Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные, 2017, № 2

2017

ISSN 25004379

мелкие домашние и дикие животные

Офтальмология

Кардиология

Паразитология

Диетология

Стоматология

Современные фармакои биопрепараты

ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Содержание/Contents

Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
2/2017

• РВЖ • № 2/2017 •
3

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

Шилкин А.Г., Войтеха М.А., Павлова Т.Н., 
Ротанов Д.А., Новикова К.А.
Применение плазмы, обогащенной тромбоцитами, 
в ветеринарной офтальмологии . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

КАРДИОЛОГИЯ

Илларионова В.К., Коледенский Д.Г.
Атриовентрикулярная блокада сердца у собак . . . . . . . . . . . . . . 10

Илларионова В.К., Коледенский Д.Г., 
Назарова М.В., Кондратова И.А.
Имплантация электрокардиостимулятора собаке 
с атриовентрикулярной блокадой III степени . . . . . . . . . . . . . . . 13

КЛИНИЧЕСКИЙ СЛУЧАЙ

Есаулова Н.В, Сароян С.В., Шемякова С.А.
Телязиоз собак (случай обнаружения в Московском регионе) . . . 16

Забиякина Л.А., Коняев С.В.
Случай инвазии Pneumonyssoides caninum
(Chandler et Ruhe, 1940) у собаки в России . . . . . . . . . . . . . . . 18

ДИЕТОЛОГИЯ

Мильштейн И.М.
Клинические преимущества применения PRO PLAN® JUNIOR 
DELICATE котятам с особыми пищевыми потребностями . . . . . 20

СОВРЕМЕННЫЕ ФАРМАКО- И БИОПРЕПАРАТЫ

Taenzler J., Liebenberg J., Roepke R.K.A., Heckeroth A.R.
Профилактика передачи Babesia canis клещами Dermacentor
reticulatus собакам, получавшим внутрь жевательные таблетки 
флураланера (Бравекто™) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 21

Соловьева О.В.
Актуальные проблемы здоровья пожилых животных. 
Возможные пути решения . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26

Dirofilaria repens — 
растущая угроза здоровью собак и человека . . . . . . . . . . . . . . . 30

Зейналов О.А., Савинова Т.С., Андрюшина В.А.
Сравнительная характеристика моногормональных 
и бигормональных гестаген-содержащих препаратов 
для подавления поведенческих проявлений 
половой охоты у кошек . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33

ЛЕКЦИИ

Фролов В.В., Егунова А.В.
Комплексный анализ заболеваний пародонта у собак . . . . . . . . 36

VITAL TOPIC

Shilkin A.G., Voitekha M.A., Pavlova T.N.,
Rotanov D.A., Novikova K.A.
Application of Platelet Rich Plasma
in Veterinary Ophthalomology . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

CARDIOLOGY

Illarionova V.K., Koledinsky D.G.
Atrioventricular Block in Dogs . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10

Illarionova V.K., Koledinsky D.G.,
Nazarova M.V., Kondratova I.A.
Transvenous Implantation of an Artificial Pacemaker to the Dog
with III Degree Atrioventricular Block . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 13

CLINICAL CASE

Esaulova N.V., Saroyan S.V., Shemyakova S.A.
Thelaziosis in Dogs (Disclosure Episode in Moscow Region) . . . . . . 16

Zabiyakina L.A., Konyaev S.V. 
Case Report of Pneumonyssoides caninum
(Chandler et Ruhe, 1940) Invasion in Dog from Russia . . . . . . . . . . 18

DIETOLOGY

Milshtein I.M.
Clinical Advantages with the Use of PRO PLAN(R) JUNIOR 
DELICATE for Kitten with Special Nutritional Needs . . . . . . . . . . . . . 20

MODERN PHARMACOLOGICAL DRUGS & BIOPREPARATIONS

Taenzler J., Liebenberg J., Roepke R.K.A., Heckeroth A.R.
Prevention of Transmission of Babesia canis by Dermacentor 
reticulatus Ticks to Dogs Treated Orally with Fluralaner Chewable 
Tablets (Bravecto™) . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 21

Solovyeva O.V.
Vital Problems of Elderly Animals Health.
Possible Methods of Solution . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 26

Dirofilaria repens
is a Growing Threat to the Health of Dogs and Humans . . . . . . . . . . 30

Zeynalov O.A., Savinova T.S., Andryushina V.A.
Comparative Characteristics of Mono-hormonal
and Bi-hormonal Progestogen-Containing Preparations  
for Suppression of the Behavioral Manifestations  
of Sexual Hunting in Cats . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 33

ЛЕКЦИИ

Frolov V.V., Egunova A.V.
Comprehensive Analysis of Periodontal Disease in Dogs . . . . . . . . 36

Учредитель: Издательство «Логос Пресс»
Директор М.В. Гейне 
Издатель ИП Солодилов Е.В.
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Менеджер по маркетингу М.А. Шугуров
Компьютерный дизайн Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127018, Москва, ул. 2-я Ямская, 2
E-mail: info@logospress.ru, http://logospress-vet.ru
Тел.: +7/495/689-8516, +7/495/220-4816

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС77-67320 от 30 сентября 2016

Журнал выпускается при участии
Учебно-методического объединения высших учебных заведений Российской
Федерации по образованию в области зоотехники и ветеринарии
Согласно рекомендациям Роскомнадзора выпуск и распространение 
издания допускается без размещения знака информационной продукции.
Воспроизведение материалов в любом виде, включая электронный, возможно только по письменному согласованию с издательством. Редакция не
несет ответственности за содержание рекламных материалов. Мнение
редакции не всегда совпадает с мнением авторов статей.
Рукописи, принятые на рассмотрение, редакция не возвращает.

Журнал выходит 
при поддержке

ООО «Биоконтроль», 
ИРСО, 
ВИТАР

Главный редактор

С.А. Ягников, докт. вет. наук, проф. (РУДН, Центр вет. хирургии «ВетПрофАльянс», Москва)

Выпускающий редактор

В.В. Ракитская (rakitskaya.vera@yandex.ru) 

Редакционная коллегия

Акбаев Р.М., канд. вет наук, эксперт в области паразитологии (ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина)

Бажибина Е.Б., канд. вет. наук, эксперт в области лаб. диагностики (Сеть вет. клиник «Свой доктор», Москва)

Бардюкова Т.В., канд. биол. наук, эксперт в области кардиологии (Вет. клиника «Центр», Москва)

Василевич Ф.И., докт. вет. наук, академик РАН, проф., ректор ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина

Васильев Д.Б., докт. вет. наук, ведущий герпетолог Московского зоопарка 

Данилевская Н.В., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой фармакологии и токсикологии ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина

Ермаков А.М., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой биологии и общей патологии ДГТУ, вет. клиника Центр (Ростов-на Дону)

Зуева Н.М., канд. биол. наук, эксперт в области ультразвуковой диагностики болезней животных, президент Ветеринарного общества 
по методам визуальной диагностики (Вет. клиника «Центр», Москва)

Илларионова В.К., канд. биол. наук, эксперт в области кардиологии (Вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

Козловская Н.Г., канд. биол. наук, помощник гл. редактора «РВЖ.МДЖ» (вет. центр «А.М.Вет», Москва)

Корнюшенков Е.А., канд. биол. наук, эксперт в области анестезиологии, реаниматологии, интенсивной терапии (Клиника экспериментальной 
терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина РАМН, вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

Кузнецова А.Л., канд. биол. наук, эксперт в области онкологии-химиотерапии (Клиника экспериментальной терапии РОНЦ им. Н.Н. Блохина
РАМН, вет.клиника «Биоконтроль»)

Максимов В.И., докт. биол. наук, проф., проректор УМО вузов РФ по образованию в области зоотехнии и ветеринарии, эксперт в области 
физиологии (ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина)

Митрохина Н.В., руководитель Вет. центра патоморфологии и лабораторой диагностики доктора Митрохиной (Москва)

Самошкин И.Б., докт. вет. наук, проф. (ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина, Центр травматологии животных ГУ «Мосветобъединение»)

Санин А.В., докт. биол. наук, проф., руководитель лаборатории клеточного иммунитета ФГБУ ФНИЦЭМ им. Н.Ф. Гамалеи Минздрава РФ (Москва)

Середа С.В., канд. вет. наук, президент Российской ассоциации практикующих ветеринарных врачей, действительный член WSAVA и FECAVA (Москва)

Сережина Л.А., эксперт в области терапии (вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

Слесаренко Н.А., докт. биол. наук, проф., зав. кафедрой анатомии, гистологии и морфологии ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина

Фролов В.В., докт. биол. наук, проф., эксперт в области стоматологии, ортодонтии, амбидекстрологии, челюстно-лицевой хирургии 
(СГСЭУ, вет. клиника «Центральная на Московской», Саратов)

Чернов А.В., канд. вет. наук, эксперт в области эндоскопических и малоинвазивных методов диагностики и лечения патологий животных 
(вет.клиника «Эндовет», г. Курган; «ВетЭндоШкола», г. Москва)

Шилкин А.Г., канд. мед. наук, эксперт в области офтальмологии (Центр ветеринарной офтальмологии доктора Шилкина А.Г., Москва),
лауреат премии «Золотой скальпель» (2014) и медали им. В.Н. Митина «За вклад в клиническую ветеринарную медицину» (2013)

Ягникова Я.А., канд. вет. наук, эксперт в области хирургии и травматологии (Центр вет. хирургии «ВетПрофАльянс», Москва)

Якунина М.Н., докт. вет. наук, эксперт в области общей онкологии (вет. клиника «Биоконтроль», Москва)

• РВЖ • № 2/2017 •
5

«Российский ветеринарный журнал» входит в Перечень ВАК ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, в которых должны быть
опубликованы основные научные результаты диссертации на соискание ученой степени доктора и кандидата наук (по зоотехническим и ветеринарным специальностям, по биологическим наукам)

Научно-практический журнал                                                                  
Издается с марта 2005 г.

Ключевые слова: плазма, кровь, стволовые клетки,
плазмолифтинг, тромбоциты, кошка, собака
Сокращения: ЭРГ — электроретинография, EGF —
epidermal growth factor (эпидерамальный фактор роста),
FGF — fibroblast growth factor (фактор роста фибробластов), IGF — insulinlike growth factor (инсулиноподобный фактор роста), PDGF — рlatelet-derived growth factor (фактор роста тромбоцитов), PRP — рlatelet rich
plasma (плазма, обогащенная тромбоцитами), TGF —
transforming growth factor (трансформирующий фактор роста), VEGF — vascular endothelial growth factor (фактор роста эндотелия cосудов)

Введение
Кризис развития традиционных методик лечения в ветеринарии увеличил интерес врачей различных специальностей к передовым медицинским биотехнологиям, обеспечивающим регенерацию тканей. Авторы
статьи, также во многом поддавшись новомодным
тенденциям, несколько лет назад провели совместно с Федеральным Биофизическим центром им. Бурназяна достаточно длительную, глубокую, но, к сожалению, во многом безрезультатную работу по внедрению стволовых клеток в ветеринарную офтальмологию. В условиях Центра ветеринарной офтальмологии
доктора Шилкина А.Г. брали образцы ткани из зоны палисадов Фогта лимба (рис. 1), а также жировой
ткани и крови животных.
Из полученных образцов выделяли и выращивали
в лаборатории Федерального биофизического центра
им. Бурназяна мезенхимальные или гемопоэтические стволовые клетки. В последующем стволовые клетки применяли для лечения различных неифекционных
патологий: синдрома сухого глаза, дегенераций, помут
нений, эрозий и изъязвлений роговицы путем интрастромального введения в роговицу, окулярных инъекций или инстилляций в полость конъюнктивы (рис. 2).
Однако эта методика не получила распространения
в ветеринарной офтальмологии в силу ряда недостатков. При лечении заболеваний глаз у животных с
использованием гемопоэтических стволовых клеток
констатировали практически полное отсутствие положительных результатов. При использовании мезенхимальных стволовых клеток отметили определенные
проблемы, такие как малая эффективность и непредсказуемость результатов примерно у 40…50 % пациентов; дороговизна и сложность метода; длительное

УДК 619: 617.7

Применение плазмы, обогащенной
тромбоцитами, в ветеринарной
офтальмологии

• РВЖ • № 2/2017 •

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

А.Г. Шилкин, кандидат медицинских наук, ведущий врачофтальмолог(shilkin555@mail.ru), М.А. Войтеха (m.voy@bk.ru),
кандидат биологических наук, врачофтальмолог, Т.Н. Павлова, кандидат ветеринарных наук, врачофтальмолог,
Д.А. Ротанов, кандидат ветеринарных наук, врачофтальмолог, К.А. Новикова, ветеринарный врач (mikoy88@gmail.com).

Центр ветеринарной офтальмологии доктора Шилкина А.Г. (129323, Москва, ул. Снежная, д. 13, корп. 1).

В настоящее время для лечения глазных заболеваний у животных применяют новый эффективный метод клеточной
терапии — лечение плазмой, обогащенной тромбоцитами (PRP), которая содержит не менее 1 млн тромбоцитов
на 1 мл, то есть содержание тромбоцитов в ней превышает физиологическую норму в 5 раз. Такая высокая
концентрация тромбоцитов в пораженных тканях глаза животных обеспечивает стимулирующий эффект за счет
запуска цитокиновых реакций и выделения множества факторов роста. Эти цитокины являются ведущими
агентами в процессах клеточной дифференцировки, пролиферации и регенерации. При введении плазмы, обогащенной
факторами роста, в патологический очаг происходит ускоренное восстановление поврежденных тканей глаза,
уменьшаются воспалительные процессы и улучшается трофика непосредственно в очаге поражения. Данная
методика безопасна (используют собственную кровь пациента), физиологична, не вызывает никаких токсических,
аллергических реакций и хорошо переносится всеми животными. В российской ветеринарной офтальмологии этот
метод для лечения заболеваний глаз у животных был разработан нами, и с успехом применяется только в нашей
клинике. С использованием PRP было пролечено более 30 животных с синдромом сухого глаза, кератитами, язвами
и хроническими, длительно не заживающими эрозиями роговицы. Кроме того, плазму назначали в послеоперационном
периоде животным после тяжелых пересадок роговицы с использованием донорского трансплантанта. Осложнений
не отмечено ни у одного пациента.

Рис. 1. Зона палисадов Фогта лимба, откуда брали образцы тканей для
выращивания мезенхимальных 
аутологичных стволовых клеток 

Fig. 1. Zone of Vogt palisades limb,
where we took tissue samples for
growing mesenchymal stem cells
autologous

Рис. 2. Интрастромальное
введение стволовых клеток в
роговицу для лечения эрозии 

Fig. 2. Intrastromal administration of stem cells in the
cornea for the treatment of
erosion

Применение плазмы, обогащенной тромбоцитами, в ветеринарной офтальмологии

время выращивания клеточного материала; отсутствие
маркеров стволовых клеток для животных, что давало бы возможность объективно отследить распределение введенных клеток в тканях глаза.
Все эти недостатки заставили искать более действенные, предсказуемые и доступные биотехнологии. Одним из наиболее многообещающих и интересных для
ветеринарной офтальмологии методов клеточной терапии является новое направление — лечение глазных заболеваний с использованием PRP [3, 4].

Суть методики 
и механизм действия PRP
Основная функция тромбоцитов в макроорганизме — участие в обеспечении гемостаза. При увеличении количества тромбоцитов и их активации они
изменяют свою форму и выделяют специфические
биологические факторы роста. Тромбоциты также
играют ключевую роль как промежуточное звено в
процессе заживления поврежденной ткани за счет
способности выделять из своих a-гранул цитокины,
хемокины и многие другие белки, по-разному вовлеченные в стимулирование хемотаксиса, пролиферацию клеток и созревание, модуляцию молекул и привлечение лейкоцитов. Кроме того, тромбоциты хранят
антибактериальные и фунгицидные белки, способные предотвращать развитие инфекции.
PRP содержит не менее 1 млн тромбоцитов на 
1 мл плазмы, то есть содержание тромбоцитов в PRP
превышает физиологическую норму в 5 раз. Научно
доказано, что только такая высокая концентрация
тромбоцитов и обеспечивает их стимулирующий эффект за счет запуска цитокиновых реакций и выделения множества факторов роста. При меньшей концентрации (меньше 1 млн клеток /мл) стимулирующий
эффект тромбоцитов отсутствует. В богатой тромбоцитами плазме находятся все основные 6 факторов
клеточного роста:

•
PDGF активирует фибробласты и миоциты гладкомышечной ткани, клеточный рост; стимулирует синтез коллагена и гликозаминогликанов,
ангиогенез; усиливает образование грануляционной ткани, формирование матрикса коллагена
и кости с участием костных морфогенетических
белков;

•
TGF регулирует метаболизм костной ткани, апоптоз; усиливает синтез белков межклеточного матрикса;

•
IGF cтимулирует пролиферацию клеток костной
и хрящевой тканей; активирует ангиогенез; стимулирует заживление мышечной ткани;

•
FGF стимулирует ангиогенез и пролиферацию фибробластов, экспрессию их в костную ткань; улучшает заживление мышечной ткани;

•
VEGF стимулирует рост новых кровеносных сосудов, антиапоптоз;

•
EGF активирует пролиферацию эпидермальных и
эпителиальных клеток, закрытие кожной раны; стимулирует ангиогенез.
Тромбоциты также содержат различные белки,
цитокины и другие биоактивные факторы, которые
являются ведущими в процессах клеточной дифференцировки, пролиферации и регенерации. Вышеуказанные структуры индуцируют миграцию и пролиферацию мезенхимальных клеток-предшественников, стимулируют неоангиогенез и регенерацию
тканей глаза. Кроме факторов роста PRP содержит
некоторые белки плазмы — фибриноген, протромбин и др., которые также влияют на процессы ре
• РВЖ • № 2/2017 •
7

Рис. 3. Тромбоциты в нормальной крови (слева) и в обогащенной плазме

Fig. 3. Platelets in normal blood (left) and in rich plasma

Рис. 4. Взятие крови из периферической вены в пробирку для плазмолифтинга 

Fig. 4. Taking blood from a peripheral vein in a test tube for plazmolifting

Рис. 5. Кровь до центрифугирования и разделение на фракции после
центрифугирования. Стрелками показано (сверху вниз): плазма, гель,
эритроцитарный сгусток. Пояснение в тексте 

Fig. 5. The blood before centrifugation and separation into fractions after
centrifugation. Arrows show (from top to bottom): plasma, gel, erythrocyte
clot. Explanation in the text

А.Г. Шилкин, М.А. Войтеха, Т.Н. Павлова, Д.А. Ротанов, К.А. Новикова

генерации, являясь матрицей для миграции клеток.
При введении плазмы, обогащенной факторами роста в патологический очаг происходит ускоренное восстановление поврежденных тканей, уменьшаются
воспалительные процессы и улучшается трофика непосредственно в очаге поражения. Кроме того, цитокины вызывают опосредованно приток стволовых
клеток к пораженному участку [4, 6, 7].
Концентрация факторов роста, которые поступят
в ткани, прямо пропорциональна концентрации тромбоцитов, но до определенного уровня — не выше 
1,5 млн клеток /мл. Дальнейшее увеличение концентрации тромбоцитов уже не приводит к пропорциональному увеличению эффективности. Преимущества данной методики — безопасность (используют
собственную кровь пациента) с точки зрения инфекционных заболеваний и образования антител, физиологичность, простота, кроме того, она гораздо дешевле, чем использование стволовых клеток. Сегодня PRP применяют в медицине практически во всех
направлениях: косметологии, стоматологии, отоларингологии, пластической, спортивной, эстетической, общей и челюстно-лицевой хирургии, ортопедии. Зачастую, в хирургии и стоматологии используют инъекцию в участок ткани, на котором производят хирургическую манипуляцию, либо помещают
тромбоцитарный сгусток в полость, которую планируют заполнить костной тканью. В косметологии
введение приготовленной плазмы осуществляется мезотерапевтическим методом при помощи тонких игл.
Буквально за несколько лет PRP стала быстро осваиваться зарубежными и отечественными ветеринарными клиниками, в первую очередь для лечения патологий суставов и конечностей у лошадей и собак.
Сейчас в США появилось даже специальные обрудование для применения плазмы в ветеринарии [4].
В медицинской офтальмологии метод стал распространяться только недавно, но уже появился ряд
исследований (к сожалению, пока в основном в Европе и США) по применению плазмы у человека при
синдроме сухого глаза и других патологиях. В рос
сийской ветеринарной офтальмологии этот метод лечения применяют только в нашем Центре. В зарубежной литературе присутствуют ссылки на публикации ветеринарных американских офтальмологов об использовании этого метода. В личных беседах с несколькими ведущими офтальмологами из
США выяснилось, что все они знают про этот метод
лечения, но больше с научной точки зрения, а не с
практической.

Цель исследования
Разработать теоретические обоснования и практическую методику получения плазмы, обогащенной факторами роста, для лечения патологий глаз у собак и
кошек.

Материалы и методы
В нашем центре PRP используется около трех лет. 
С ее помощью нами было пролечено 30 животных в
возрасте от 6 месяцев до 15 лет (собак — 25, основные
породы: йоркширский терьер, английский и французский бульдог, боксер. Кошек — 5, в основном метисы) с различными дистрофическими заболеваниями
глаз общим числом 43.
Перед применением плазмы и после него во всем
периоде наблюдения животные проходили стандартное офтальмологическое обследование.
Передний отрезок глаза исследовали с помощью налобного биомикроскопа («Heine», Германия), щелевой
лампы («Shin Nippon», Япония; и «KEELER», Британия). Внутриглазное давление измеряли тонометрами «Tonovet» и Маклакова. Количество слезопродукции
определяли по тесту Ширмера. Размер роговичной эрозии контрастировали флюоресцеином.
Состояние сетчатки и зрительного нерва визуализировали с помощью прямого и обратного бинокулярного офтальмоскопа. При необходимости проводили ЭРГ («Retiport Аcrivet» Германия).

Результаты и обсуждение
Предложены различные методики получения PRP:
путем однократного, двукратного и даже трехкратного центрифугирования, применения пробирок с
разделительным гелем и без него, с использованием частоты вращения от 1,5 до 6,5 тыс. мин-1. 
Эффективность каждой из методик носит дискутабельный характер и является благодатным полем
для дальнейших исследований в ветеринарии и медицине.
Для лечения заболеваний в ветеринарной офтальмологии мы адаптировали и применили наиболее широко используемую в нашей стране медицинскую методику выделения PRP, предложенную профессором
Р.Р. Ахмеровым. Ее несомненное преимущество —
получение большего количества плазмы (пусть даже
несколько более бедной тромбоцитами, чем при использовании методик двукратного центрифугирования. Это очень важно при лечении миниатюрных собак, склонных к эрозиям и синдрому сухого глаза. 
У таких животных зачастую бывает трудно набрать
даже минимальные 8 мл крови для получения плазмы, не говоря о большем количестве крови, необходимом для двукратного центрифугирования).

8
• РВЖ • № 2/2017 •

Рис. 6. Субконъюнктивальная инъекция плазмы 

Fog. 6. Рlasma subconjunctival injection

Применение плазмы, обогащенной тромбоцитами, в ветеринарной офтальмологии

Суть методики состоит в следующем. У животного брали кровь (8 мл) из вены в пробирки для плазмолифтинга (рис. 4). Эти вакуумные пробирки запатентованы профессором P.P. Ахмеровым. Они содержат сепарационный разделительный гель и имеют
высокий уровень очистки плазмы от эритроцитарного сгустка. В качестве антикоагулянта выступает гепарин. Сами пробирки сертифицированы для применения в медицине и полностью отвечают всем
стандартам безопасности. Единственный недостаток
пробирок для плазмолифтинга — их высокая стоимость, что ограничивает более широкое применение
плазмы у животных [1, 3].
Пробирки с кровью устанавливали в центрифугу
«ЕВА-20» («Hettich», Германия), которая разработана специально для получения плазмы, обогащенной
факторами роста, так как обеспечивает быстрое разделение крови на фракции. Центрифуга очень удобна в работе, занимает мало места и не требует какой-либо специальной подготовки врача, поэтому и
рекомендуется для использования всеми ведущими
специалистами [3].
Пробирки центрифугировали однократно в течение 5 мин при 2,5 тыс. мин-1 (методические рекомендации для плазмолифтинга в центифуге
«ЕВА-20»). Для других центрифуг частота вращения может быть иной. Большая частота вращения нецелесообразна, так как приводит к гибели
клеток. После центрифугирования кровь разделялась на три основные составляющие: сверху желтоватая диффузная, богатая тромбоцитами плазма, в средней части непрозрачный гель белого цвета, внизу темно–красный тяжелый эритроцитарный сгусток (рис. 5) [1].
PRP полностью извлекали из пробирки с помощью шприцевой иглы. Основным препятствием
для применения плазмы у миниатюрных собак служило следующее: было трудно, а порой и невозможно взять даже 8 мл крови. Плазму вводили животным в виде субконъюнктивальных инъекций
в дозе 0,5…1 мл или в виде инстилляций от 3 до
6 раз в день, сроком до 14 дней, в зависимости от
патологии (рис. 6). При инстилляциях для активации тромбоцитов и освобождения факторов роста использовали небольшое количество хлорида
кальция, при инъекциях его не применяли из-за
соображений безопасности.
При использовании PRP мы установили, что эта
методика абсолютно безопасна при местном применении в офтальмологии. Инстилляции и инъекции
плазмы в глаз не вызывают аллергических, воспалительных реакций и других нежелательных эффектов даже при длительном использовании. При осмотре роговицы, передней камеры, дна глаза после применения плазмы мы не визуализировали никаких

отклонений от нормы. Проведенные у нескольких
животных ЭРГ до и после лечения плазмой ни в одном случае не выявили ухудшения функций сетчатки, еще раз подтвердив полное отсутствие токсичного влияния этой методики на ткани глаза у собак и кошек [5, 8].

Заключение
Таким образом, применение PRP — это новое перспективное направление в ветеринарной офтальмологии при таких заболеваниях, как сухой кератоконъюнктивит, индолентные язвы роговицы, аллергические реакции, а также при состоянии после 
пересадки роговицы. При ее местном использовании нежелательные побочные реакции отсутствуют. Получение плазмы — достаточно простая и доступная манипуляция, не сопряженная с большими материальными затратами и необходимостью
специальной подготовки врача.

Библиографию см. на сайте издательства htth://logospress.ru

• РВЖ • № 2/2017 •
9

ABSTRACT

A.G. Shilkin, M.A. Voitekha, T.N. Pavlova, D.A. Rotanov, K.A. Novikova 

Center of Veterinary Ophthalmology Dr. Shilkina A.G. (129323, Moscow, Snezhnaya str., 13/1)

Application of Platelet Rich Plasma in Veterinary Ophthalomology. Currently, for treatment of eye infections in animals, there is a new effective method of cell therapy — treatment with plateletrich plasma, containing at least 1 mill. 
1 platelets per ml. That is, the platelet count in it exceed the
physiological norm is 5 times. Such a high concentration of
platelets in the affected tissues of the eyes of animals provides
a stimulating effect due to the launch of cytokine responses,
and select multiple growth factors. These cytokines are leading agents in the processes of cell differentiation, proliferation and regeneration. With the introduction of plasma enriched
with growth factors in the pathological focus we can see more
rapid recovery of damaged eye tissue, reducing of inflammation and improving of trophism directly into the lesion. This
procedure is safe (own blood of patient is taken), physiologic, does not cause any toxic, allergic reactions and was well tolerated by all animals. In russian veterinary ophthalmology
this method for the treatment of eye diseases in animals was
developed by us and has been successfully used in our clinic only. We have used PRP in treatment of more than 30 animals
with dry eye syndrome, keratitis, ulcers and chronic longterm
healing erosions of the cornea. In addition, plasma was administered to animals in the postoperative period after severe corneal
transplants using donor transplant. No complications were
observed in any patient.
Keywords: plasma, blood, stem cells, plazmolifting, platelets,
cat, dog.

Ключевые слова: атриовентрикулярная блокада,
электрокардиостимулятор, брадиаритмии, обмороки, собаки
Сокращения: АВ — атриовентрикулярный, АВС —
атриовентрикулярное соединение, АД — артериальное давление, Жел — желудочки, Пр — предсердия,
САУ — синоатриальный узел, ЧСС — частота сердечных сокращений

Понятие об аритмии и инцидентность патологии
Нарушения ритма сердца у собак — одна из наиболее частых причин обращения за ветеринарной помощью.
Под термином «аритмия» понимают все ритмы сердца, которые не являются нормальным синусовым ритмом. Брадиаритмиями называют нарушения ритма, характеризующиеся частотой сокращения Жел ниже нормы, установленной для животных определенного вида,
размера и возраста (для собак — менее 60 уд/мин). К данной группе аритмий относят нарушения автоматизма синусового узла (синусовая брадикардия, остановка или молчание синусового узла); изменения синоатриальной, внутрипредсердной и предсердно-желудочковой проводимости; молчание предсердий; синовентрикулярный ритм;
остановку желудочков и электрическую активность без
пульса [10, 12, 13].
Среди наиболее частых причин развития брадикардии у собак следует назвать АВ блокаду. Так, у 59 % собак с установленным кардиостимулятором показанием
к операции послужила АВ блокада III степени, у 9 % —
АВ блокада II степени высокой градации [14]. Породная
предрасположенность к данной патологии выявлена
у лабрадора ретривера [6], немецкой овчарки, бультерьера и бигля [6, 14].

Физиология активации сердечной деятельности
В физиологических условиях электрический импульс,
возникший в клетках водителя ритма синусового узла,
распространяется по системе специализированных структур (проводящей системе) к рабочему миокарду Пр и Жел,
где возникает электромеханическое сопряжение. Структурные изменения проводящей системы сердца вызывают нарушения в формировании или проведении импульса, что отражается на электрокардиограмме.

Первым звеном проводящей системы сердца является синусовый узел — структура, расположенная на уровне впадения краниальной полой вены в правое Пр. Здесь
специализированными клетками-водителями ритма
(пейсмейкерами) генерируется электрический импульс,
который затем распространяется в сторону миокарда
Пр через межузловые и межпредсердные пути, пока не
достигнет предсердно-узловых пучков, проксимального АВ пучка, а потом компактной части АВ узла. Данный узел размещается в нижней части правого Пр на
уровне предсердно-желудочкового фиброзного скелета
и продолжается в виде дистального АВ пучка. Проникающая часть дистального АВ пучка, или пучка Гиса,
проходит через правый фиброзный треугольник на уровне нижней части мембранной перегородки и соединяет проводящую систему области перехода с желудочковой проводящей системой. На входе в Жел дистальный АВ пучок разделяется на правую и левую ножки.
Левая ножка в свою очередь делится на передне-верхний и задне-нижний пучки, которые передают импульс
от межжелудочковой перегородки к верхушке сердца. Наконец, сеть Пуркинье соединяет ножки с миокардом Жел, обеспечивая быструю скоординированную
активацию всей сердечной мышцы [3, 10].
Ткань узлов состоит из клеток, обладающих спонтанным автоматизмом, что определяет их в качестве водителей ритма. Проводящая ткань представляет собой совокупность клеток, обеспечивающих распространение
электрических импульсов из узлов водителей ритма до
миокарда Пр и Жел [1, 10].

Характеристика АВ блокад
АВ блокада I степени (рис. 1) характеризуется задержкой проведения электрического импульса от Пр к Жел и
выражается в удлинении интервала P–Q. Этот интервал отражает время между деполяризацией синусового
узла и началом деполяризации Жел [3, 7, 10]. Задержка
проведения импульса при АВ блокаде I степени возникает при замедлении на любом этапе его прохождения —
от миокарда Пр до проксимальной части левой ножки
пучка Гиса. Таким образом, АВ блокады I степени можно подразделить на внутрипредсердные, внутриузловые
и возникающие внутри пучка Гиса или под пучком Ги
УДК 619: 619: 616.1: 616-08

Атриовентрикулярная блокада сердца у собак

• РВЖ • № 2/2017 •

КАРДИОЛОГИЯ

В.К. Илларионова1,2, кандидат биологических наук, руководитель отделения кардиологии, доцент кафедры физиологии, фармакологии и токсикологии А.Н. Голикова и И.Е. Мозгова (bio@biocontrol.ru), Д.Г. Коледенский3,4,
кандидат медицинских наук, кардиохирург, зам. директора по науке, доцент кафедры кардиологии, рентгенэндоваскулярных и гибридных методов диагностики и лечения (denniskoled@mail.ru).

1 Ветеринарная клиника «Биоконтроль» (115578. Москва, Каширское шоссе, д. 24, стр. 10).

2 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии — МВА имени К.И. Скрябина» (ФГБОУ ВО МГАВМиБ — МВА им. К.И. Скрябина) (109472. Москва, ул. Академика Скрябина, д. 23).

3 Центр патологии органов кровообращения (129110, Москва, Банный пер., д. 2).

4 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования «Российский университет дружбы народов» (115093,

Москва, ул. МиклухоМаклая, д. 8, кор. 2).

В статье рассмотрены нарушения атриовентрикулярной проводимости у собак. Клиническая значимость данной
патологии зависит от степени блокады. Последняя (третья степень АВ блокады) является одной из наиболее частых
причин развития симптомной брадикардии. Рассмотрены анатомические характеристики проводящей системы
сердца, типы нарушений АВ проводимости и их электрокардиографические особенности. Приведен обзор методов
лечения.

Атриовентрикулярная блокада сердца у собак

са. Блокада может быть следствием дегенеративных или
воспалительных патологий проводящей системы или обусловлена введением противоаритмических препаратов (дигиталис, бета-блокаторы, антагонисты кальция), нарушением электролитного баланса (гиперкалиемия) или гиперактивностью блуждающего нерва [1, 2, 10].
Электрокардиографические характеристики АВ блокады I степени включают в себя нормальную частоту и
конфигурацию зубцов Р и увеличение интервала P–Q (более 0,13 с у собак). Нормальная ширина комплексов QRS
свидетельствует о задержке внутрипредсердной или внутриузловой проводимости. Если комплексы QRS расширены (более 0,07 с у собак), то задержка проведения происходит в пучке Гиса или его ножках [7, 10].

АВ блокада II степени (рис. 2) характеризуется периодическим прекращением проведения импульсов от
Пр к Жел. При этом один или несколько зубцов Р на электрокардиограмме не сопровождаются комплексами QRS.
Выраженность АВ блокады можно охарактеризовать соотношением числа зубцов Р и комплексов QRS. Отношение предсердно-желудочковой проводимости выражают
в виде дроби, в роли числителя которой выступает число
зубцов Р, а в роли знаменателя — число комплексов QRS.
Так, если проводится только каждый третий импульс, говорят об АВ блокаде II степени с проведением 3:1.
АВ блокады II степени могут встречаться в норме у молодых собак, а также возникать при повышении тонуса блуждающего нерва, кроме того, они сопровождают
хронические респираторные болезни. Этот тип блокады появляется при дегенеративных и/или воспалительных заболеваниях проводящей системы. У собак породы мопс существует наследственная предрасположенность к стенозу на уровне пучка Гиса. К АВ блокаде II степени также может привести дигиталисная интоксикация,
введение антагонистов кальция, бета-блокаторов и опиоидных анальгетиков [7, 10, 12].

АВ блокада II степени может быть типа Венкенбаха
(Мобитц I) или типа Мобитц II. При типичных периодах Венкенбаха интервал P–Q удлиняется до выпадения
комплекса QRS. Это сочетается с постепенным сокращением интервалов R–R. Место блокады при этом типе
нарушения проводимости обычно расположено на уровне предсердно-желудочкового узла, поэтому комплексы QRS не расширены. 
Чаще встречается атипичная форма типа Мобитц I с
отношением предсердно-желудочковой проводимости
более 7:6 [10].
Периодика характеризуется различной длительностью
интервала P–Q и отсутствием постепенного сокращения интервалов R–R перед непроведенным зубцом Р. Интервал P–Q,
который следует за блокадой, короче предшествующего. 
АВ блокада II степени типа Мобитца II имеет относительно постоянные P–Q интервалы перед и после непроведенного зубца Р. Блокада при этом типе нарушения
проводимости расположена в пучке Гиса или ниже и связана с задержкой внутрижелудочкового проведения. Такой тип блокады часто указывает на серьезную патологию системы Гиса–Пуркинье [2, 10, 12].
При постоянной АВ блокаде II степени типа 2:1 (высокой градации) предсердно-желудочковая проводимость
прерывается каждый второй раз. На электрокардиограмме наблюдают зубцы Р с постоянным отношением между предсердной и желудочковой активацией 2:1, то есть

поочередно за зубцом Р следует комплекс QRS или зубец
блокируется. Интервалы P–Q могут быть нормальными
или увеличенными, комплексы QRS обычно нормальной
длительности, но могут быть и широкими при задержке проведения на уровне Жел [10…14].
Особым типом предсердно-желудочковой блокады II
степени развитого типа является чередующийся феномен Венкенбаха. При этой аритмии наблюдают базовую
предсердно-желудочковую блокаду II степени с постепенным увеличением интервала P–Q у проводимых импульсов, что приводит к блокаде с отношением предсердножелудочковой проводимости 3:1 или 4:1. Во время таких
периодов блокады развитого типа могут наблюдаться желудочковые выскальзывающие ритмы с неполной предсердно-желудочковой диссоциацией.

АВ блокада III степени (рис. 3) характеризуется полным прекращением проведения импульсов из Пр к Жел.
В этом случае Пр и Жел функционируют под контролем
различных водителей ритма. Если водитель желудочкового ритма находится ниже АВ области, то комплексы QRS
расширены и деформированы. При АВ блокаде III степени
наблюдают АВ диссоциацию, характеризующуюся наличием двух ритмов: синусового (более частого), который активирует Пр, и идиовентрикулярного (более медленного),
который активирует Жел. АВ диссоциация называется
полной, если ни один из наджелудочковых импульсов
не достигает Жел, и неполной, если часть наджелудочковых импульсов проводится к миокарду Жел [10].

• РВЖ • № 2/2017 •
11

Рис. 1. Схема, показывающая прохождение импульса от CАУ к Жел при
АВ блокаде I степени
Fig. 1. Diagram showing the passage of the impulse from sinoatrial node to
the ventricles in I degree AV block

Рис. 2. Схема, показывающая блокированный импульс из САУ при АВ
блокаде II степени
Fig. 2. Diagram showing the blocked impulse from sinoatrial node to the
ventricles in II degree AV block

Рис. 3. Схема, показывающая блокированные импульсы из САУ, и
импульсы, исходящие из АВ узла, расположенного ниже места блокады
Fig. 3. Diagram showing the blocked impulses from the sinoatrial node and the impulses coming from the atrioventricular node, which is located below the blockade