Книжная полка Сохранить
Размер шрифта:
А
А
А
|  Шрифт:
Arial
Times
|  Интервал:
Стандартный
Средний
Большой
|  Цвет сайта:
Ц
Ц
Ц
Ц
Ц

Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2012, № 1

Бесплатно
Основная коллекция
Артикул: 483953.0010.99
Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные [Электронный ресурс] – М. : Логос Пресс, 2012. - № 1. – 48 с. – ISSN 1815-0195. - Текст : электронный. - URL: https://znanium.com/catalog/product/491801 (дата обращения: 05.05.2024)
Фрагмент текстового слоя документа размещен для индексирующих роботов. Для полноценной работы с документом, пожалуйста, перейдите в ридер.
ISSN 5181501959

сельскохозяйственные
животные

1

2012
ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Биотехника размножения

Паразитология

Патоморфология

Иммунология

Фармакология

Гематология

Лабораторная диагностика

Главный редактор
Ф.И. Василевич

Выпускающий 
редактор
В.В. Ракитская

Редакционная 
коллегия
Акбаев М.Ш.
Андреева Н.Л.
Архипов И.А.
Балакирев Н.А.
Белова Л.М.
Бессарабов Б.Ф.
Буряков Н.П.

Верховский О.А.
Власов Н.А.
Грищенко Л.И.
Данилевская Н.В.
Жаров А.В.
Кузнецов А.И.
Максимов В.И.
Пронин А.В.
Санин А.В.
Сидорчук А.А.
Сноз Г.В.
Сотникова Л.Ф.
Стекольников А.А.
Федоров Ю.Н.
Шустрова М.В.
Щербаков Н.П.

Воспроизведение материалов в любом виде, 
включая электронный, возможна только по письменному 
согласованию с издательством
Редакция не несет ответственности 
за содержание рекламных материалов
Рукописи, принятые на рассмотрение, 
редакция не возвращает

Научнопрактический журнал
Издается с марта 2005 г.

«Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные» входит в Перечень ВАК ведущих
рецензируемых научных журналов и изданий, в которых
должны быть опубликованы основные научные результаты диссертации на соискание ученой степени доктора 
и кандидата наук (по зоотехническим и ветеринарным
специальностям, по биологическим наукам)

Учредитель: Издательский дом «Логос Пресс»
Директор М.В. Быльков 
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Дизайн и верстка Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127055, Москва, а/я 9
Email: rvj@logospress.ru, info@logospress.ru
Сайт: http://logospress.ru
Тел.: +7/495/2204816, факс: +7/495/6890575

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС7746191 от 12.08.2011

Оформление подписки
каталог «Почта россии» — 12594 (на первое полугодие 2012 г.)

Журнал выпускается при участии:
Учебнометодического объединения высших учебных заведений 
Российской Федерации по образованию 
в области зоотехники и ветеринарии

Федеральной службы по ветеринарному 
и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор)

Департамента ветеринарии Министерства сельского хозяйства РФ

РВЖ • МДЖ • № 1/2011

5

Содержание/Contents

Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
1/2012

Оригинальные статьи

Биотехника размножения

Аксенова П.В., Айбазов М.М.
Половая активность и спермопродукция козлов-производителей
в зависимости от режима эксплуатации . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

Паразитология

Петрусева Н.С., Бессонова Н.М., Коновалов С.Н. 
Сезонная динамика зараженности гельминтами
пантовых оленей . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8

Патоморфология

Рыжова Е.В., Белянин С.А.,Колбасов Д.В., 
Балышев В.М., Куриннов В.В., Пронин В.В., Корнева Г.В. 
Патоморфологические изменения у домашних свиней при 
остром и подостром течении африканской чумы свиней . . . . . . . 10
Салимов В.А., Жаров А.В., Салимова О.С.
Проявление эперитрозооноза свиней в хозяйствах
Самарской области . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 14

Иммунология

Коваленко А.М., Сноз Г.В., Сапегин В.М., Жабина В.Ю., Коваленко Л.В.
Изучение иммунобиологических свойств
противотуберкулезного препарата . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

Фармакология

Глотова Т.И., Сильников В.Н., Королева Л.С., 
Кунгурцева О.В., Тихонов В.Л., Глотов А.Г. 
Противовирусная активность нового химического соединения . . 22
Гончарова М.Н., Грищенко Л.И. 
Изучение токсичности ципрофлоксацина 
в опытах на сеголетках карпа . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25

Гематология

Москвина А.С.  
Изменение морфофизиологических показателей крови 
телят с возрастом и в процессе вакцинации . . . . . . . . . . . . . . . 28

Клинический случай

Дрошнев А.Е., Завьялова Е.А., Гулюкин М.И., Хлунов О.В. 
Современная вакцинопрофилактика радужной 
форели против вибриоза . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31

Лабораторная диагностика

Цимбалова К.Е., Колбасова О.Л. 
Контроль кросс-контаминации перевиваемых линий 
клеток коллекции ГНУ ВНИИВВиМ 
молекулярно-генетическими методами . . . . . . . . . . . . . . . . . . 34
Бурмакина Г.С., Малоголовкин А.С., Николаев А.В., 
Луницин А.В. Цыбанов С.Ж. 
Идентификация генома вируса геморрагической 
болезни кроликов методом ПЦР . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35
Елисеева О.В., Латышев О.Е., Гребенникова Т.В., Алипер Т.И. 
Тест-система на основе ПЦР «в реальном времени» 
для обнаружения парвовируса свиней . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 37

Новости науки и практики . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 41

Обзоры

Заблоцкий В.Т., Белименко В.В., Ахмадов Н.А.  
Бабезиоз (пироплазмоз) крупного рогатого скота. Часть 1 . . . . . 43

На правах рекламы . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45

Original articles

Reproduction biotechnology

Aksenova P.V., Aibazov M.M.
Sexual activity and sperm production of goat bucks 
at various modes of usage . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 6

Parasitology

Petruseva N.S., Bessonova N.M., Konovalova S.N. 
Dynamics of helminth infection of deer antler 
depending on the season . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 8

Pathomorphology

Ryzhova E.V., Beljanin S.A., Kolbasov D.V., 
Balyshev V.M., Kurinnov V.V., Pronin V.V., Korneva G.V. 
Pathomorphological changes in domestic swines under acute 
and subacute african swine fever . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 10
Salimov V.A., Zharov A.V., Salimova O.S.
Manifestation of Eperythrozoon suis 
in Samara region farms . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 14

Immunology

Kovalenko A.M., Snoz G.V., Sapegin V.M., Zhabina V.J., Kovalenko L.V.
Studying of immunobiological properties 
of an antitubercular preparation . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

Pharmacology

Glotova T.I., Silnikov V.N., Koroleva L.S., 
Kungurtseva O.V., Tikhonov V.L., Glotov A.G. 
Аntiviral activity of new chemical drug . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22
Goncharova M.N., Grischenko L.I. 
Study of ciprofloxacin’s toxicity 
in experiments at the carp . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 25

Нematology

Moskvina A.S.  
Quantify of hematological indicators of calves on ontogenesis 
and in the period of vaccination . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 28

Clinical case

Droshnev А.Е., Zavyalova Е.А., Gulukin M.I., Hlunov О.В. 
Modern vaccinal prevention of rainbow 
trout against vibriosis . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 31

Laboratory diagnostics

Tsimbalova K.E., Kolbasova O.L. 
Control of the cross-contamination of transplanted cell lines 
from the collection of National Research Institute of Veterinary
Virology and Microbiology by molecular-genetic . . . . . . . . . . . . . 34
Burmakina G.S., Malogolovkin A.S., Nikolaev A.V., 
Lunitsin A.V., Cibanov S.G. 
Identification of the rabbit hemorrhagic disease 
virus genome by PCR . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 35
Eliseeva O.V., Latushev O.E., Grebennikova T.V., Aliper T.I. 
Kit based on Real-time PCR for detection 
of porcine parvovirus . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 37

News of science & practice . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 41

Reviews

Zablotskiy V.T., Belimenko W.V., Ahmadov N.A.   
Bovine babesiosis (piroplasmosis). Part 1 . . . . . . . . . . . . . . . . . . 43

Advertising articles . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 45

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

6

БИОТЕХНИКА РАЗМНОЖЕНИЯ
Половая активность и спермопродукция
козлов-производителей в зависимости
от режима эксплуатации

Ключевые слова: козлы-производители, объем эякулята, половое поведение, половой сезон, репродуктивная функция, спермопродукция

Введение

Использование козлов-производителей для осеменения или накопления спермы в обычных условиях ограничивается половым сезоном, длительность которого
в различных регионах нашей страны варьируется, но
в среднем не превышает 8…14 недель. Известно, что
в неполовой сезон реализация репродуктивной функции у козлов, в частности, спермиогенез, не прекращается, а лишь угнетается в большей или меньшей степени [3]. При создании необходимых условий можно
получать сперму от козлов не только в эстральный сезон, но и в течение всего года [2]. Современные достижения биотехники воспроизводства позволяют подготавливать коз с искусственно индуцированной охотой
в любое время года [1, 4]. При наличии козы в охоте
в анэстральный сезон можно увеличить срок использования производителя. Поскольку изменение факторов внешней среды, с одной стороны, и длительная
эксплуатация козлов, с другой, могут отрицательно
отражаться на осуществлении их репродуктивной
функции, возникла необходимость изучить проявление воспроизводительных функций и подобрать оптимальный режим использования животных в анэстральный период.

Цель исследования

Изучить активность половых рефлексов и уровня
спермопродукции козлов в зависимости от длительности и режима использования в течение года.

Материалы и методы

В исследование включили 9 взрослых козлов-производителей, содержащихся на опытной станции ГНУ
СНИИЖК. Эксперимент проводили с декабря по июнь.
До эксперимента, в половой сезон, производителей использовали для осеменения козоматок, затем по режимам эксплуатации распределили на три группы по 3
животных в каждой.
Производителей 1-й группы на протяжении всего
эксперимента использовали с нагрузкой 4 (два сдвоенных)
эякулята в неделю (режим 2х2), производителей 2-й группы — 6 (три сдвоенных) эякулятов (режим 3х2), 3-й
группы — 8 (четыре сдвоенных) эякулятов (режим 4х2).
Интервал времени между получением первого и второго эякулятов не превышал 15 мин. Сперму получали
в искусственную вагину, для стимуляции половых рефлексов использовали козу в охоте. При необходимости

у самок индуцировали искусственную охоту фармакологическим способом. Исследовали объем эякулятов,
концентрацию и подвижность спермиев. Всего за время
эксперимента было исследовано 1226 эякулятов.

Результаты и обсуждение

Было установлено, что при непрерывной эксплуатации козлов сезонная половая депрессия не наступает, а половая активность, хотя и снижается в весенние
и летние месяцы, проявляется в степени, достаточной
для использования животных. Интенсивная половая
нагрузка более всего повлияла на такой показатель
спермопродукции, как объем эякулята (рис. 1).

После семимесячной непрерывной эксплуатации
козлов 3-й группы, средний объем эякулята уменьшился на 73,0 %, при этом, уже после трех месяцев использования он снизился более чем в половину (на 54 %).
У производителей 2-й группы объем эякулята за весь
период эксперимента уменьшился на 37 %, а при щадящем режиме в 1-й группе — на 35 %.
Концентрация спермиев в эякулятах животных 1-й
и 2-й групп оказалась наиболее константной величиной, в течение опыта изменялась незначительно и к
концу эксперимента уменьшилась на 11 и 15 % соответственно (рис. 2). В группе с максимальной нагрузкой концентрация гамет уменьшилась на 38 %,
причем резкое снижение показателя также началось
после трех месяцев эксплуатации. Аналогичной была динамика подвижности спермиев (рис. 3).

П.В. Аксенова, М.М. Айбазов, ГНУ «Ставропольский НИИ животноводства и кормопроизводства» РАСХН
(Ставрополь)

УДК 636.32/38.082

Рис. 1. Изменение объема эякулята в зависимости от режима
использования козлов-производителей

Рис. 2. Изменение концентрации спермиев в зависимости от
режима использования козлов-производителей

РВЖ • СХЖ • № 1/2012

7

П.В. Аксенова, М.М. Айбазов

Половая потенция козлов снижалась с увеличением срока использования, при этом степень снижения зависела от режима эксплуатации. Если в начале опыта при всех режимах использования от козлов
получали 90…100 % запланированных эякулятов, то
к концу опытного периода этот показатель значительно различался в зависимости от режима половой нагрузки. При длительном использовании производители не выдерживали нагрузку 8 садок в неделю. Среди
козлов этой группы количество отказов от садок в марте—июне составило в среднем 55 % (доходя до 71 %
в июне), тогда как в группах с нагрузкой 6 и 4 эякулятов в неделю число отказов не превышало 17 %, а
в среднем составляло 9,5 и 4 % соответственно. Динамика изучаемых показателей в 3-й группе животных
указывает на определенное половое истощение козловпроизводителей.
За весь период исследования от козлов 1-й группы
недополучили 16 эякулятов, что составило 4,8 % от
запланированного количества; от козлов 2-й группы — 38 эякулятов или 7,5 %; в 3-й группе показа
тель составил 232 эякулята или 48 % от запланированного.
По общему количеству выделяемых спермиев группа козлов с максимальной нагрузкой имела преимущество по сравнению с другими группами лишь в первые два месяца опыта, тогда как в конце эксперимента этот показатель был даже ниже, чем в группе
с минимальной нагрузкой. На третий месяц эксперимента количество полученных спермиев в 3-й группе сравнялось с аналогичным показателем во 2-й группе и лишь на 26 % превышало количество полученных
спермиев в 1-й группе при том, что число садок было
в 1,5 раза больше, чем во 2-й группе, и в 2 раза больше,
чем в 1-й. В марте общее количество полученных гамет было уже меньше, чем в 1-й и 2-й группах на
33,2 млрд против 42,4 и 33,2 млрд соответственно.
К концу эксперимента продуктивность козлов, используемых в максимальном режиме, была в 3 раза ниже, чем в 1-й группе и в 4 раза ниже, чем во 2-й. За
весь экспериментальный период от каждого козла
2-й группы в среднем было получено 458,7 млрд спермиев, против 329,2 млрд в 1-й группе и 428,4 млрд в
3-й группе.

Выводы

На основании экспериментальных данных можно констатировать, что наиболее перспективна
эксплуатация козлов-производителей с режимом
половой нагрузки три сдвоенных эякулята в неделю. При этом относительно умеренном режиме
эксплуатации у козлов сохраняются половые рефлексы, а объем и количество спермы уменьшаются
незначительно.

1.
Айбазов А-М. M., Малахова Л.С., Трубникова П.В. Результаты
стимуляции половой охоты у молочных коз в анэстральный период // Овцы, козы, шерстяное дело, 2006; 2: 34—35.
2.
Айбазов М.М. Трубникова П.В. О возможности круглогодового использования производителей для накопления от них замороженной спермы // Материалы Межд. научно-практич. конф.
«Биоресурсы, биотехнологии, экологически безопасное развитие
регионов Юга России». — Сочи, 2007.
3.
Аксенова П.В., Айбазов М.М. Особенности проявления воспроизводительной функции козлов в разные сезоны года // Сборник

научных трудов юбилейной межд. (2-й) научно-практ. конф., посвященной 40-летию образования СКНИИЖ «Научные основы повышения продуктивности сельскохозяйственных животных». — Краснодар, 2009.
4.
Трубникова П.В., Айбазов М.M., Милошенко Д.С. Результаты индукции множественной овуляции у зааненских коз // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2007;
Спец. выпуск: 37.

Summary
P.V. Aksenova, M.M. Aibazov. Sexual activity and sperm production of goat bucks at various modes of usage.
Results of goat bucks reproductive function research at various modes of usage are given. It is concluded, that
optimal mode of sexual load does not oppress sexual function of goat bucks allowing to use them during nonbreeding season as donors of sperm for freeze conservation.

Б и б л и о г р а ф и я

Рис. 3. Изменение подвижности спермиев в зависимости от режима
использования козлов-производителей

Сезонная динамика зараженности
гельминтами пантовых оленей

Ключевые слова: ашортиоз, гельминтофауна, копроскопические методы, трихоцефалез, эзофагостомоз,
элафостронгилез
Сокращения: ЖКТ — желудочно-кишечный тракт,
ИИ — интенсивность инвазии, ИО — индекс обилия,
ЦНС — центральная нервная система, ЭИ — экстенсивность инвазии

Введение

Проблема инвазионных заболеваний остается актуальной для пантового оленеводства Республики Алтай [5].
Одной из причин, препятствующих успешному развитию
отрасли, служат гельминтозные заболевания, в особенности, вызванные паразитами класса Nematoda [4, 6, 7,
9…12]. Об этом компоненте паразитоценоза пантовых
оленей в Горном Алтае известно уже почти пять десятилетий. Однако за эти годы произошли существенные изменения как в климатических условиях, так и в ассортименте антгельминтных средств, подходах в организации и проведении противопаразитарных мероприятий.
Все это не могло не отразиться на структуре гельминтофауны животных и численности паразитов. Чтобы разрабатывать рациональную и эффективную систему лечебно-профилактических мероприятий, необходимо учитывать современное состояние паразитоценоза [8].
Из нематодозов пристального внимания заслуживают гельминтозы легких, ЖКТ и мозга. Особенно опасен
элафостронгилез, возбудители которого локализуются
у маралов преимущественно в ЦНС [2, 8]. По данным
М.П. Любимова, при элафостронгилезе, ассоциированном
с другими гельминтозами, выход пантовой продукции
уменьшается на 37 %.
Течение гельминтозов, как правило, характеризуется
сезонностью, что связано с воздействием многообразных
факторов внешней среды, обусловленных природно-климатическими условиями. На течение влияют также степень
устойчивости маралов к заболеваниям, наличие промежуточных, дополнительных и резервуарных хозяев, состояние
пастбищ и технология содержания животных. Сезонность
обусловлена эволюционным приспособлением гельминтов к выделению преимагинальных форм в окружающую среду в тот период года, когда для них складываются наиболее благоприятные условия развития. Нематоды — самые распространенные возбудители заболеваний
у домашних и диких жвачных животных. Большая работа по изучению географического распространения гельминтов и их биологических циклов проведена учеными
под руководством К.И. Скрябина [10, 11], что позволило
определить видовой состав гельминтов, их хозяев, изучить
динамику зараженности по сезонам и разработать методы борьбы.
А.У. Возный проследил распределение гельминтов
в Алма-Атинской области, и выявил, что в весенний
период гельминтозы клинически проявляются в предгорной зоне на 15, а в горной на 20 суток позже, чем в

пустынной и пустынно-степной зоне. Он же предложил
проводить профилактику с августа по октябрь [1].

Цель исследования

Изучить динамику зараженности маралов гельминтами в зависимости от сезона и уточнить видовой состав
гельминтов маралов.

Материалы и методы

Исследования выполнены в специализированных
мараловодческих хозяйствах Республики Алтай и на
Соузгинском мясокомбинате. Материалом для исследования служили органы пищеварения маралов, полученные во время планового или вынужденного убоя. Гельминтофауну маралов изучали в различное время года.
Применяли копроскопические методы Г.А. Котельникова [3]. Вид гельминтов определяли с помощью специальных руководств К.И. Скрябина, Э.И. Прядко [8, 10]
с установлением таких показателей, как ЭИ, ИИ, ИО.

Результаты

Сезонные изменения зараженности пантовых оленей
гельминтами служат основой рационального построения системы диагностических и терапевтических мероприятий. Мы проанализировали сезонные изменения
зараженности нематодами ЖКТ 122 рогачей маралов.

Наиболее часто встречаются Ashworthius sidemi ЭИ
5,9 %, ИО 27,8±10,0, ИИ 30,7±15,6; А. gagarini ЭИ 4,8 %,
ИО 31,7±15,1, ИИ 35,4±18,0; реже — Trichocephalus
skrjabini ЭИ 4,5 %, ИО 8,1±0,9, ИИ 12,4±3,6; T. ovis
ЭИ 5,1 %, ИО 8,8±2,2, ИИ 15,1±4,8; Oesophagostomum
venulosum ЭИ 4,3 %, ИО 6,5±1,5, ИИ 8,8±2,2 и O. radiatum ЭИ 3,2 %, ИО 5,9±2,2, ИИ 11,3±4,8.
Пик экстенсивности и интенсивности зараженности
ашвортиями (A. sidemi и А. gagarini) рогачей приходится на август — ноябрь. В августе ЭИ составляет 16,2 %
при ИИ 125,4 экз., в сентябре ЭИ 14,4 %, ИИ 127,1 экз.
В октябре зараженность составила ЭИ 14,9 %, ИИ 122,3
экз., в ноябре ЭИ 16,3 %, ИИ 220,5 экз.
Трихоцефалюсы (T. skrjabini и T. ovis ) регистрировались в течение всех сезонов, преобладая в зимне-весеннее
время. В зимние периоды показатели составили: в январе —
ЭИ 19,2 %, ИИ 110,3 экз., феврале — ЭИ 10,0 %, ИИ 132,2 экз.,

Н.С. Петрусева, Н.М. Бессонова, С.Н. Коновалов, ГорноАлтайский государственный университет (Барнаул)

ПАРАЗИТОЛОГИЯ

УДК: 619: 616.995.1

8

Рис. 1. Экстенсивность инвазии, %, маралов в зависимости от сезона

ашвортии

трихоцефалюсы

эзофагостомумы

РВЖ • СХЖ • № 1/2012

9

Н.С. Петрусева, Н.М. Бессонова, С.Н. Коновалов

ноябре — ЭИ 5,8 %, ИИ 158,1 экз., в декабре — ЭИ 5,5 %,
ИИ 328,3 экз. В весенний период: в марте ЭИ составляет 9,7 %, ИИ 35,7 экз., апреле — ЭИ 9,1 %, ИИ 78,2 экз.,
мае — ЭИ 8,2 %, ИИ 59,4 экз. В летнее время: в июле — августе ЭИ 6,2 %, ИИ 19,1 экз., ЭИ 5,7 %, ИИ 13,7 экз. соответственно.
Сезонная динамика эзофагостомоза (O. venulosum и
O. radiatum) маралов выражена довольно ярко, нематоды
встречались с мая по февраль с ЭИ в мае 1,7 %,ИИ 14,1 экз.;
в апреле ЭИ 3,0 %, ИИ 5,3 экз. Наибольшая зараженность отмечена летом: в июне ЭИ составила 5,4 %, ИИ 10,1 экз.;
июле — ЭИ 6,6 %, ИИ 9,6 экз.; августе — ЭИ 5,2 %,
ИИ 11,2 экз. Осенью ЭИ в сентябре составляет 3,4 %,
ИИ 2,3 экз.; в ноябре — ЭИ 2,7 %, ИИ 2,0; декабре —
ЭИ 2,9, ИИ 1,9; январе — ЭИ 1,7, ИИ 3,1; феврале —
ЭИ 2,4 %, ИИ 2,2 экз.

Выводы

Согласно нашим наблюдениям, ашвортии и эзофагостомумы регистрировались в течение года, но с наибольшей численностью в летне-осенний период. Трихоцефалюсы
встречались на протяжении всех сезонов, преобладая в
зимне-весеннее время. Повышенная физиологическая
активность и массовое созревание большинства из них
наблюдаются весной и летом, в меньшей степени осенью.
На высокогорных пастбищах отмечено слабое заражение,
или животные совсем не заражаются гельминтами,
многое зависит от характера пастбищ и от водоемов. На
сырых влажных, затененных, покрытых хорошим травостоем пастбищах условия для развития и сохранения
личинок геогельминтов, как правило, значительно лучше, чем на пастбищах сухих, с плохим травостоем.
Животные заражаются гео- и биогельминтами исключительно на пастбищах, когда яйца, личинки и промежуточные хозяева гельминтов находят оптимальные
условия (тепло, влага) для развития, особенно на заболо
ченных участках. Поэтому в хозяйствах должен быть
предусмотрен сменный выпас животных на основе пастбищеоборота с использованием дополнительных парков.
Необходимо ликвидировать заболоченные участки на пастбищах как основные очаги заражения оленей гельминтами. Основные профилактические и лечебные мероприятия связаны с технологическими процессами ведения
пантового оленеводства. Оптимальное время для противопаразитарной обработки — весна (перед выходом на
пастбище) и осень (перед постановкой на зимние содержание). Для ежегодных лечебных мероприятий можно
рекомендовать такие противопаразитарные препараты,
как ивермек, баймек, сантомектин и др.
Установлено, что взрослые животные менее заражены нематодами, чем молодняк. Поэтому маралов следует содержать по возрастным группам.
Особое значение имеет дезинвазия. Известно, что одним из источников заражения гельминтами служит навоз, поэтому в зимниках, парках, у мест кормления животных его необходимо систематически удалять, а также
поддерживать чистоту на территории всего маральника.
Специальные мероприятия по борьбе с гельминтозами
оленей должны быть направлены на разрыв контакта
оленей с домашними животными, на дегельминтизацию
охотничьих и служебных собак.
Не следует допускать на зимовку больных животных.
Своевременное выявление гельминтозов в хозяйстве имеет большое значение в успешной профилактике данных
заболеваний. С этой целью маралов необходимо систематически подвергать копрологическим исследованиям
(10…20 % каждой половозрастной группы), а кроме того,
при вскрытии павших и забитых животных осматривать их внутренние органы на присутствие паразитов.
Вновь поступивших животных нужно сначала исследовать и подвергать противопаразитарной обработке,
только после этого выпускать в парк.

1.
Возный А.У. Зональное распространение гельминтозов в АлмаАтинской области / Эпизоотология, иммунитет, диагностика и химиопрофилактика паразитозов с.-х. животных в Казахстане. — Алма-Ата.:
Алма-Атинский зоовет. ин-т, 1984.
2.
Костяева А.Т., Костяев П.Е. К вопросу изучения гельмитофауныпантовых оленей Горно-Алтайской автономной области // Сб. науч. работ Алтайской НИВС, 1969; 2: 152—162.
3.
Котельников Г.А. Гельминтологические исследования животных
и окружающей среды. — М.: Колос, 1983.
4.
Луницын В.Г. Болезни пантовых оленей. — Новосибирск.:
Сиб. отд. ВНИОСПО РАСХН, 1998.
5.
Любимов М.П. Болезни пантовых оленей. — Барнаул.: Алт.
кн. изд-во, 1976.
6.
Овчаренко Д.А. Сезонная динамика и развитие Ashworthius sidemi, O. radiatum, O. venulosum пятнистого оленя // Паразитология–Л., 1968;
5 (2): 128—136.

7.
Петрусева Н.С. Система ограничительных мероприятий при
нематодозах желудочно-кишечного тракта пантовых оленей: методические рекомендации. — Горно-Алтайск.: РИО ГАГУ, 2004.
8.
Прядко Э.И. Гельминты пантовых оленей и их распространение в оленеводческих хозяйствах Казахстанского Алтая // Изв.
АН.Каз.ССР-Алма-Ата, 1965; 4: 61—63.
9.
Раабе И.Ю., Михайлов В.И., Шуклина Е.В. Паразитофауна животных в зоне мараловодства / Проблемы пантового оленеводства и пути их решения. — Барнаул.: Сиб. Отделение ВНИИПО РАСХН, 2007.
10.
Скрябин К.И. Метод полных гельминтологических вскрытий позвоночных, включая человека и оленей. — М.: МГУ, 1928.
11.
Скрябин К.И. Глистные инвазии Северных оленей. — М.:
МГУ, 1931.
12.
Тетерин В.В., Панасюк Д.И. Лечебно-профилактические
мероприятия при нематодозах маралов // Бюл. ВИГИС, 1990; 54: 107—
108.

Summary
N.S. Petruseva, N.M. Bessonova, S.N. Konovalova. Dynamics of helminth infection of deer antler depending on the season. Dynamics of helminth infection of deer antler depending on the season in maralovodcheskih farms
of Central Altai as well as the specific structure of helminths are studied.

Б и б л и о г р а ф и я

Патоморфологические изменения 
у домашних свиней при остром 
и подостром течении африканской
чумы свиней

Ключевые слова: африканская чума свиней, домашние свиньи, патоморфологические изменения
Сокращения: АЧС — африканская чума свиней, в/м —
внутримышечно, ГАЕ — гемадсорбирующие единицы

Введение

Африканская чума свиней (Pestis africana suum) —
высококонтагиозная, природно-очаговая вирусная болезнь домашних и диких свиней, вызываемая ДНК-содержащим вирусом семейства Asfarviridae, рода Asfavirus
[1, 5…7].
Экспериментально АЧС была воспроизведена в 70-е
годы прошлого столетия учеными Всероссийского института экспериментальной ветеринарии с использованием вирулентного изолята вируса АЧС, выделенного
при вспышке болезни в Португалии. Я.Р. Коваленко
с соавт. достаточно подробно описал клиническую картину, патолого-анатомические и патогистологические
изменения при данном заболевании [5…7].
В настоящее время на территории Российской Федерации циркулируют высокопатогенные изоляты вируса АЧС, вызывая у восприимчивых животных преимущественно острую и подострую формы течения болезни
[1, 2, 7].
Клинические и патолого-анатомические признаки
АЧС являются важной составляющей в диагностике
инфекции, а для полного понимания патогенеза заболевания необходимы данные патогистологических исследований.

Цель исследования

Выявить основные патоморфологические изменения при остром и подостром течении АЧС у домашних свиней при экспериментальном заражении
высокопатогенным полевым изолятом вируса АЧС Абхазия 02/07.

Материалы и методы

Подсвинки крупной белой породы в возрасте 2,5…3 мес
(n=6) были получены из сектора подготовки подопытных животных ГНУ ВНИИВВиМ.
Для заражения использовали гемадсорбирующий
вирус АЧС (изолят Абхазия 02/07), который был выделен при вспышке болезни в Абхазии в 2007 г. Подсвинков №1…4 заражали в/м в дозе 1000 ГАЕ50, животных
№5, 6 поместили в бокс, где ранее содержали больных
АЧС свиней.

Подсвинки №1 и №2 подвергнуты эвтаназии на 5-е
и 7-е сутки после заражения. Подсвинки №3…6 пали
на 8-е, 9-е, 11-е и 13-е сутки соответственно. В течение
эксперимента ежедневно проводили клинический осмотр животных. Для гистологического исследования
у павших подсвинков взяли пробы соматических (нижнечелюстных и предлопаточных), а также висцеральных (портальных, желудочных и почечных) лимфатических узлов, селезенки, легких, печени, почек.
Отобранный материал фиксировали в 10%-м растворе нейтрального формалина. Для проводки использовали гистологический процессор скоростной проводки Tissue-Tek®XpressTM X50. Уплотняли в парафине
в заливочном гистологическом центре Leika EG 1160.
Разлагали парафиновые блоки на срезы с помощью ротационного микротома Leika RM 2125 RT (толщина среза
4…5 мкм). Срезы депарафинировали, окрашивали гематоксилином и эозином и заключали под покровное стекло на рабочей станции Leica ST5010 Autostainer XL/
CV5030 c использованием среды BiO Maent. Исследовали под микроскопом Leica DM1000 и Leica DMB, проводили фотодокументирование.

Результаты

Лимфатические узлы. У животных №1 и 2 в нижнечелюстных и предлопаточных лимфатических узлах
макроскопически установлен серозный лимфаденит, гистологически отмечена гиперплазия лимфатических
фолликулов. Последние четко очерчены, в некоторых
хорошо выражены светлые центры размножения. Хорошо
видны сосуды различного калибра с пролиферирующим
эндотелием. В капсуле обнаружена диффузно-очаговая
полиморфноклеточная инфильтрация, на отдельных
участках отмечены грануляции и фиброз краевых синусов. В нижнечелюстных и предлопаточных лимфатических узлах животных, павших на 8-е и 9-е сутки
(№3, 4), выявлено следующее: серозно-геморрагический
лимфаденит, гистологическая структура сохранена,
фолликулы небольшие, без центров размножения. Сосуды плохо различимы. Капсула местами очагово инфильтрирована круглоклеточными элементами. Фиброз
краевых синусов. В очагах кровоизлияний отложения
гемосидерина. У свиней, павших на 11-е и 13-е сутки (№5, 6), в нижнечелюстных и предлопаточных лимфатических узлах наблюдали геморрагический лимфаденит. При гистологическом исследовании отмечены: резкое полнокровие сосудов всех калибров, ядер
Е.В. Рыжова1, С.А. Белянин2, Д.В. Колбасов2, В.М. Балышев2, В.В. Куриннов2, В.В. Пронин1, Г.В. Корнева1

1 ФГБОУ ВПО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия имени академика Д.К. Беляева».

2 ГНУ Всероссийский НИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии (Покров).

ПАТОМОРФОЛОГИЯ

УДК: 619:616.98:578.833.314

10