Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные, 2012, № 3

ISSN 5181501959

сельскохозяйственные
животные

3

2012
ÐÎÑÑÈÉÑÊÈÉ
ÂÅÒÅÐÈÍÀÐÍÛÉ
ÆÓÐÍÀË

Акушерство/Гинекология

Паразитология

Кормление

Иммунология

Гематология

Биохимия

Эпизоотология

Лабораторная диагностика

Новости науки и практики

Современные фармакои биопрепараты

Главный редактор
Ф.И. Василевич

Выпускающий 
редактор
В.В. Ракитская

Редакционная 
коллегия
Акбаев М.Ш.
Андреева Н.Л.
Архипов И.А.
Балакирев Н.А.
Белова Л.М.
Бессарабов Б.Ф.
Буряков Н.П.

Верховский О.А.
Власов Н.А.
Грищенко Л.И.
Данилевская Н.В.
Жаров А.В.
Кузнецов А.И.
Максимов В.И.
Пронин А.В.
Санин А.В.
Сидорчук А.А.
Сноз Г.В.
Сотникова Л.Ф.
Стекольников А.А.
Федоров Ю.Н.
Щербаков Н.П.

Воспроизведение материалов в любом виде, 
включая электронный, возможна только по письменному 
согласованию с издательством
Редакция не несет ответственности 
за содержание рекламных материалов
Рукописи, принятые на рассмотрение, 
редакция не возвращает

Научнопрактический журнал
Издается с марта 2005 г.

«Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные» входит в Перечень ВАК ведущих
рецензируемых научных журналов и изданий, в которых
должны быть опубликованы основные научные результаты диссертации на соискание ученой степени доктора 
и кандидата наук (по зоотехническим и ветеринарным
специальностям, по биологическим наукам)

Учредитель: Издательский дом «Логос Пресс»
Директор М.В. Быльков 
Руководитель проекта И.М. Шугурова, к.б.н.
Руководитель отдела маркетинга Е.В. Лебедева
Дизайн и верстка Я.В. Быстрова

Адрес редакции: 127055, Москва, а/я 9
Email: rvj@logospress.ru, info@logospress.ru
Сайт: http://logospress.ru
Тел.: +7/495/2204816, факс: +7/495/6890575

Свидетельство о регистрации СМИ:
ПИ № ФС7746191 от 12.08.2011

Оформление подписки
каталог «Почта россии» — 12594 (на первое полугодие 2012 г.)

Журнал выпускается при участии:
Учебнометодического объединения высших учебных заведений 
Российской Федерации по образованию 
в области зоотехники и ветеринарии

Федеральной службы по ветеринарному 
и фитосанитарному надзору (Россельхознадзор)

Департамента ветеринарии Министерства сельского хозяйства РФ

РВЖ • СХЖ • № 3/2012

Ðîññèéñêèé 
Âåòåðèíàðíûé 
Æóðíàë
Russian Veterinary Journal
3/2012

Актуальная тема

Джавадов Э.Д., Дмитриева М.Е. 
Эффективная вакцинопрофилактика — залог эпизоотического
благополучия промышленного птицеводческого предприятия . . . . . 6

Оригинальные статьи

Акушерство/Гинекология

Седлецкая Е.С., Дюльгер Г.П.
Частота распространения и клинико-эхографическая диагностика
гипофункции и кист яичников у высокопродуктивных коров . . . . . . 8

Паразитология

Криворучко С.В., Кошкина Н.А. 
Опыт борьбы с Argas persicus [Oken, 1818] на частном подворье . . . 10

Кормление

Кочиш И.И., Коломиец С.Н.
Оценка сорбционной способности адсорбента отечественного 
производства и его эффективности при выращивании 
цыплят-бройлеров . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Иммунология

Юров Г.К., Алексеенкова С.В., Юров К.П.
Специфичность гуморальной иммунной реакции у быков-производителей
на маркированную вакцину против ИРТ . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 14
Раев С.А., Алексеев К.П., Шемельков Е.В., Булгаков А.Д.,
Мусиенко М.И., Орлянкин Б.Г., Верховский О.А., Алипер Т.И.
Получение рекомбинантного капсидного белка цирковируса свиней
второго типа (генотип 2b) в бакуловирусной системе 
и использование его для изготовления вакцины . . . . . . . . . . . . . . . 17

Гематология

Парахневич А.В., Медведев И.Н., Максимов В.И. 
Функциональное состояние антикоагуляционной и фибринолитической
систем крови у здоровых новорожденных поросят . . . . . . . . . . . . . 20

Биохимия

Азарнова Т.О., Зайцев С.Ю., Найденский М.С., 
Ярцева И.С., Бобылькова А.Е.
Профилактика и коррекция гисто-биохимических нарушений 
у эмбрионов кур . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Эпизоотология

Масленникова В.И., Голева Т.П.
Эпизоотический процесс аскосфероза пчел при разной степени
поражения пчелиных семей клещом варроа в условиях теплиц . . . . . 25

Лабораторная диагностика

Ларионов С.В., Акчурин С.В.
Использование метода люминесцентного спектрального анализа клеток
железистого желудка цыплят для идентификации кишечных инфекций . 27
Найманов А.Х., Калмыков В.М.
ПЦР при диагностике паратуберкулеза крупного рогатого скота . . . . 30
Глотова Т.И., Глотов А.Г., Терентьева Т.Е., Кунгурцева О.В., Войтова К.В.
Пастереллез крупного рогатого скота на молочных комплексах:
частота выделения и характеристика культур . . . . . . . . . . . . . . . . . 32

Новости науки и практики . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 36

Обзоры

Белименко В.В., Заблоцкий В.Т., Христиановский П.И., Ахмадов Н.А.
Бабезиоз (пироплазмоз) крупного рогатого скота. Часть 2 . . . . . . . 40
Буряков Н.П.
Влияние нитратов на микрофлору рубца и продуктивность животных . . 42
Клечковский M., Kлючинский В., Якубовский T., Kудыба E.
Зависимость между острофазовым ответом, оксидативным статусом
и маститом у коров . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 46
Закутский Н.И. Гузалова А.Г.
Контагиозный пустулезный дерматит (контагиозная эктима) овец и коз . . 52

Современные фармако- и биопрепараты . . . . . . . . . . . . . . . . 57

Vital topic

Djavadov E.D., Dmitrieva M.E. 
Effective Vaccinal Prevention as Epizootic Pledge 
of Wellbeing Industrial Enterprise of Poultry Farming . . . . . . . . . . . . . . 6

Original articles

Obstetrics/Gynaecology

Sedletskaya E.C., Dyulger G.P.
Occurrence and Ultrusonic Identification of Hypoactive Ovaries 
and Cystic Ovarian Diseases in a High-producing Dairy Cattle . . . . . . . . 8

Parasitology

Krivoruchko S.V., Koshkina N.A. 
Struggle Experience of Argas persicus [Oken, 1818] on a Private Farmstead . . . 10

Feeding

Kochish I.I., Kolomiyets S.N.
Domestic Adsorbent in vitro Sorption Capacity, and the Impact 
of its Application upon the Output of the Broiler Chickens 
Breeding By-products . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 12

Immunology

Yurov G.K., Alexeyenkova S.V., Yurov K.P.
Specificity of Immune Responses in Cattle after Immunization 
by Marker IBRV Vaccine . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 14
Raev S.A., Alekseev K.P., Schemelkov Е.V., Bulgakov A.D., Musienko M.I.,
Orlyankin B.G., Verkhovski O.A., Aliper T.I.
Development of Porcine Circovirus Genotype 
2b Recombinant Capsid Protein and its' Employment 
in a Vaccine Production . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 17

Hematology

Parakhnevich A.V., Medvedev I.N., Maximov V.I. 
Functional State of Anticoagulant and Fibrinolytic Systems of Blood 
in Healthy Newborn Piglets . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 20

Biochemistry

Azarnova T.O., Zaitsev S.Yu., Naidenskiy M.S., 
Yartseva I.S., Bobilkova A.E.
Prevention and Correction of Physiological and Biochemical Disturbances
in the Embryos of A.E. Egg Chickens . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 22

Epizootology

Maslennikova V.I., Goleva T.P.
Epizootic Process of Askosferosis of Bees with the Different Degree of the Defeat
of Bee Families by the Varroa Mite under the Conditions of the Hot-houses . . . . 25

Laboratory diagnostics

Larionov S.V., Akchurin S.V.
Differential Intestine Infection Identification in Chickens Using Spectral
Luminescent Analysis of Serous Cuticle of Glandular Stomach . . . . . . . . . . 27
Naymanov A.H., Kalmykov V.M.
PCR in the Diagnosis of Paratuberculosis in Cattle . . . . . . . . . . . . . . . . . 30
Glotova T.I., Glotov A.G., Terentyeva T.E., Kungurtseva O.V., Voitova K.V.
Bovine Pasteurellosis on Big Dairy Farms: Frequency of Allocation 
and Characteristic of Cultures . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 32

News of science & practice . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 36

Reviews

Belimenko W.V., Zablotskiy V.T., Khyristianovskiy P.I., Akhmadov N.A.
Bovine Babesiosis (Piroplasmosis). Part 2 . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 40
Buryakov N.P.
Influence of Nitrates on Microflora of the Rumen and Efficiency of Animals . . 42
Kleczkowski M., Klucinski W., Jakubowski T., Kudyba E.
Dependence between Acute Phase Response, Oxidative Status 
and Mastitis of Cows . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 46
Zakutsky N.I., Gouzalova A.G.
ORF (Contagious Ecthyma) in Sheep and Goats . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 52

Modern pharmacological drugs & biopreparations . . . . . . . . . . 57

Содержание/Contents

5

АКТУАЛЬНАЯ ТЕМА

6

Ключевые слова: вакцинация, иммунитет, иммунодепрессия, профилактика
Сокращения: ИАЦ — инфекционная анемия цыплят,
ИББ — инфекционная бурсальная болезнь, ИБК —
инфекционный бронхит кур, НБ — ньюкаслская
болезнь

Профилактика инфекционных болезней — комплекс мероприятий, обеспечивающих эпизоотическое
благополучие хозяйства. Он включает в себя качественное проведение ветеринарно-санитарных мероприятий; соблюдение технологии выращивания птицы; создание благоприятных условий содержания;
использование полноценных и безопасных (в отношении патогенных микроорганизмов, грибов и продуктов их жизнедеятельности) кормов, соответствующих возрасту и направлению выращивания; профилактику стрессов; применение витаминно-минеральных препаратов, пробиотиков, фитопрепаратов,
препаратов, поддерживающих иммунную систему
в качестве общеукрепляющих, повышающих резистентность и антистрессовых средств и, конечно же,
специфическую профилактику.
В условиях крупномасштабного птицеводства, характерного для России, вакцинопрофилактика представляет собой один из основных способов противостояния инфекционным болезням. В настоящее время с помощью вакцин осуществляется профилактика
до 16-ти (с учетом серовариантов) инфекций (вирусных, бактериальных, паразитарных). Создание напряженного иммунитета против большинства из них достигается неоднократным введением вакцин.
При специфической профилактике нужно учитывать эпизоотическую ситуацию в птицеводческом
хозяйстве и регионе, спектр и уровень вирулентности
штаммов возбудителей, циркулирующих в хозяйстве,
уровень материнского иммунитета, прежде всего по
болезни Гамборо и др.
Очень важно подобрать вакцинные препараты для
профилактики ИББ, оказывающие минимальное повреждающее воздействие на иммунную систему. Отсутствие иммунодепрессивного состояния организма
cлужит залогом здоровья птицы, успешной реализации
ее генетического потенциала, получения качественной и безопасной продукции, высокой эффективности
и рентабельности производства.

Иммунопрофилактику ИББ проводят в раннем возрасте, при этом широко применяют вакцины из слабо аттенуированных штаммов (228Е, БГ, МВ). Поствакцинальный иммунитет против ИББ формируется
аналогично постинфекционному, обусловленному
проникновением в организм полевого вируса, а именно через тотальное разрушение клеток бурсы. При
репликации вируса происходит разрушение В-лимфоцитов (преимущественно незрелых на стадии их
активного деления), которые являются одним из
звеньев иммунной системы. Однако возбудитель ИББ,
обладая исключительной лимфотропностью, поражает не только бурсу, но и селезенку, тимус, лимфоидную ткань кишечника, Гардерову железу и,
вероятно, лимфоидную ткань головы. Массовая потеря определенной субпопуляции иммунокомпетентных клеток приводит к выпадению одного из
звеньев иммунитета, что вызывает немедленное снижение резистентности организма. В результате атрофии фабрициевой сумки, одного из основных органов иммунитета, у птицы могут развиваться поствакцинальные реакции, похожие на клиническое
проявление ИББ, выраженное иммунодефицитное
состояние, сопровождающееся, прежде всего, манифестацией секундарных инфекций (колибактериоз, или эшерихиоз), а также снижением устойчивости к вирусным респираторным инфекциям, недостаточным иммунным ответом на введение живых
вакцин против НБ и ИБК.
Учитывая негативную патогенетическую особенность (выраженную иммунодепрессию) живых вакцин против ИББ, нами отработаны схемы вакцинаций, снижающие или полностью устраняющие поствакцинальные реакции в виде иммунодепрессивного состояния птицы. Основополагающий момент
этих схем профилактики — широкое использование
инактивированных вакцин против ИББ в раннем возрасте (начиная с суточного). Этим достигается полноценный иммунный ответ, подавляется субклиническое течение ИББ, что важно с эпизоотологической точки зрения, резко уменьшается число случаев проявления секундарных инфекций, снижается
до минимума использование ветеринарных препаратов (прежде всего антибиотиков), и обеспечивается высокая продуктивность в соответствии с генетическим потенциалом. Однако, ветеринарным спе
Эффективная вакцинопрофилактика —
залог эпизоотического 
благополучия промышленного
птицеводческого предприятия

Э.Д. Джавадов, доктор ветеринарных наук, членкорреспондент РАСХН, 
М.Е. Дмитриева, кандидат ветеринарных наук 
ГНУ «Всероссийский научноисследовательский ветеринарный институт птицеводства» 
Россельхозакадемии (ГНУ ВНИВИП Россельхозакадемии) (СанктПетербург)

УДК 619: 578.832.1:636.5

РВЖ • СХЖ • № 3/2012

7

Эффективная вакцинопрофилактика — залог эпизоотического благополучия 
промышленного птицеводческого предприятия

циалистам необходимо учитывать, что не все инактивированные вакцины пригодны для применения
цыплятам суточного возраста и дают вышеописанные
результаты.
В хозяйствах, неблагополучных по ИАЦ, иммунизация цыплят в суточном возрасте инактивированной вакциной против ИББ снижает иммунодепрессивное влияние вируса ИАЦ на организм птицы
и риск формирования неполноценного иммунного
ответа на вакцинацию против НБ и ИБК. Как следствие — потери, связанные с падежом от ИАЦ и от
колибактериоза (эшерихиоза), незначительны. Кроме этого, обеспечивается достижение высокой продуктивности.
Иммунизация против ИАЦ (как и против инфекционного энцефаломиелита птиц) исключительно
инактивированными вакцинами является принципиальной позицией ГНУ ВНИВИП Россельхозакадемии. Данная инфекция протекает латентно
у птицы племенных, родительских и промышленных стад. Вирус, подобно вирусу ИББ, весьма устойчив в окружающей среде, и способен длительное время персистировать в организме птицы. Причем это относится не только к полевому вирусу, но
и вакцинному. В результате, несмотря на иммунизацию живой вакциной вместо надежной защиты цыплята-бройлеры трансовариально инфицируются, что проявляется аплазией костного мозга
в раннем возрасте (до 10 дней), дегенеративными
изменениями в бурсе (гиперемия, наличие серознослизистого экссудата), резким отставанием в росте
и развитии в возрасте 10…14 дней и повышенной
смертностью. Таким образом, цыплята-бройлеры, начиная с первых дней жизни, находятся в состоянии иммунодепрессии. При вакцинации (против ИБК, НБ, кокцидиоза) на иммунодепрессивном
фоне снижается ее эффективность, отмечается
субклиническое течение ИББ и НБ, снижаются сохранность и продуктивность птицы, поддерживается

резервуар возбудителей инфекционных болезней 
в окружающей среде.
По нашему мнению, альтернативная замена живых вакцин на инактивированные — это один из способов повысить эффективность схем специфической
профилактики. Полная замена живых вакцин на инактивированные возможна при профилактике таких болезней, как ИББ, реовирусный теносиновит, респираторный микоплазмоз. Значительно уменьшить число
иммунизаций (до одной) живой вакциной против НБ
можно и за счет введения в схему инактивированной
вакцины против НБ. Такая мера предназначена, прежде всего, для хозяйств, расположенных в стационарно неблагополучных районах по НБ, и тех, в которых
регистрируется субклиническое течение НБ.
При составлении схем вакцинаций всегда возникают проблемы с соблюдением интервалов применения живых вакцин. Решению этой проблемы способствует замена живых вакцин на инактивированные — как моновалентные, так и ассоциированные.
В этом случае в один прививочный день можно использовать различные комбинации живых и инактивированных вакцин и иммунизировать птицу одновременно против нескольких болезней. При этом снижается
кратность обработок, выдерживаются рекомендуемые интервалы между вакцинациями и уменьшается стрессовая нагрузка на птицу.

Наша стратегия и тактика — использование инактивированных вакцин с раннего возраста не как дополнение к живым вакцинам, а как
их альтернативу, в тех случаях, когда она возможна (ИББ, НБ, респираторный микоплазмоз, реовирусная инфекция, инфекционный энцефаломиелит, инфекционная анемия цыплят). Накоплен большой
опыт профилактики ИББ и НБ у цыплят мясных и яичных кроссов в ситуациях, когда живые препараты неэффективны или когда птица
имеет неоднородный материнский иммунитет. Важно отметить, что
применение инактивированной вакцины против ИББ не индуцирует
поствакцинальной иммуносупрессии, снижает частоту сопутствующих инфекционных заболеваний и уровень возбудителя в окружающей среде, эффективно защищает птицу при любом титре материнских антител против ИББ.

Summary
E.D. Djavadov, M.E. Dmitrieva. Effective Vaccinal Prevention as Epizootic Pledge of Wellbeing
Industrial Enterprise of Poultry Farming. Specific prevention of infectious diseases of birds is one
of the main ways of opposition to infectious diseases in a complex of the actions providing epizootic
wellbeing of a poultryfarming economy. Replacement in the scheme of specific prevention of some live
vaccines on inactivated, application of inactivated vaccines at early age, since a daily allowance, prevents
development of immunosuppressive conditions of a poultry, emergence of sekundary infections, possibility of a reversion of vaccinal strains, and also allows to observe recommended intervals between vaccination etc.

«Journal of Small Animal Practice/Российское издание» — первое переводное научно-практическое издание
для ветеринарных врачей, освещающее проблемы лечения и профилактики заболеваний мелких домашних
животных.
Оригинальное издание «Journal of Small Animal Practice» – официальный печатный орган Всемирной ассоциации ветеринарии мелких домашних животных (WSAVA) и  Британской ассоциации ветеринарии мелких
домашних животных (BSAVA)

Подписка на журнал осуществляется через редакцию и каталог Почта России.
Издательский дом «Логос Пресс», 127055, Москва, а/я 9.
Http://logospress.ru, e-mail: info@logospress.ru, тел/факс: +7 (495) 220-4816.

Частота распространения и клиникоэхографическая диагностика
гипофункции и кист яичников 
у высокопродуктивных коров

ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ

8

Е.С. Седлецкая, аспирант, Г.П. Дюльгер, доктор ветеринарных наук
Российский государственный аграрный университет — МСХА имени К.А. Тимирязева (Москва)

Ключевые слова: гипофункция яичников, кисты
яичников, коровы, фолликулярные и лютеиновые
кисты, ультразвуковые исследования
Сокращения: КРС — крупный рогатый скот,
УЗИ — ультразвуковые исследования

Введение

Дисгормональная патология яичников занимает одно из ведущих мест в структуре послеродовых и гинекологических заболеваний КРС. Нарушения функциональной деятельности гонад многообразны, они
могут носить транзиторный или устойчивый характер, клинически проявляться в виде гипофункции яичников, ановуляции, с трансформацией (или без нее)
преовуляторных фолликулов в фолликулярные или лютеиновые кисты яичников, персистенцией желтого тела, формированием функционально неполноценного
желтого тела и его преждевременной регрессией.
На современном этапе наиболее распространенным
и доступным методом, с помощью которого можно диагностировать овариальные дисфункции у коров и контролировать эффективность проводимой гормонотерапии,
является трансректальная пальпация, а наиболее информативным и точным — трансректальная визуальная (двухмерная) эхография. Посредством УЗИ удается не только четко визуализировать кистозные образования яичников и дифференцировать их от других объемных овариальных структур (крупных пузырчатых фолликулов,
компактных и кистозных желтых тел), но и получать ценную диагностическую информацию об их размерах, числе, локализации, а самое главное, о морфотипе (по наличию/отсутствию пристеночной лютеиновой ткани); на
основании этого назначать дифференцированную гормонотерапию фолликулярных и лютеиновых кист яичников, оценивать ее эффективность на ранних сроках лечения [1…3]. Высокая информативность и возможность многократных исследований обеспечивают приоритет УЗИ
для диагностики и оценки результатов лечения и при других формах дисфункции яичников у коров, в частности, при овариальной гипофункции. Однако, особенности фолликулогенеза и нарушения функциональной деятельности гонад у коров при послеродовой гипофункции яичников изучены еще недостаточно.

Цель исследования

Изучить частоту распространения и особенности
проявления послеродовой гипофункции и кистозной
патологии яичников у коров по данным УЗИ.

Материалы и методы

Работа выполнена в 2008—2012 гг. на кафедре
зоогигиены, акушерства и ветеринарии ФГБОУ ВПО
«Российский государственный аграрный университет — МСХА имени К.А. Тимирязева» и на базе молочно-товарной фермы ЗАО Агрофирма «Подмосковное» Московской области.
Материалом для исследования служили данные
журналов зоотехнического и ветеринарного учета и
результаты динамического клинико-эхографического исследования половых органов 285 коров чернопестрой породы, из которых 115 были первотелками,
170 — полновозрастными коровами (2…10-й лактации). От коров в среднем было получено по 3,05±1,05
теленка. Удой за последнюю законченную лактацию
у повторно рожавших коров составил 8436,0 ± 250,6 кг
молока.
Первое клиническое исследование новотельных коров для общей оценки соматического и репродуктивного состояния их здоровья проводили на 14…20-й
день после отела. Обращали внимание на упитанность
животного, наличие/отсутствие и характер выделений вульвы, состояние наружных половых органов,
яичников и матки, молочной железы, наличие генитальной и/или сопутствующей экстрагенитальной патологии. Из опыта исключали ослабленных, истощенных животных, с клинически выраженными
признаками мастита и тяжелыми гнойно-воспалительными поражениями конечностей, парагенитальными абсцессами.
Первое клинико-эхографическое исследование (осмотр наружных половых органов, трансректальную
пальпацию и ультразвуковое сканирование яичников
и матки) у подопытных коров выполнили на 21…
30-й день после отела. При визуальном осмотре
наружных половых органов обращали внимание
на наличие/отсутствие и характер выделений, при
ультразвуковом сканировании внутренних половых
органов — на состояние матки и яичников. УЗИ яичников и матки проводили через стенку прямой кишки при помощи ультразвукового диагностического
прибора LOGIQ a 100 MP (Индия), оснащенного
линейным интраректальным датчиком с частотой 
5 МГц.
Если на 21…30-й день после отела не выявляли желтое тело или кистозных образований в яичниках (посредством УЗИ), коров исследовали каждые 7 дней до
установления диагноза, а затем — в процессе лечения.

АКУШЕРСТВО / ГИНЕКОЛОГИЯ

УДК 619: 618.1

Частота распространения и клинико-эхографическая диагностика гипофункции 
и кист яичников у высокопродуктивных коров

РВЖ • СХЖ • № 3/2012

9

Если на 21…30-й день после отела выявляли желтое тело или признаки его формирования (при еженедельном наблюдении за овариальной активностью),
животных исследовали с перерывом в 1 мес (от 2 до
9 мес).
Гипофункцию и кисты яичников диагностировали по данным многократных (с интервалом 7 дней)
УЗИ. При ультразвуковом сканировании гонад за овариальные кисты принимали тонкостенные жидкостные образования с анэхогенным содержимым размером более 20 мм при отсутствии при первом и втором
исследовании желтого тела. О морфотипе кисты судили по наличию/отсутствию пристеночной лютеиновой ткани.

Результаты и обсуждение

Данные о частоте распространения овариальной
гипофункции и кист яичников у коров с учетом их
возраста приведены в таблицах 1 и 2.
Анализ данных таблицы 1 свидетельствует, что практически у каждой третьей новотельной коровы (101 гол,
или 35,4 %) в первые 40…60 дней после родов яичники находятся в гипофункциональном состоянии.
При этом на заболеваемость существенное влияние
оказывает возраст животного. Так, у коров-первотелок гипофункцию яичников диагностировали в 1,8 раза чаще (48,7 % против 26,5%; Р < 0,001), чем у полновозрастных коров.

1. Частота распространения послеродовой
гипофункции яичников у высокопродуктивных
коров черно-пестрой породы

При динамическом клинико-эхографическом наблюдении без лечения у коров с гипофункциональными яичниками отмечали состояние анэструса, отсутствие желтого тела, признаки частичной депрессии
фолликулогенеза и ановуляцию. Из-за абортивной формы роста антральные фолликулы, хотя и достигали
крупных размеров (9…19 мм, в среднем 12,3±3,4 мм),
но до овуляторной стадии не развивались и подвергались атрезии. При многократных УЗИ было также
установлено, что нарушения фолликулогенеза при гипофункции яичников могут носить транзиторный или
персистентный (устойчивый) характер.
Овариальные кисты у коров диагностировали в среднем в 3,4 раза реже (Р < 0,01), чем гипофункцию яичников. В общей сложности они были выявлены у 30,
или 10,5 %, коров (табл. 2). У полновозрастных коров кисты яичников диагностировали в 1,2 раза чаще,
чем у коров-первотелок. Однако эта разница была недостоверной.

У большинства коров (19 гол, 63,3 %) развитие кист
яичников отмечали в первые 90 дней после отела. Средняя продолжительность периода от отела до постановки диагноза составила 89,80 ±10,90 дней (с колебаниями от 24 до 256 дней).
По данным УЗИ (по наличию/отсутствию эхопо-
зитивной пристеночной лютеиновой ткани) кисты яичников подразделяли на лютеиновые и фолликулярные.
От общего числа исследованных коров частота распространения фолликулярных кист яичников составила 7,7 %, лютеиновых — 2,8 %. При раздельном анализе установили также, что как у первотелок, так и
у полновозрастных коров фолликулярные кисты яичников встречаются чаще (в среднем в 2,8 раза), чем лютеиновые.

2. Частота распространения кист яичников 
у высокопродуктивных коров 
черно-пестрой породы

Лютеиновые кисты на эхограммах идентифицировали как одиночные односторонние жидкостные (анэхогенные) образования округлой или овальной формы, диаметром 27,5…42 мм, в среднем 33,38±1,77 мм.
При полипозиционном сканировании на внутренней
поверхности кистозного образования (на всем протяжении или только ее части) отчетливо можно было визуализировать ободок эхопозитивной лютеиновой ткани толщиной до 4…7 мм.
Фолликулярные кисты на эхограммах определялись как одиночные односторонние или двусторонние тонкостенные жидкостные образования округлой, овальной или неправильной формы, с однородным анэхогенным содержимым и зоной усиления
эхосигнала по задней поверхности. Среднее количество кистозных фолликулов на корову составляло
1,27±0,09. В отличие от лютеиновых кист, они не содержали пристеночной эхопозитивной лютеиновой
ткани и в среднем достигали 27,88±1,52 мм в диаметре (с колебаниями от 20,5 до 53,5 мм). Эхографически от пузырчатых фолликулов фолликулярные
кисты отличались только более крупными размерами.

Выводы

Таким образом, гипофункция яичников — основная форма овариальной дисфункции у высокопродуктивных коров в первые 40…60 дней после родов.
В среднем патология встречается у 35,4 % бесплодных
коров. У коров-первотелок данную форму дисфункции гонад регистрируют в 1,8 раза чаще (Р < 0,001),
чем у полновозрастных коров.

Возрастная 
группа

Число исследованных
животных, гол. 

Число животных, гол. (%), 
с диагностированной 
на 40…60й день после
родов гипофункцией
яичников

Первотелки
115
56* (48,7)

Полновозрастные
коровы
170
45* (26,5)

Всего
285
101 (35,4)

* — разница между возрастными группами статистически достоверна
(P < 0,001)

Возрастная 
группа

Число 
исследованных
животных, гол

Выявлено 
коров 
с кистами 
яичников, 
гол (%)

Число животных, 
гол (%), у которых по данным 
УЗИ определены кисты

фолликулярные лютеиновые

Первотелки
115
11 (9,6)
8 (6,9)
3 (2,6)

Полновозрастные 
коровы

170
19 (11,2)
14 (8,2)
5 (2,9)

Всего
285
30 (10,5)
22 (7,7)
8 (2,8)

Примечание: разница между сопоставляемыми группами не достоверна

Е.С. Седлецкая, Г.П. Дюльгер

10

Заболеваемость высокопродуктивных коров кистами яичников достигает 10,5 %. Фолликулярные
кисты яичников встречаются чаще, чем лютеиновые

(7,7 % против 2,8 %). Возраст животного не оказывает существенного влияния на частоту распространения кистозной болезни яичников.

1.
Дюльгер Г.П. Кистозная
патология яичников у коров 
и совершенствование методов ее диагностики и терапии. — М.: 
Изд-во РГАУ-МСХА им. К.А. Тимирязева, 2010.
2.
Farin P.W., Youngquist R.S., Parfet J.R., Garverick H.A. Diagnosis of luteal and follicular ovarian cysts in dairy cows by palpation

per rectum and linear array ultrasonography in dairy cows // J. Am.
Vet. Med. Assn, 1992; 200: 1085—1095.
3.
Ribadu A.Y., Dobson H., Ward W.R. Ultrasound and progesterone monitoring of ovarian follicular cysts in cows treated with GnRH
// Br. Vet. J., 1994; 150 (5): 489—497.

Summary
E.C. Sedletskaya, G.P. Dyulger. Occurrence and Ultrusonic Identification of Hypoactive Ovaries and
Cystic Ovarian Diseases in a Highproducing Dairy Cattle. Ultrasonography was used to study the occurrence of postpartum anestrous associated with hypoactive ovaries and the lactational incidence rate of cystic
ovarian diseases in a 285 highproducing dairy cows. The occurrence of postpartum anestrous associated
with hypoactive ovaries in primiparous cows was higher (48,7 % vs 26,5 %) than in multiparous cows. The prevalence of cystic ovarian diseases was 10,5 %. The occurrence of follicular cysts was higher (7,7 % vs 2,8 %), than
luteal ones.

Б и б л и о г р а ф и я

Ключевые слова: клещ, комплексный метод борьбы,
куры, нимфы
Сокращения: ДВ — действующее вещество, ИИ —
интенсивность инвазии, ЭИ — экстенсивность
инвазии

Введение

В настоящее время птицеводство в Российской
Федерации успешно развивается, обеспечивая население страны продуктами питания. Однако, частой проблемой, с которой сталкиваются как крупные производители, так и представители частного сектора, являются эктопаразитозы птиц.
Один из самых вредных паразитов домашних
птиц — персидский клещ Argas persicus [3]. Его тело
уплощенное, овальное, длиной от 3 до 10 мм (рис. 1).
Покровы кожистые, окраска у напившихся крови клещей лиловатая, у голодных — сероватая, желто-бурая
[2]. Самки мало отличаются от самцов. Нимфы похожи на взрослых паразитов, личинки со складчатым
покровом, имеют спинной щиток и присоски на лапках. Цикл развития: яйцо, личинка, 2…7 стадий нимф,
имаго. В умеренных широтах самки откладывают яйца 1 раз в год, осенью. В отличие от иксодовых, аргасовые клещи насасываются кровью в самые сжатые
сроки — от 3 до 30 мин, редко дольше. A. persicus спо
собны к длительному голоданию (некоторые виды
до 14 лет и более). Аргасовые клещи заселяют глинобитные постройки (жилища, сараи, загоны для скота), обитая в трещинах стен, под штукатуркой, в норах грызунов, в пыли и мусоре на полу. Имаго нападают на добычу ночью (в затененных местах) и днем. Все
фазы развития активны в теплое время года (при 10°С
и выше).
Методы борьбы с персидским клещем сводятся к
использованию инсектоакарицидных препаратов, подтвердивших свою эффективность в условиях промышленного птицеводства. Однако, как показывает
практика, при массовой заклещеванности птичников на личном подворье применение только химиопрепаратов недостаточно.

Цель исследования

Разработать оптимальные для частного подсобного
хозяйства методы борьбы с клещем A. persicus.

Материалы и методы

Эксперимент был проведен в 2009—2011 гг. в населенном пункте Татарское городище Шпаковского
района Ставропольского края. Начало опыта — первая декада апреля 2009 г. В эксперимент включили
30 взрослых кур, естественно зараженных клещами

Опыт борьбы с Argas persicus
[Oken, 1818] на частном подворье

С.В. Криворучко, Н.А. Кошкина, кандидат биологических наук 
ГНУ «Ставропольский НИИ животноводства и кормопроизводства» Российской академии сельскохозяйственных наук

ПАРАЗИТОЛОГИЯ

УДК 636.58:619.576.895.42