переходящее утолщение миокарда, гипертрофия, эхокардиография, кошка
Сокращения: АПФ — ангиотензинпревращающий
фермент, в/в — внутривенно/ый, ГКМП — гипертрофическая кардиомиопатия, ДД — дыхательные движения, ЛЖ — левый желудочек, МТ — масса тела, СКК — спонтанное контрастирование
крови, СН — сердечная недостаточность, ФС —
фракция сокращения, ЧДД — частота дыхательных движений, ЧСС — частота сердечных сокращений, ЭхоКГ — эхокардиограмма

Введение
Гипертрофическая кардиомиопатия является самой
распространенной генетически обусловленной болезнью сердца кошек с неуклонным прогрессированием и плохим прогнозом. При развитии клинических признаков СН лечение приводит лишь к временной ремиссии. Однако в клинической практике
встречаются случаи переходящей гипертрофии миокарда ЛЖ, при этом утолщение сердечной мышцы
может разрешиться в течение нескольких недель
или месяцев. В литературе обсуждают такие провоцирующие факторы концентрической гипертрофии
ЛЖ, как гиповолемия, приводящая к псевдогипертрофии за счет уменьшения объема циркулирующей крови, стероидная терапия и миокардит [3]. Одной из причин развития миокардита может быть вирус иммунодефицита кошек [2]. При сравнении
групп кошек с переходящим утолщением миокарда и ГКМП было выявлено, что возраст животных
в первой группе был меньше, а частота предшествующих инцидентов больше [1]. В нашей клинической
практике встречаются случаи такого временного
утолщения миокарда, с развернутой картиной СН и
полным выздоровлением животного через несколько месяцев.

Описание клинического случая
Пациент — кошка по кличке Даша, породы британская короткошерстная, возраст 7 месяцев, МТ
3,5 кг. Поступила в отделение кардиологии ветеринарной клиники «Биоконтроль» в ноябре 2016 года для кардиологического обследования перед плановой овариогистерэктомией. Владельцы не предъявляли жалоб на состояние животного.
Клинические исследования на день поступления
пациента в клинику. При объективном исследовании
изменений не выявили. При эхокардиографии все показатели были в пределах нормы (толщина межжелудочковой перегородки 4,2 мм, толщина задней стенки левого желудочка 4,7 мм, соотношение левого предсердия и аорты 1,4). Единственным структурным изменением была дополнительная мышечная трабекула
в полости правого желудочка, берущая начало от 
базального отдела межжелудочковой перегородки
(рис. 1). На ЭКГ определяли синусовый ритм, ЧСС 
190 уд/мин с одиночной желудочковой экстрасистолой. Данные общего клинического и биохимического анализов крови не выявили отклонений от
нормы.
Через 3 дня после обследования была проведена плановая овариогистерэктомия, которая не имела осложнений в операционный и ранний послеоперационный
периоды.
Клинические исследования после овариогистерэктомии. Через 12 дней кошка поступила в клинику на
процедуру снятия швов. Через 10 ч после процедуры
владельцы обратились повторно с жалобами на общую вялость, анорексию и тяжелое дыхание животного.
Объективно при поступлении состояние пациента
тяжелое. Положение преимущественно лежачее, слизистые оболочки бледные, влажные. Артериальный
пульс частый, неритмичный, ослабленный. Живот мяг
УДК 619: 616.127

• РВЖ • № 5/2017 •

КАРДИОЛОГИЯ

Клинический случай переходящего
утолщения миокарда у кошки

Для цитирования: Илларионова В.К. Клинический случай переходящего утолщения миокарда у кошки / В.К. Илларионова // Российский
ветеринарный журнал. — 2017. — № 5. — С. 6-8
For citation: Illarionova V.K., Clinical Case of a Transient Myocardial Thickening in a Cat, Rossijskij veterinarnyj zhurnal (Russian veterinary
journal), 2017, No. 5, pp. 6-8

В.К. Илларионова1, 2, кандидат биологических наук, руководитель отделения кардиологии ветеринарной клиники «Биоконитроль», доцент кафедры физиологии, фармакологии и токсикологии А.Н. Голикова и И.Н. Мозгова
(bio@biocontrol.ru).

1 Ветеринарная клиника «Биоконтроль» (115578. Москва, Каширское шоссе, д. 24, стр. 10).

2 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Московская государственная академия
ветеринарной медицины и биотехнологии — МВА имени К.И. Скрябина» (ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина) (109472.
Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23).

Пациент — 7-месячная кошка по породы британская короткошерстная поступила на прием для обследования перед плановой овариогистерэктомией. Владельцы не предъявляли жалоб; изменений объективного обследования — ЭхоКГ, клинического, биохимического анализов крови — выявлено не было. На ЭКГ была зафиксирована одиночная желудочковая экстрасистола. На 12-е сутки после проведенной операции у кошки развился острый отек легких. На ЭхоКГ была выявлена выраженная гипертрофия миокарда левого желудочка. Животное проходило интенсивную терапию с положительной динамикой состояния в отделении анестезиологии и реанимации
и было выписано на 4 сутки. Через четыре месяца плановое обследование показало отсутствие патологических изменений в сердце.

Клинический случай переходящего утолщения миокарда у кошки

кий, безболезненный. ЧДД увеличена до 75 ДД/мин. Тоны сердца
приглушены, аритмичные, ритм галопа. Дыхание бронхиальное, хрипы по всем полям легких. Данные
общего клинического и биохимического анализов крови без особенностей. Содержание тропонина I повышено — 0,3 нг/мл.
На ЭКГ: синусовый ритм с ЧСС
200 уд/ мин, с частыми одиночными интерполированными желудочковыми экстрасистолами
(рис. 2).
На рентгенограмме в боковой
проекции усиление сосудистого интерстициального рисунка, диффузные затенения в краниальных долях и в области корней легких,
плевральный выпот в небольшом
объеме (рис. 3).
По данным ЭхоКГ концентрическая гипертрофия ЛЖ. Выраженное
сегментарное утолщение межжелудочковой перегородки в базальном отделе до 7 мм
и задней стенки ЛЖ до 7,8 мм (рис. 4).
Гиперкинез межжелудочковой перегородки и
задней стенки ЛЖ (ФС 62 %). Базальная обструкция выносящего тракта ЛЖ с градиентом систоличесого давления 41 мм рт. ст. Передне-систолическое движение передней створки митрального
клапана с регургитацией на клапане 2-й степени. Размеры полости левого предсердия увеличены. Соотношение левого предсердия к аорте 1,7
(рис. 5).
В полости ушка левого предсердия визуализировался эффект СКК. Диаметр корня аорты не изменен, легочная артерия не расширена.
Диагноз: концентрическая гипертрофия миокарда
ЛЖ (обструктивная форма), возможно связанная с
миокардитом. Альвеолярный отек легких.

Лечение. Животное было определено в отделение
анестезиологии и реанимации для проведения интенсивной терапии. Лечение осуществлялось в течение
трех дней с положительной динамикой состояния.
Цели терапии — быстрое купирование отека легких,
восстановление оксигенации артериальной крови и
стабилизация состояния животного.
Основным препаратом для лечения отека легких у
кошек является петлевой диуретик фуросемид. В данном случае был применен агрессивный подход к лечению, при котором лекарственное средство вводили
в/в болюсно дозе 2 мг/кг каждые 60 мин трехкратно, а затем в виде в/в инфузии с постоянной скоростью
в дозе 1 мг/кг/ч в течение 12 ч. Затем снова проводили в/в болюсные инъекции с интервалом 8 ч. 
ЧДД имела положительную динамику и нормализовалась на третьи сутки лечения, составляя 27 ДД/мин. В те
• РВЖ • № 5/2017 •
7

Рис. 1. ЭхоКГ из правого парастернального доступа по длинной оси. Нормальная толщина межжелудочковой перегородки и задней стенки ЛЖ
Fig. 1. Transthoracic echocardiogram — the right
parasternal long axis view. No signs of the thickening of the interventricular septum and posterior wall of the LV in diastole

Рис. 2. Электрокардиограмма (II отведение) кошки Даши. Синусовый ритм, прерываемый
одиночными интерполированными желудочковыми экстрасистолами 
Fig. 2. Electrocardiogram (lead II) obtained from the patient Dasha. Sinus rhythm with frequent ventricular premature complexe

Рис. 3. 
Рентгенограмма 
грудной клетки кошки Даши
Fig. 3. 
Right lateral thoracic 
radiograph obtained 
from the patient Dasha

Рис. 4. ЭхоКГ из правого парастернального доступа по длинной оси. Сегментарное утолщение
межжелудочковой перегородки в базальном
отделе и задней стенки ЛЖ в диастолу
Fig. 4. Transthoracic echocardiogram — the right
parasternal long axis view. Signs of the segmental thickening of the interventricular septum and
posterior wall of the LV in diastole

Рис. 5. ЭхоКГ из правого парастернального
доступа по короткой оси на уровне корня аорты. Признаки увеличения левого предсердия
Fig. 5. Transthoracic echocardiogram — the
right parasternal short axis view at the level
of the aorta. Signs of the left atrium enlargment

В.К. Илларионова

чение всего времени лечения в отделении интенсивной
терапии животное находилось в кислородной камере.
Учитывая наличие ЭхоКГ признаков СКК, было
принято решение назначить препарат с антиагрегантным действием — клопидогрел per os в дозе
18,75 мг/животное с интервалом 24 ч. На вторые сутки добавили ингибитор АПФ эналаприл per os в суточной дозе 0,83 мг/животное с интервалом 12 ч. На
третьи сутки лечения было принято решение добавить к терапии бета-блокатор атенолол per os в дозе
6,25 мг/животное с интервалом 24 ч, так как на ЭКГ
фиксировались частые желудочковые экстрасистолы,
несмотря на положительную динамику дыхания и общего состояния.
Дальнейшие рекомендации и наблюдение. Животное было выписано домой на четвертые сутки в удовлетворительном состоянии без одышки со следующими назначениями: эналаприл в дозе 1,25 мг/животное
с интервалом 12 ч, фуросемид per os в дозе 6,6 мг/животное с интервалом 12 ч, клопидогрел в дозе
18,75 мг/животное с интервалом 24 ч, атенолол в дозе 6,25 мг/животное с интервалом 24 ч. Кроме того, были даны рекомендации подсчета ЧДД во сне.
Через 7 дней состояние кошки было стабильным, аппетит нормализовался, одышка не возникала, ЧДД не
превышала 30 ДД/мин. Было рекомендовано увеличить
интервал введения фуросемида до 24 ч. Через 14 дней
после выписки из стационара состояние оставалось стабильным. Рекомендовали продолжение терапии в течение 30 дней с последующим контролем ЭхоКГ, рентгенографией, проведением общего клинического и 
биохимического анализов крови.
Через 30 дней состояние кошки оставалось стабильным.
ЧДД не превышало 28 ДД/мин. При эхокардиографии выявили признаки уменьшения размеров полости левого предсердия и систолического градиента в области обструкции
выносящего тракта ЛЖ до 9 мм рт.ст. Толщина межжелудочковой перегородки и задней стенки ЛЖ оставались
прежними. Восстановился регулярный синусовый ритм.
Было принято решение об отмене атенолола и клопидогреля, уменьшения дозы фуросемида до 5 мг/животное с
интервалом 24 ч и с последующей отменой при стабильной ЧДД в течение 7 дней. Таким образом, через 7 дней
кошка получала только эналаприл в дозе 1,25 мг/животное с интервалом 12 ч. Данную терапию рекомендовали
продолжать в течение двух месяцев.
В марте 2017 года животное поступило на очередное кардиологическое обследование. Жалоб на состояние кошки владельцы не предъявляли. ЧДД колебалась
в пределах 21…25 ДД/мин. Отмечали хороший аппетит и нормальную физическую активность. Физикальное обследование не показало отклонений от нормы. При
эхокардиографии не было выявлено никаких признаков
утолщения миокарда, обструкции выносящего тракта
ЛЖ и увеличения полости левого предсердия. На рентгенограмме грудной клетки отклонений не определяли.
Данные общего клинического, биохимического анализов крови и содержание тропонина I были в пределах
нормы. На основании полученных данных было принято решение об отмене лечения и динамическом наблюдении за состоянием животного с контрольным осмотром и ЭХоКГ через 30 дней. Никаких отклонений от
нормы после отмены лечения выявлено не было. Та
ким образом, был поставлен диагноз: миокардит с переходящим утолщением миокарда. СН с развитием альвеолярного отека легких. Положительная динамика на проводимое лечение. Выздоровление через пять месяцев.

Заключение
Переходящее утолщение миокарда — редкая, но клинически значимая патология кошек. Необходимо учитывать возможность данных изменений после оперативных вмешательств у молодых животных. Информированность коллег и владельцев об этой патологии будет увеличивать настороженность в отношении развития
симптомов СН в послеоперационный период. Лечение переходящего утолщения миокарда не отличается
от лечения истинной ГКМП. Учитывая возможность
провокации миокардита вирусом иммунодефицита кошек, необходимы вирусологические исследования при
развитии картины переходящего утолщения миокарда.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Novo Matos J. Transient Myocardial Thickening in Cats Associated
with Heart Failure / J. Novo Matos, N. Pereira, T. Glaus, L. Wilkie, K.
Borgeat, J. Loureiro, J. Silva, D.J. Law V Connolly, A. Kranjc, V. Luis
Fuentes // Proceeding of 26th ECVIM-CA Congress, Gothenburg. —
7th September 2016. Available at: http://www.ecvimcongress.org. Date
of the rotation 25. 05. 2017
2. Rolim, V.M. Myocarditis caused by Feline Immunodeficiency Virus in
Five Cats with Hypertrophic Cardiomyopathy / V.M. Rolim, R.A. Casagrande,
A.T. Wouters, D. Driemeier, S.P. Pavarini // J Comp Pathol. — 2016 Jan. —
No. 154(1). — pp. 3–8.
3. Glaus, T. Left ventricular hypertrophy in the cat — «when hypertrophic
cardiomyopathy is not hypertrophic cardiomyopathy» / T. Glaus, G. Wess
// Schweiz Arch Tierheilkd. — 2010 Jul. — No. 152(7). — pp. 325–330.

R e f e r e n c e s
1. Novo Matos J., Pereira N., Glaus T., Wilkie L., Borgeat K., Loureiro J.,
Silva J., Law V Connolly D.J., Kranjc A., Luis Fuentes V. , Proceeding
of 26th ECVIM-CA Congress, Gothenburg 7th September, 2016. Available
at: http://www.ecvimcongress.org. Date of the rotation 25. 05. 2017.
2. Rolim V.M., Casagrande R.A., Wouters A.T., Driemeier D., Pavarini S.P.,
J Comp Pathol., 2016 Jan, No. 154(1), pp. 3–8.
3. Glaus T., Wess G., Schweiz Arch Tierheilkd., 2010 Jul, No. 152(7), pp. 325–330.

8
• РВЖ • № 5/2017 •

ABSTRACT
V.K. Illarionova1, 2

1 Veterinary Clinic «Biocontrol» (24/10, Kashirskove shosse, Moscow, 115578).

2 Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology named after

K.I. Skryabin (23a, Ac. Skryabin str., Moscow, 109472).

Clinical Case of a Transient Myocardial Thickening in a Cat.
Patient — a 7monthold British shorthair cat was presented before
the ovariohysterectomy. The owners did not present any complaints,
changes in objective examination, echocardiography data, clinical,
biochemical blood tests were without changes. A single ventricular premature complex was recorded on the ECG. On the 12 day
after the surgery, the cat developed acute pulmonary edema. The
severe left ventricular myocardial hypertrophy was found on Echocardiography. The animal received intensive therapy with positive dynamics and was discharged on the 4th day. Four months later, a routine
examination showed no pathological changes in the heart.
So, the use of «Feline trinity» for treatment of panleukopenia is
theoretically justified and clinically effective.
Keywords: transient myocardial thickening, hypertrophy, echocardiography, cat.

• РВЖ • № 5/2017 •
9

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ Офтальмология Ключевые слова: плазма, кровь, стволовые клетки,
плазмолифтинг, тромбоциты, кошка, собака
Сокращения: KCS — keratoconjuncivitis sicca (сухой
кератоконъюнктивит), PRP — рlatelet rich plasma
(плазма, обогащенная тромбоцитами)

Введение
Все большую значимость среди практикующих ветеринарных врачей приобретает регенеративная медицина и биотехнологические методы. К таким методам
в ветеринарной офтальмологии относят применение
гемопоэтических и мезенхимальных стволовых клеток. Однако малая эффективность, дороговизна и
сложность получения стволовых клеток не способствует широкому внедрению данного метода. Перечисленные недостатки заставляют исследователей искать
более действенные и удобные методы регенеративной
медицины. Наиболее перспективным и интересным
для регенеративной ветеринарной офтальмологии методом является использование плазмы, обогащенной
тромбоцитами, — PRP-технология [5].

Цель исследования
Оценить отдаленные результаты клинического применения PRP в лечении собак и кошек, страдающих
KCS, индолентными эрозиями роговицы и фиброзами
после тяжелых пересадок роговицы или суперфициальной кератэктомии.

Материалы и методы
За последние несколько лет в Центре ветеринарной
офтальмологии доктора Шилкина А.Г. (Москва) данный метод был применен более 50 раз в лечении собак и кошек, страдающих KCS, индолентными эрозиями роговицы и фиброзами после тяжелых пересадок роговицы или суперфициальной кератэктомии
(рис. 1). Возрастной диапазон животных был достаточно широк — от 0,5 года до 15 лет, породная и половая принадлежность не учитывалась [1, 6].
Методика получения плазмы является совершенно 
несложной и доступна в любой клинике. У животного
берут кровь из вены в пробирки для плазмолифтинга в
количестве 8 мл. Эти вакуумные пробирки, запатентованные профессором P.P. Ахмеровым. Они содержат сепарационный разделительный гель и имеют высокий уровень очистки плазмы от эритроцитарного сгустка. В качестве антикоагулянта выступает гепарин. Пробирки
центрифугируют однократно в течение 5 минут со скоростью 2,5 тыс. мин-1 (методические рекомендации для
плазмолифтинга в центифуге ЕВА20). В результате центрифугирования происходит отслоение форменных элементов от плазмы. Кровь разделяется на 3 основные составляющие: сверху желтоватая диффузная, богатая тромбоцитами плазма, в центре непрозрачный разделительный гель белого цвета, внизу темно-красный тяжелый
эритроцитарный сгусток. PRP полностью извлекают из
пробирки с помощью шприцевой иглы и вводят живот
Отдаленные результаты клинического
применения обогащенной тромбоцитами
плазмы в ветеринарной офтальмологии

УДК 619: 617.7
Для цитирования: Шилкин, А.Г. Отдаленные результаты клинического применения обогащенной тромбоцитами плазмы в ветеринарной
офтальмологии / А.Г. Шилкин, М.А. Войтеха, Т.Н. Павлова, Д.А. Ротанов, К.А. Новикова // Российский ветеринарный журнал. — 2017. — 
№ 5. — С, 9-12
For citation: Shilkin, A.G., Voitekha M.A., Pavlova T.N., Rotanov D.A., Novikova K.A., Long-term Results of Clinical Use of Platelet-Enriched
Plasma in Veterinary Ophthalmology, Rossijskij veterinarnyj zhurnal (Russian veterinary journal), 2017, No. 5, pp. 9-12

А.Г. Шилкин, кандидат медицинских наук, ведущий врач-офтальмолог (shilkin555@mail.ru), М.А. Войтеха (m.voy@bk.ru),
кандидат биологических наук, врач-офтальмолог, Т.Н. Павлова, кандидат ветеринарных наук, врач-офтальмолог
(mikoy88@gmail.com), Д.А. Ротанов, кандидат ветеринарных наук, врач-офтальмолог, К.А. Новикова, ветеринарный врач.
Центр ветеринарной офтальмологии доктора Шилкина А.Г. (129323, Москва, ул. Снежная, д. 13, корп. 1).

Все большую значимость среди практикующих ветеринарных врачей приобретает регенеративная медицина и
биотехнологические методы. Наиболее перспективным и интересным для регенеративной ветеринарной
офтальмологии методом является использование плазмы, обогащенной тромбоцитами (PRP).
Цель. Оценить отдаленные результаты клинического применения PRP в лечении собак и кошек, страдающих сухим
кератоконъюнктивитом (KCS), индолентными эрозиями роговицы и фиброзами после тяжелых пересадок роговицы
или суперфициальной кератэктомии.
Материалы и методы. Из цельной венозной крови животного получали богатую тромбоцитами плазму. Плазму
вводили в виде субконъюнктивальных инъекций в дозе 0,5…1 мл или в виде инстилляций от 3 до 6 раз в день, сроком
до 14 дней. Результаты терапии оценивали на повторных осмотрах, при этом обращали внимание на общее
состояние конъюнктивы и роговицы, наличие отеков и гиперемии, гнойных или слизистых выделений, количество
слезопродукции, окрашивание роговицы флуоресцином и, у послеоперационных животных, образование грануляций.
Результаты. У 60 % пациентов с KCS после применения плазмы было отмечено значительное улучшение состояния
глаз. При эрозиях роговицы у 6 из 10 животных после применения PRP происходила полная эпителизация. При
пересадке роговицы и суперфициальной кератэктомии у всех животных наблюдали более быстрое приживление
трансплантата на фоне использования плазмы.
Выводы. При использовании PRP было установлено, что эта методика абсолютно безопасна в офтальмологии
при местном применении. Инстилляции и инъекции плазмы в глаз не вызывают аллергических, воспалительных
реакций и других нежелательных эффектов даже при длительном использовании.

А.Г. Шилкин, М.А. Войтеха, Т.Н. Павлова, Д.А. Ротанов, К.А. Новикова

10
• РВЖ • № 5/2017 •

ным в виде субконъюнктивальных инъекций в дозе
0,5…1 мл или в виде инстилляций от 3 до 6 раз в день,
сроком до 14 дней, в зависимости от патологии [5].
При ведении первичных пациентов применение PRP
являлось частью стандартной комплексной терапии.
Для повторных пациентов данную методику использовали дополнительно к уже назначенному лечению, без
какого-либо изменения его протокола. Наблюдение
за динамикой лечения животных составило около 2 лет.
У собак, страдающих синдромом сухого глаза (KCS)

(всего 30 глаз), тяжесть заболевания варьировалась от развитой стадии до терминальной (рис. 2). Показатели теста Ширмера составляли от 0 до 10 мм/мин. Практически у всех животных ксероз сопровождался гнойным конъюнктивитом, обширной пигментацией, помутнением
роговицы и значительной васкуляризацией роговицы.
Конъюнктива была гиперемирована и отечна. Таким
животным плазму как часть комплексной терапии применяли в виде субконъюнктивальных инъекций по 
0,5…1 мл каждые 3…7 дней (на курс до 3 инъекций) и
в виде инстилляций — 3…6 раз в день. Некоторое время мы не решались выполнять субконъюнктивальные
инъекции из-за опасений, что гепарин, используемый в
пробирках для плазмолифтинга, может вызвать субконъюнктивальные кровотечения. К счастью, эти опасения не
подтвердились, кровотечения отсутствовали [4, 7].
У 10 собак (всего 12 глаз) с индолентными язвами роговицы на пораженных глазах выявлялся положительный
флюоресцеиновый тест, что свидетельствовало об интенсивности эрозивного процесса. Также наблюдали значительное количество патологического эпителия по краям

эрозий, с подвернутыми складками в виде «синдрома женского чулка». Длительность патологического процесса составила от 1 недели до 2 месяцев. Плазму применяли в
виде инстилляций 4…6 раз в день в сочетании с антибиотиками, иммуностимуляторами и корнеопротекторами,
субконъюнктивальные инъекции не использовали.
Лечение PRP было применено при эрозиях (10 животных, из них 2 кошки: 2 больных глаза) и 8 собак: 10 глаз).
В нашей практике имелись пациенты с длительно незаживающими (от месяца и более) эрозиями роговицы, которые
уже подвергались лечению в других клиниках. В этом случае мы применяли только терапевтическое лечение без хирургического вмешательства из-за противопоказаний по
состоянию здоровья или из-за нежелания владельцев.
При пересадке роговицы и суперфициальной кератэктомии PRP-терапия проведена у 6 собак и 4 кошек (всего 10 глаз) на завершающем этапе операции после наложения швов, а также в послеоперационном периоде для рассасывания послеоперационных фиброзов.

Результаты и обсуждение
При использовании PRP было установлено, что эта
методика абсолютно безопасна при местном применении в офтальмологии. Инстилляции и инъекции плазмы в глаз не вызывают аллергических, воспалительных
реакций и других нежелательных эффектов даже при
длительном использовании.
У 60 % пациентов с синдромомом сухого глаза (KCS)

после инстилляций и субконъюнктивальных инъекций
плазмы отмечено снижение отека конъюнктивы, уменьшение раздражения глазного яблока и улучшение сос
Рис. 1. Показания к лечению плазмой, обогащенной факторами роста: а — сухой кератоконъюнктивит; b — пересадка роговицы; c — индолентная язва роговицы
Fig. 1. Indications for treatment with plasma enriched with growth factors: a — dry keratoconjunctivitis; b — corneal transplantation; с — indolent
corneal ulcer

Рис. 2. Терминальная стадия синдрома сухого глаза у йоркширского терьера (10 лет), до лечения
Fig. 2. Endstage dry eye syndrome have a Yorkshire Terrier (10 years), before treatment

Рис. 3. Тот же глаз через 5 месяцев после комплексного лечения с применением PRP
Fig. 3. The same eye 5 months after complex treatment with application of plateletrich plasma

Рис. 4. Резорбция помутнения роговицы после
кератопластики на фоне применения плазмы
Fig. 4. Resorption of corneal opacities after keratoplasty with application of the plasma

а
b
c

Отдаленные результаты клинического применения обогащенной тромбоцитами плазмы в ветеринарной офтальмологии

• РВЖ • № 5/2017 •
11

тояния роговицы. Последнее проявлялось наиболее отчетливо и выраженно. Отмечалось запустевание новообразованных сосудов, некоторое восстановление прозрачности
роговицы, происходила частичная регрессия пигмента.
Улучшение состояния роговицы мы связываем с усилением трофики ее тканей, а также со снятием гипоксического и воспалительного компонентов (рис. 3) [1, 2, 7, 8].
При этом увеличение слезопродукции носило временный характер, выработка слезы снижалась за период от 1 до 3 месяцев. Трем животным плазму инъецировали в область слезной железы для стимуляции
и возможного восстановления ее функции. Однако стимуляция слезной железы плазмой также носило кратковременный характер: слезопродукция повышалась
на срок не более чем 2 месяца. Результаты исследований в медицине человека свидетельствуют о более
выраженном эффекте после PRP-терапии. Вероятно,
несоответствие в эффективности действия плазмы у человека и животных при синдроме сухого глаза обусловлено различными этиологическими факторами и более
тяжелыми клиническими проявлениями самого заболевания у собак по сравнению с человеком [2, 6, 7].
При эрозиях эффективность применения плазмы была несколько ниже. У 6 из 10 животных после применения PRP эрозия полностью эпителизировалась и в дальнейшем не рецидивировала. В отношении животных с индолентными язвами роговицы вначале мы сомневались
в результативности лечения. Однако терапия оказалась
весьма успешной. При этом мы практически не изменили назначений предыдущих врачей, а только добавили
плазму. Удивительно, но эпителий роговицы полностью
закрыл эрозию уже через 4 дня от начала лечения [4, 7].
У остальных 4 животных состояние глаз не улучшилось.
Из них у двух собак лечение оказалось абсолютно неэффективным — эрозии не уменьшались в размере, интенсивность флюоресцеинового теста тоже не менялась, сохранялось значительное количество патологического эпителия. У одной собаки с двумя обширными эрозиями произошла эпителизация только одного дефекта. Еще у одной
собаки во время лечения эрозия эпителизировалась полностью, но через 2 недели возник рецидив. Все вышеперечисленные пациенты были благополучно и без осложнений прооперированы. В дальнейшем мы использовали у
этих животных плазму на здоровых глазах для профилактики эрозий и улучшения трофики роговицы.
При пересадке роговицы и суперфициальной кератэктомии PRP-терапия дала следующие результаты: у
животных происходило более быстрое приживление
трансплантата. Его фиброз был менее выражен. Сформированные рубцы роговицы после кератэктомии постепенно резорбировались (рис. 4), прозрачность тканей частично восстанавливалась без применения стероидов или иммунодепрессантов.
Эффект кортикостероидов при рассасывании послеоперационных фиброзов превосходил эффект плазмы
по выраженности, но являлся более опасным с точки
зрения рецидива язвы и повышения внутриглазного давления. Назначение плазмы как раз и оправдывает себя в плане физиологической кератопротекции на глазах, склонных к эрозиям роговицы или к кератитам.
Еще одним показанием к применению плазмы являются полиаллергии на глазные лекарственные препараты, тем более, что число таких животных растет с каж
дым годом. Для них плазма может быть единственным
местным методом лечения, не вызывающим аллергических реакций. Что касается временного эффекта лечения плазмой, обогащенной факторами роста, то он,
конечно, несколько снижается со временем и нивелируется полностью в среднем через 3…4 месяца, что
требует повторных курсов терапии [4, 8, 9].

Заключение
Применение PRP не является панацеей (как это пытаются представить некоторые авторы в интернете), но это
действительно эффективный метод в сочетании с классической медикаментозной терапией при лечении KCS
и хронических эрозий роговицы. Его применение после кератопластики и кератэктомии способствует
более прозрачному и быстрому приживлению трансплантата. Метод безопасен, физиологичен, прост и достаточно дешев. PRP практически не дает побочных эффектов, местных аллергических и токсических реакций и может широко применяться не только в офтальмологии, но и в других областях ветеринарии.

Б и б л и о г р а ф и я
1. Ачкасов, Е.Е. Применение аутоплазмы, обогащенной тромбоцитами плазмы в
клинической практике / Е.Е. Ачкасов // Биомедицина. — 2013. — №4. — С. 46–59.
2. Ковач, М. Применение плазмы, обогащенной тромбоцитами, при лечении
повреждения сухожилия глубокого сгибателя пальца лошади / М. Ковач [и
др.]. // Современная ветеринарная медицина. — 2014. — № 1. — С. 48–50.
3. Латунь, Л. Понимание и оценки функции тромбоцитов. Гематология образовательной программы Американского общества гематологии, 2010. — С. 387–396.
4. Шилкин, А.Г. Клинические результаты применения методы плазмы, обогащенной тромбоцитами (PRP-технологии) в ветеринарной офтальмологии / А.Г. Шилкин, Д.А. Ротанов, Т.Н. Павлова, К.А. Новикова // Материалы XXI Московского международного ветеринарного конгресса. — 20-22 апреля 2013. — С. 112–114.
5. Шилкин, А.Г. Применение плазмы, обогащенной тромбоцитами, в ветеринарной
офтальмологии / А Шилкин.Г., М.А. Войтеха, Т.Н. Павлова, Д.А. Ротанов, К.А. Новикова // Российский ветеринарный журнал. — 2017. — №2. — С. 6–9.
6. Alio J.L. Symptomatic dry eye treatment with autologous platelet-rich plasma /
J.L. Alio [et al.] // Ophthalmic Res. — 2007. — No. 39(3). — pp. 124–129.
7. Arguelles, D. Autologous platelet concentrates as a treatment for musculoskeletal lesions in five horses / D. Arguelles [et al.] // Veterinary Record. — 2008. — No. 162. — pp. 208–211. DOI: 10.1136/vr.162.7.208
8. Burnouf, T. Blood-derived biomaterials and platelet growth factors in regenerative
medicine / T. Burnouf [et al.] // Blood Rev. — 2013 Mar. — No. 27(2). — pp. 77–89.
9. Hartwig, D. Epitheliotrophic capacity of a growth factor preparation produced from
platelet concentrates on corneal epithelial cells: a potential agent for the treatment of
ocular surface defects? / D. Hartwig [et al.] // Transfusion. — December 2004. —
Vol. 44. — Is. 12. — pp. 1724–1731. DOI: 10.1111/j.0041-1132.2004.04079.x

R e f e r e n c e s
1. Achkasov E.E. Biomedicina, 2013, No. 4, pp. 46–59.
2. Kovach M. [et al.] Sovremennaja veterinarnaja medicina, 2014, No. 1, pp. 48–50.
3. Latun' L. Ponimanie i ocenki funkcii trombocitov, Gematologija obrazovatel'noj
programmy Amerikanskogo obshhestva gematologii (Understanding and the
estimation of the function of thrombocytes. Hematology of the educational program
of the American society of hematology, 2010, pp. 387–396.
4. Shilkin A.G., Rotanov D.A., Pavlova T.N., Novikova K.A., Proceeding of XXI Moscow
Internanional Veterinary Congress, 20–22 apr., Moscow, 2013, pp. 112–114.
5. Shilkin A.G., Vojteha M.A., Pavlova T.N., Rotanov D.A., Novikova K.A. Rossijskij veterinarnyj zhurnal, 2017, No. 2, pp. 6–9.
6. Alio J.L. [et al.], Ophthalmic Res., 2007, No. 39(3), pp. 124–129.
7. Arguelles D. [et al.], Veterinary Record., 2008, No. 162, pp. 208–211
DOI:10.1136/vr.162.7.208.
8. Burnouf T. [et al.], Blood Rev., 2013 Mar., No. 27(2), pp. 77–89.
9. Hartwig D. [et al.], Transfusion, December 2004, Vol. 44, Is. 12, pp. 1724–1731.
DOI: 10.1111/j.0041-1132.2004.04079.x