Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. Выпуск 13

РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ НАУК

ОБЩЕСТВО ГЕЛЬМИНТОЛОГОВ им. К.И.СКРЯБИНА

ВСЕРОССИЙСКИЙ ИНСТИТУТ ГЕЛЬМИНТОЛОГИИ

им. К.И.СКРЯБИНА

Материалы 

докладов научной конференции

ТЕОРИЯ И ПРАКТИКА БОРЬБЫ

С ПАРАЗИТАРНЫМИ БОЛЕЗНЯМИ

Выпуск 13

г. Москва 16 - 18 мая

Москва 2012

Редколлегия: член-корр. РАСХН А.В.Успенский,
д.в.н., проф. И.А.Архипов, д.в.н. К.Г. Курочкина,
д.б.н., проф. Т.С.Новик, к.б.н. Е.И.Ковешникова,  

к.в.н. Т.А.Ершова

Составитель и редактор д.в.н. Курочкина К.Г. 

ИТОГИ НАУЧНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ ПО МЕЖВЕДОМСТВЕННОЙ 

КООРДИНАЦИОННОЙ ПРОГРАММЕ ЗА 2011 ГОД

Успенский А.В.

ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина

В 2011 году научные исследования по Межведомственной координационной 

программе проводились по четырем разделам задания 08.03. и были направлены на 
разработку мероприятий по борьбе с паразитозами.

Изучено биоразнообразие паразитофауны во всех регионах России с учетом 

зональности, 
климатических 
условий, 
закономерностей 
функционирования 

паразитарных систем и формирования паразитоценозов. Выяснена эпизоотическая 
ситуация по основным гельминтозам, иксодовым клещам, кровепаразитарным 
болезням и арахноэнтомозам.

Выявлены особенности инвазионного процесса при паразитозах жвачных, в 

том числе северных оленей, лошадей, свиней, пушных зверей, плотоядных, птиц и 
рыб в Центральном, Северо-Восточном и Прикаспийском регионах, на Северном 
Кавказе, в Поволжье, Сибири, Якутии и на Дальнем Востоке. Проведены 
исследования гельминтофауны диких копытных и плотоядных в Воронежской,  
Калининградской,  Московской, Рязанской, Смоленской областях, Приморском и 
Краснодарском краях. Выяснена эпизоотическая ситуация при протозоозах 
крупного рогатого скота, овец и собак в Кировской и Смоленской областях, 
Краснодарском и Ставропольском краях и при арахноэнтомозах в Тюменской 
области.

Разработан 
Национальный 
стандарт, 
устанавливающий 
методы 

гельминтологического анализа возбудителей гельминтозов в органических 
удобрениях, производимых на основе отходов животноводства.

Изучена паразитофауна и эпизоотическая ситуация по паразитарным 

заболеваниям рыб в бассейнах рек Вилюй, Лена, Пра, Дон, Волга, а также в 
Волгоградском и Цимлянском водохранилищах.

В различных регионах России проводятся постоянные мониторинговые 

исследования паразитарных зоонозов в природных и синантропных очагах.

Согласно Международной программе по исследованию Северной части 

Тихого океана North
Pacific
Research
Board
(NPRB/USА) проведены 

серологические исследования в целях оценки эпидемиологической ситуации 
по трихинеллезу на Чукотке. В Воронежской области исследователями 
отмечены случаи эндемического трихинеллеза.

Изучено цитогенетическое действие различных видов трихинелл на митоз у 

хозяина на лабораторных моделях. Разработана методика идентификации генома 
Trichinella spiralis.

Впервые определены параметры выделения личинок трихинелл из 

различных 
категорий 
мясопродуктов 
с 
помощью 
аппарата 
АВТ-Л7 
с 

использованием нового состава искусственного желудочного сока (ИЖС) –
бетасола.

Проведена 
работа 
по 
созданию 
диагностической 
тест-системы, 

предназначенной для иммунологической диагностики трихинеллеза на ранней 
стадии развития инвазии.

Продолжались исследования по использованию различных технологий для 

получения диагностических антигенов и разработки на их основе тест-систем.

Во многих научных учреждениях исполнители НТП разрабатывали новые 

препараты и лекарственные формы для борьбы с паразитозами: вигисокс, БМК 
плюс  при  гельминтозах жвачных; празифен для лошадей; аверсект плюс для 
плотоядных; инсакар при арахноэнтомозах собак и кошек; абиктиновая мазь и 
раствор  акарина при  хориоптозе крупного рогатого скота; новый акарицид для 
защиты от иксодовых клещей; препарат для борьбы с эктопаразитами - бовикоцид 
и способы их применения.

Создана новая лекарственная форма в виде солевого брикета с 

включением антигельминтиков, предназначенная для сельскохозяйственных и 
диких животных. 

Уточнена эффективность инъекционных форм ивермека, абивертина, 

аверсекта-2 и новомека при энтомозах животных и монезина при 
микстинвазиях лосей.

Дана 
фармакотоксикологическая 
оценка 
препаратов 
дегельм-16 
и 

паразитоцида в виде эмульсии, а также выяснена длительность сохранения вурандуст в организме птиц.

Проведен скрининг 4 препаратов эффективных при гельминтозах овец и 

северных оленей и определена эффективность гельмицида гранулята при 
нематодирозе.

Часть исполнителей проводила испытания ранее известных антгельминтиков, 

инсектоакарицидов в конкретных условиях хозяйств с разной технологией 
содержания животных.

Итоги работы свидетельствуют о том, что исполнители справились с 

поставленными задачами. Часть исследований выполнена на уровне изобретений.

Results of the scientific investigations on interdepartmental coordinated 

programme for 2011. Uspensky A.V. All-Russian K.I. Skryabin Scientific 
Research Institute of Helminthology.

Summary. One analyzed the results of the scientific researches carried out in 

frames of interdepartmental coordinated programme with account of zonal and 
regional peculiarities of prevalence of parasitoses, investigator structure and the 
main most perspective scientific trends. 

ОПЫТ ОЗДОРОВЛЕНИЯ ХОЗЯЙСТВ ОТ СТРОНГИЛЯТОЗОВ 

ОВЕЦ И КОЗ В РЕСПУБЛИКЕ ДАГЕСТАН

Абдулмагомедов С.Ш.,  Магомедов О.А.,  Алиев А.Ю.,

Гюльахмедова Н.Х., Максудова А.С., Магомедшипиев Г.М.

Прикаспийский зональный НИВИ, г. Махачкала

Введение. Одним из условий увеличения поголовья овец и производства 

продукции животноводства является ликвидация гельминтозов, широко 
распространенных в республике Дагестан (РД).

Желудочно-кишечные
стронгилятозы
имеют 
широкое 

распространение и встречаются во всех хозяйствах республики. Этими 
нематодами инвазированы почти все домашние животные (овцы, козы, 
крупный рогатый скот, свиньи и т.д.) (4).

Экономический 
ущерб, 
причиняемый 
желудочно-кишечными 

стронгилятозами, 
складывается 
из 
снижения 
мясной 
и 
шерстной 

продуктивности, 
задержки 
роста 
и 
развития 
молодняка, 
снижения 

воспроизводительной функции и резистентности организма к другим 
заболеваниям. При энзоотии гибель молодняка овец достигает 60-80%, 
экономический ущерб при этом в республиках Прикаспийского региона 
исчисляется   миллионами рублей.

Как правило, желудочно-кишечные стронгилятозы у овец и коз 

протекают без выраженных клинических признаков, в результате чего 
ветеринарные специалисты не уделяют должного внимания профилактике и 
ликвидации данных гельминтозов (1,2).

Во многих фермерских хозяйствах и в частном секторе РД ежегодно с 

апреля по июнь, наблюдались массовые поносы у молодняка овец и коз 4-5-ти 
месячного возраста, кроме того, отмечен массовый падеж молодняка овец и 
коз в 2007-2009 гг. в СПК «Тинди» Цумадинского района.

Результаты. При полных гельминтологических вскрытиях у молодняка 

овец, коз и взрослого поголовья обнаруживали до 10-12 тыс. нематодир и 
других стронгилят в тонком и толстом отделах кишечника.

В отдельные годы количество погибшего молодняка овец и коз, к числу 

родившихся, составляло 20-25%. Чаще всего стронгилятозы регистрировали в 
дождливые годы, у овец и коз декабрьского и январского окота.

Бактериологическими исследованиями и биологическими пробами на 

подопытных лабораторных животных возбудители микробных заболеваний 
не были выделены.

Диагноз на стронгилятоз ставили по результатам гельминтологических 

исследований с учетом возраста животного и времени заболевания.

Нами обследовано более 500 голов молодняка овец и коз, у 7 голов 

провели гельминтологические исследования, 10 - патологоанатомические, 2 гистологические и 6 - бактериологические.

Методом полного гельминтологического вскрытия обследовано 10 

голов молодняка овец и коз. Было отмечено, что клинически стронгилятоз 
проявляется с конца апреля, у молодняка с 4-5-тимесячного возраста. Затем 
число заболевших животных увеличивается и достигает максимума в июне, в 
летний период (июль - август) количество клинически больных резко 
сокращается. С сентября количество заболевшего молодняка овец и коз 
начинает возрастать и достигает максимума в октябре, ноябре.

Больные козлята, ягнята угнетены, ниже средней упитанности, нередко 

истощены. Видимые слизистые оболочки анемичны. Пульс учащенный (110130 ударов в минуту), плохого наполнения и напряженный. Тоны сердца 
ослаблены, количество дыхательных движений в минуту - 25-35, дыхание 
поверхностное. Перистальтика кишечника усилена, понос часто профузный. 
Продолжительность болезни от 5 до 12 дней.

При вскрытии   обнаружено: полость сердца расширена, на   эпикарде 

точечные и пятнистые кровоизлияния, кровеносные сосуды кишечника 
переполнены, их слизистая оболочка воспалена и покрыта точечными 
кровоизлияниями.

У некоторых ягнят и козлят констатировали инвагинацию кишечника. 

Печень 
неравномерно 
окрашена, 
дряблой 
консистенции. 
При 

гельминтологическом вскрытии желудочно-кишечного тракта у каждого 
ягненка и козленка обнаруживали от 1000 до 13000 стронгилят разных видов 
(гемонхов, буностом, нематодир, хабертий, эзофагостом и др.)

Больных овец и коз помещали в лечебно-профилактический пункт 

(ЛПП) и давали им в день по 200 г концентрированных кормов, слегка 
подсушенную свежую траву и воду. Лечили животных в мае-июне и октябреноябре, когда инвазия нарастала (3).

С этой целью в равнинной зоне Дагестана, использовали гельмицид - 0,2 

г + феналидон 4 г, в смеси с концентрированными кормами, в соотношении 
1:100, в составе солевой смеси - в горной зоне, в соотношении 1:10, из расчета 
0,2 г гельмицида и 4 г феналидона - скармливали их групповым методом (по 
5-10 голов) во время нахождения в ЛПП, двукратно, с интервалом 48 часов. 
Лечебно-кормовые и солевые смеси давали утром, до кормления животных. 
Такую схему лечения применили у 126-ти голов ягнят и козлят, у которых 
начинался понос. При гельминтологических исследованиях обнаружили яйца 
стронгилят. Антгельминтную эффективность препарата учитывали по 
количеству выздоровевших ягнят и козлят (через 8-12 дней после лечения), по 
результатам гельминтокопрологического обследования животных до и после 
дачи 
гельмицида 
с 
феналидоном, 
а 
также 
по 
результатам 

гельминтологических вскрытий желудочно-кишечного тракта ягнят, козлят 
через 8-12 дней после применения препарата.

Побочных 
явлений 
после 
дачи 
гельмицида 
и 
феналидона 
с 

концентрированными   кормами   и   солевой   смесью   у   животных   не 
отмечали. Понос у них прекращался на 8-10-й день, общее состояние заметно 
улучшалось, ягнят и козлят переводили из ЛПП в общую отару.

Таким образом, гельмицид и феналидон в смеси с концентрированными    

кормами 
и 
солевой 
смесью, 
являются 
высокоэффективными 

антгельминтиками при стронгилятозах и цестодозах желудочно-кишечного 
тракта овец и коз.

Литература: 1.Магомедов О.А., Шамхалов В.М. Состояние проблемы и 

перспективы развития ветеринарной науки в России, РАСХН. 1999.- Т.2.-С. 
32-36. 2. Шамхалов В.М., Адзиева Х.М., Азаев Г.Х., Абдулмагомедов С.Ш. и 
др. //Вестник ветеринарии - 2010. - №53.- С. 50-53. 3. Мирзоев Т.А., 
Магомедов О.М., Шамхалов В.М., Цолоев А.Х., Дзугиев Б. //Материалы 
международной конференции, посвященной 35-ти летию Прикасп.ЗНИВИ. М. 
2003.-С. 103-106. 4. Шамхалов В.М., Адзиева Х.М., Абдулмагомедов С.Ш., 
Магомедов О.А., Шамхалов В.М.  //Российский паразитологический журнал. 
М.- 2009.- №3.- С. 25-30.

Experience of control of Strongylata infection of sheep and goats in the 

Republic of Dagestan. Abdulmagomedov S.Sh., Magamedov O.A., Aliev A.Yu., 
Gulachmedova N.H., Maksudova A.S., Magomedshipiev G.M. Prikaspiisk Zonal 
Scientific Veterinary Institute. 

Summary. One evaluated efficacy of the complex agent based on helmicide 

(0,2 g) and fenalidone (4 g) in salt mixture given to sheep and goats infected by 
gastrointestinal Strongylata in field conditions. The agent appeared to be highly 
effective (96-98%).

ЗАРАЖЕНИЕ МАЛОЙ БУРОЗУБКИ ЛИЧИНКАМИ

TRICHINELLA SPIRALIS ПОСРЕДСТВОМ ЛИЧИНОК МЯСНЫХ МУХ

Андреянов О.Н.

ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина

Введение. Природный очаг инвазии – это те биотопы или ландшафтные 

зоны, где экологические и, особенно, биоценотические связи обуславливают 
передачу возбудителя от его источника к восприимчивому животному без 
участия 
сельскохозяйственных 
животных 
и 
человека. 
Членистоногие, 

моллюски, рыбы и некоторые беспозвоночные могут локализовать в себе 
трихинеллезную инвазия в околоводной среде [2]. Цель нашей работы подтвердить передачу возбудителя трихинеллеза Trichinella
spiralis
в 

природном биоценозе посредством личинок мясных мух.

Материалы и методы. Выделенную взвесь личинок трихинелл T. spiralis

из 
мышечной 
ткани 
обыкновенной 
лисицы 
после 
переваривания 
в 

искусственном желудочном соке пассировали per os на белых беспородных 
крысах в дозе 5 личинок на 1 г массы животного через инсулиновый шприц и 

молочный катетер с оливой на конце [3]. Инвазированных лабораторных 
животных содержали и кормили в условиях вивария в течение 45 суток. Далее, 
лабораторных животных усыпляли эфиром, тушки закладывали на хранение в
сетчатом контейнере в природный биоценоз охотхозяйства. Через 21 день 
после закладки с мышечной ткани тушек проводили сбор личинок серой 
мясной мухи (Sarcophaga carnaifa). 

Отловленным двум малым бурозубкам (Sorex minutus) после 7 часовой 

голодной диеты скормили собранных личинок мясных мух в количестве 6 и 12 
экземпляров. Далее землероек содержали согласно общепринятым правилам 
по содержания лабораторных животных. Через 45 суток животных усыпили. 
Мышечную ткань на трихинеллез исследовали методом компрессорной 
трихинеллоскопии по Е.Reissmann
(1908) и методом искусственного 

ферментирования по П.А. Владимировой (1965).

Результаты исследования. Экспериментально заразили малых бурозубок 

возбудителем трихинеллеза T. spiralis
посредством транзитных хозяев 

(личинки серой мясной мухи). 

Методом переваривания в искусственном желудочном соке мышечной 

ткани тушек землероек массой 6 г и 5 г были выделены личинки T. spiralis в 
количестве 139 и 94 экземпляра. Интенсивность инвазии составила – 23,2 и 
18,8 личинок в 1 г мышц, соответственно.

W. Bockeler (1977), E. Kullman, S. Nawabi (1975) при экспериментальной 

работе с транзитными хозяевами, в лабораторных условиях смогли 
инвазировать трихинеллами обыкновенного ежа и лабораторных мышей при 
скармливании последним зараженных личинками T. spiralis жуков и их 
личинок. 

Заключение. Таким образом, можно заключить, что насекомоядные 

животные - бурозубки, куторы, ежи и другие, могут стать резервуарами 
трихинеллезной инвазии в природном биоценозе. Посредством установленных 
трофических связей эта группа млекопитающих может депонировать 
гельминтозную инвазию извне посредством беспозвоночных и их личинок, 
собранных с трупов инвазированных плотоядных.

Литература: 1. Владимирова П.А. Влияние различных факторов на 

ускорение процесса переваривания мышц в искусственном желудочном соке 
для выявления личинок трихинелл в свинине Дисс. на соискание ученой 
степени канд. вет. наук. М. 1965. 2. Одоевская И.М. //Медицинская 
паразитология и паразитарные болезни.- 2011.- № 1.- С. 12 – 16. 3. Скворцова 
Ф.К. // Труды ВИГИС.-2003.- Т. 42.- С. 600 – 608. 4. Bockeler W. // Zool. Ans. 
Sena. -1977. - № 1 - 2. - P. 24-76. 5. Kullman E., Nawabi S. Z. Parasitenk. // Zool. 
Anz., 1975.- V. 36. - P. 234- 240. 6. Reissmann E. //Fleisch-u Milchhyg.- 1908.V.19(l).- P.1-9.

Infection of Sorex minutus by Trichinella larvae mediated by blow-fly 

larvae (Sarcophaga carnaifa). Andreyanov O.N. All-Russian K.I. Skryabin 
Scientific Research Institute of Helminthology.

Summary. One showed at the example of S. minutus that insectivorous 

animals could be the reservoirs of Trichinella infection in natural biocenosis. As a 
result of the established trophic chains that group of mammals could accumulate 
helminth infection. 

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЕ ЗАРАЖЕНИЕ ТРАНЗИТНЫХ ХОЗЯЕВ 

ЛИЧИНКАМИ TRICHINELLA SPIRALIS

Андреянов О.Н.

ГНУ ВНИИ гельминтологии им. К.И. Скрябина

Введение. Возбудители трихинеллезов, занимая свою экологическую 

нишу в природе, характеризуются эволюционно закрепленным признаком –
полигостальностью. Весь биологический цикл гельминтозооноза происходит в 
одном теплокровном организме без выхода во внешнюю среду. На фоне 
пищевых связей реализуются механизмы передачи возбудителя как внутри 
популяций хозяев, так и вне популяций. Классические пути передачи 
(хищничество, каннибализм, некрофагия) выявлены многими авторами [1]. А 
такие пути инвазирования как лактогенный путь передачи, каудофагия, 
копрофагия, 
пищевой 
путь 
посредством 
нетрадиционных 
хозяев 

(механические переносчики) до сих пор находятся под сомнением. Поэтому 
целью настоящей работы явилось изучение перечня беспозвоночных –
возможных механических переносчиков возбудителя трихинеллеза Trichinellа 
spiralis.

Материалы 
и 
методы. 
Наработку 
инвазионного 
материала 

(инвазированная мышечная ткань лабораторных животных с личинками T. 
spiralis) от инвазированной трихинеллами лисицы, отстреленной в Рязанской 
области, 
проводили 
согласно 
методике 
Ф.К. 
Скворцовой 
(2003). 

Инвазированных лабораторных животных содержали, кормили и обращались 
в условиях вивария согласно общепринятыми ветеринарно-санитарными 
правилами.

Во время наступления теплого сезона года 2010 – 2011 гг. инвазионный 

материал от лабораторных животных закладывали на хранение в природный 
биоценоз в условиях охотохозяйства Рязанской области в пластиковые 
контейнеры с металлической сеткой, защищающей от крупных некрофагов, 
птиц и грызунов. Каждые 2 недели проводили
сбор беспозвоночных 

питающихся мышечной тканью и трупным соком тушек животных. Перечень 
видов беспозвоночных определяли по зоологическим определителям [3]. 
Привезенных в лабораторию беспозвоночных помещали под вытяжку в 

морилку с ватой смоченной медицинским эфиром. Через 5 – 10 минут, после 
обездвижевания, беспозвоночных помещали на препаровальный столик и с 
помощью глазных ножниц и пинцета извлекали пищеварительную трубку. 
После препарирования желудочно-кишечного тракта пищеварительную 
трубку целиком (пищевод, мальпигиевы сосуды, среднюю и заднюю кишку) 
помещали под компрессорий и микроскопировали при увеличении х9 – х40 
светового микроскопа.

Пищеварительную трубку, выделенную от насекомых пастеровской 

пипеткой, помещали на часовое стекло с физиологическим раствором и 
проводили подсчет обнаруженных личинок гельминта, жизнеспособность, 
срок 
локализации 
и 
инвазионность 
по 
методике 
определения 

жизнеспособности личинок трихинелл [5]. 

Результаты 
и 
обсуждение.
При 
экспериментальном 
заражении 

беспозвоночных личинками T. spiralis было зарегистрировано 72 насекомых с 
личинками гельминта (табл. 1). Из перечня беспозвоночных в опытном 
контейнере с трупами лабораторных животных (зараженных личинками 
трихинелл) были обнаружены: мертвоед большой (Necrodes littoralis), жук –
могильщик (Necrophorus
vespilloides), точечник блестящий (Philonthus

splendens), жук – хищник (Ocypus picipennis), жук – хищник серый (Creophilus
maxillosis), личинки серой (Sarcophaga carnaifa) и синей мясной (Calliphora
erytrocephala) мух. В контрольном контейнере с трупами лабораторных 
животных (незараженных личинками трихинелл) перечень беспозвоночных 
был аналогичен. В опытном контейнере все насекомые содержали в 
пищеварительной трубке личинок T. spiralis. В контрольном контейнере не 
было обнаружено ни одного насекомого с личинками. 

Таблица 1

Перечень насекомых носителей личинок T. spiralis при 

экспериментальном заражении

Вид беспозвоночного 
(латинское название 

вида)

Опытный контейнер
Контрольный контейнер

Исследовано 

насекомых

Обнаружено 

личинок 
T. spiralis

Исследовано 
насекомых

Обнаружено 

личинок 
T. spiralis

Mертвоед большой 
(Necrodes littoralis)
28
11,8 ± 0,42
6
0

Жук – могильщик 

(Necrophorus 
vespilloides)

21
6,33 ± 0,01
2
0

Точечник блестящий 
(Philonthus splendens)
4
2,0 ± 0,5
5
0

Жук – хищник 

(Ocypus picipennis)
2
1,5 ± 0,75
1
0

Жук – хищник серый 
(Creophilus maxillosis)
2
1,5 ± 0,75
3
0