ACTA BIOMEDICA SCIENTIFICA, 2020, том 5, № 2
международный научный журнал
Покупка
Основная коллекция
Наименование: ACTA BIOMEDICA SCIENTIFICA
Год издания: 2020
Кол-во страниц: 105
Дополнительно
Тематика:
ББК:
УДК:
ГРНТИ:
Скопировать запись
Фрагмент текстового слоя документа размещен для индексирующих роботов.
Для полноценной работы с документом, пожалуйста, перейдите в
ридер.
ISSN 2541-9420 (Print) ISSN 2587-9596 (Online) ActA BiomedicA ScientificA Том 5 N 2 2020 ИРКУТСК 18+
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Том 5, № 1 Главный редактор Колесников С.И., академик РАН (Россия, Иркутск – Москва) Зам. главного редактора Рычкова Л.В., член-корр. РАН (Россия, Иркутск) Сороковиков В.А., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск) Щуко А.Г., д.м.н., профессор, (Россия, Иркутск) Ответственный секретарь Карпова Т.Г. (Россия, Иркутск) Редакционная коллегия Балахонов С.В., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск) Григорьев Е.Г., член-корр. РАН (Россия, Иркутск) Колесникова Л.И., академик РАН (Россия, Иркутск) Мадаева И.М., д.м.н. (Россия, Иркутск) Малов И.В., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск) Муамар Аль-Джефут, доктор медицины, профессор (Иордания, Карак) Никитенко Л.Л., д.б.н. (Великобритания. Оксфорд) Нямдаваа П., академик Монгольской академии медицинских наук (Монголия, Улан-Батор) Савилов Е.Д., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск) Такакура К., доктор наук, профессор (Япония, Токио) Шпрах В.В., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск) Юрьева Т.Н., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск) Янагихара Р. доктор наук, профессор (США, Гавайи) Редакционный совет Агаджанян В.В., д.м.н., профессор (Россия, Ленинск-Кузнецкий); Айзман Р.И., д.б.н. (Россия, Новосибирск); Атшабар Б.Б., д.м.н., профессор (Казахстан, Алматы); Белов А.М., д.м.н., профессор (Россия, Москва); Белокриницкая Т.Е., д.м.н., профессор (Россия, Чита), Бохан Н.А., академик РАН (Россия, Томск); Данчинова Г.А., д.б.н. (Россия, Иркутск); Дзятковская Е.Н., д.б.н.. профессор (Россия, Москва); Дубровина В.И., д.б.н. (Россия, Иркутск); Дыгай А.М. академик РАН (Россия, Томск); Колосов В.П., академик РАН (Россия, Благовещенск); Константинов Ю.М., д.б.н., профессор (Россия, Иркутск); Кожевников В.В., д.м.н., профессор (Россия, Улан-Удэ); Кривошапкин А.Л., член-корр. РАН. (Россия, Москва); Мазуцава Т., доктор наук, профессор (Япония, Чиба); Макаров Л.М., д.м.н., профессор (Россия, Москва); Малышев В.В., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск); Манчук В.Т., член-корр. РАН (Россия, Красноярск); Огарков О.Б., д.м.н. (Россия, Иркутск); Осипова Е.В., д.б.н., профессор (Россия, Иркутск); Петрова А.Г., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск); Плеханов А.Н., д.м.н. (Россия, Улан-Удэ); Погодина А.В., д.м.н. (Россия, Иркутск); Протопопова Н.В., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск); Прохоренко В.М., д.м.н., профессор (Россия, Новосибирск); Савченков М.Ф., академик РАН (Россия, Иркутск); Саляев Р.К., член-корр. РАН (Россия, Иркутск); Сутурина Л.В., д.м.н., профессор (Россия, Иркутск); Сэргэлэн О., д.м.н. профессор (Монголия, Улан-Батор); Такакура К., доктор наук, профессор (Япония, Токио); Уварова Е.В., д.м.н., профессор (Россия, Москва); Хохлов А.Л., член–корр. РАН (Россия, Ярославль); Эпштейн О.И., член-корр. РАН (Россия, Москва); Янг Йонгхонг, иностранный член РАН (Китай, Пекин). Авторы опубликованных материалов несут ответственность за подбор и точность приведенных фактов, цитат, статистических данных и прочих сведений, а также за то, что в материалах не содержится данных, не подле жащих открытой публикации. Мнение автора может не совпадать с мнением редакции. Адрес издателя и редакции: 664003, г. Иркутск, ул. Тимирязева, 16. ФГБНУ НЦ ПЗСРЧ. Тел. (3952) 20-90-48. http://actabiomedica.ru E-mail: journalirk@gmail.com Журнал «Acta Biomedica Scientifica» зарегистрирован в Федеральной службе по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций. Свидетельство о регистрации СМИ – ПИ № ФС 77-69383 от 06 апреля 2017 г. До апреля 2017 года журнал имел название «Бюллетень Восточно-Сибирского научного центра Сибирского отделения Российской Академии медицинских наук». Основан в 1993 году. Соучредители – Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека» (ФГБНУ НЦ ПЗСРЧ) (664003, г. Иркутск, ул. Тимирязева, д. 16), Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Иркутский научный центр хирургии и травматологии» (ФГБНУ ИНЦХТ) (664003, г. Иркутск, ул. Борцов Революции, д.1), Федеральное государственное автономное учреждение «Межотраслевой научно-технический комплекс «Микрохирургия глаза» имени академика С.Н. Федорова» Министерства здравоохранения Российской Федерации (127486, г. Москва, Бескудниковский б-р, д. 59А). Журнал включен в Реферативный журнал и базу данных ВИНИТИ. Сведения о журнале публикуются в международной справочной системе по периодическим и продолжающимся изданиям «Ulrich’s Periodicals Directory». Журнал «Acta Biomedica Scientifica» входит в «Перечень ведущих рецензируемых научных журналов и изданий, выпускаемых в Российской Федерации, в которых должны быть опубликованы основные научные результаты диссертаций на соискание ученой степени кандидата и доктора наук». Двухлетний импакт-фактор РИНЦ 2018 г. – 0,384. Подписной индекс 24347. Цена издания свободная. ISSN 2541-9420 (Print) ISSN 2587-9596 (Online) Ключевое название: Acta Biomedica Scientifica © ФГБНУ «Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека», 2020 г. © Оригинал-макет РИО ИНЦХТ, 2020 г.
ISSN 2541-9420 (Print) ISSN 2587-9596 (Online) ActA BiomedicA ScientificA Vol. 5 N 2 2020 IRKUTSK 18+
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Vol. 5, N 1 Chief Editor Kolesnikov S.I., Academician of RAS (Russia, Irkutsk – Moscow) Deputy Chief Editor Rychkova L.V., Corresponding Member of RAS (Russia, Irkutsk) Sorokovikov V.A., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk) Shchuko A.G., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk) Executive secretary Karpova T.G. (Russia, Irkutsk) Editorial board Balakhonov S.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk) Grigoryev E.G., Corresponding Member of RAS (Russia, Irkutsk) Kolesnikova L.I., Academician of RAS (Russia, Irkutsk) Madaeva I.M., Dr. Sc. (Med.) (Russia, Irkutsk) Malov I.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk) Moamar Al-Jefout, MD, Professor (Jordan, Karak) Nikitenko L.L., Dr. Sc. (Biol.) (UK, Oxford) Nyamdavaa P., Academician of Mongolian Academy of Sciences (Mongolia, Ulaanbaatar) Savilov E.D., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk) Takakura K., MD, Professor (Japan, Tokyo) Shprakh V.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk) Iureva T.N., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk) Yanagihara R., MD, Professor (USA, Hawaii) Editorial Council Agadzhanyan V.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Leninsk-Kuznetskiy); Aizman R.I., Dr. Sc. (Biol.) (Russia, Novosibirsk); Atshabar B.B., Dr. Sc. (Med.), Professor (Kazakhstan, Almaty); Belov A.M., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Moscow); Belokrinitskaya T.E., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Chita); Bokhan N.A., Academician of RAS (Russia, Tomsk); Danchinova G.A., Dr. Sc. (Biol.) (Russia, Irkutsk); Dzyatkovsksaya E.N., Dr. Sc. (Biol.), Professor (Russia, Moscow); Dubrovina V.I., Dr. Sc. (Biol.) (Russia, Irkutsk); Dygai A.M., Academician of RAS (Russia, Tomsk); Kolosov V.P., Academician of RAS (Russia, Blagoveshchensk); Konstantinov Yu.M., Dr. Sc. (Biol.), Professor (Russia, Irkutsk); Kozhevnikov V.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Ulan-Ude); Krivoshapkin А.L., Corresponding Member of RAS (Russia, Moscow) Mazutsava T., MD, Professor (Japan, Chiba); Makarov L.M., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Moscow); Malyshev V.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk); Manchouk V.T., Corresponding Member of RAS (Russia, Krasnoyarsk); Ogarkov O.B., Dr. Sc. (Med.) (Russia, Irkutsk); Osipova E.V., Dr. Sc. (Biol.), Professor (Russia, Irkutsk); Petrova A.G., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk); Plekhanov A.N., Dr. Sc. (Med.) (Russia, Ulan-Ude); Pogodina A.V., Dr. Sc. (Med.) (Russia, Irkutsk); Protopopova N.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk); Prokhorenko V.M., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Novosibirsk); Savchenkov M.F., Academician of RAS (Russia, Irkutsk); Salyajev R.K., Corresponding Member of RAS (Russia, Irkutsk); Suturina L.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Irkutsk); Sergelen O., Dr. Sc. (Med.), Professor (Mongolia, Ulaanbaatar); Takakura K., MD, Professor (Japan, Tokyo); Uvarova E.V., Dr. Sc. (Med.), Professor (Russia, Moscow); Khokhlov A.L., Corresponding Member of RAS (Russia, Yaroslavl); Epshtein O.I., Corresponding Member of RAS (Russia, Moscow); Yang Yonghong, Foreign Member of the RAS, (China, Beijing). The authors of the published articles account for choice and accuracy of presented facts, quotations, historical data and other information; the authors are also responsible for not presenting data which are not meant for open publication. The opinion of the authors may not coincide with that of editorial board. Address of publisher and editorial board: SC FHHRP. 16 Timiryazev str., Irkutsk, Russia, 664003 Tel. (3952) 20-90-48. http://actabiomedica.ru E-mail: journalirk@gmail.com Acta Biomedica Scientifica is registered in Federal Service of Supervision in communication sphere, information technologies and mass media. Certificate of Mass Media Registration – ПИ № ФС 77-69383 d.d. 06 April 2017. Title before April 2017 – “Bulletin of Eastern-Siberian Scientific Center of Siberian Branch of the Russian Academy of Medical Sciences”. Acta Biomedica Scientifica has been founded in 1993. Co-founders – Scientific Center for Family Health and Human Reproduction Problems (16 Timiryazev str., Irkutsk, Russia, 664003), Irkutsk Scientific Center of Surgery and Traumatology (1 Bortsov Revolyutsii str., Irkutsk, Russia, 664003), Interbranch Scientific and Technical Complex «Eye Microsurgery» named after Academician S.N. Fyodorov (59A Beskudnikovskiy blvd, Moscow, 127486). Acta Biomedica Scientifica is included in Abstract Journal and Data base of All-Russian Institute of Scientific and Technical Information. Information about Acta Biomedica Scientifica is published in international question-answering system of periodicals and continued publications «Ulrich’s Periodicals Directory». Acta Biomedica Scientifica is included in «List of Russian reviewed scientific periodicals where main scientific results of dissertations for a degree of Candidate and Doctor of Science should be published» Two-year impact factor by Russian Science Citation Index in 2018 – 0,384. Subscription index 24347. Free price. ISSN (Print) 2541-9420 ISSN (Online) 2587-9596 Key title: Acta Biomedica Scientifica © Scientific Center for Family Health and Human Reproduction Problems, 2020 © Compart performed by Publishing Department of ISCST, 2020
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Том 5, № 2 Содержание 5 Содержание Биохимия Перекисное окисление липидов в дореактивном периоде холодовой травмы. Николаев В.М., Софронова С.И., Румянцев Е.К., Алексеева З.Н., Чирикова Н.К., Слепцова Н.А., Федорова С.А. морФоЛоГия, ФиЗиоЛоГия и ПаТоФиЗиоЛоГия Определение уровня меланина в коже детей методом мексаметрии. Шамрикова В.А., Сорокина Е.Д., Дубровская Э.В., Крахалева Ю.А., Курнявкина Е.А., Криницына Ю.М., Якубович А.И., Сергеева И.Г. Особенности экспрессии иммуногистохимического маркера HCV NS3 в аутопсийном материале головного мозга умерших в исходе хронической инфекции, вызываемой вирусом гепатита С. Майбогин А.М. Экспрессия поверхностных маркеров CD25+ и СD95+ на лимфоцитах периферической крови у пациентов с вибрационной болезнью. Курчевенко С.И., Бодиенкова Г.М. невроЛоГия и нейрохирурГия Взаимосвязь показателей церебральной гемодинамики и биоэлектрической активности мозга у пациентов с остеохондрозом шейного отдела позвоночника. Кинаш И.Н., Верхозина Т.К., Ипполитова Е.Г. Пункционные хирургические технологии в лечении фасетсиндрома при спондилоартрозах в поясничном отделе (обзор литературы). Потапов В.Э., Кошкарева З.В., Животенко А.П., Горбунов А.В., Сороковиков В.А. Эффективность лазерной вапоризации при лечении межпозвонковых грыж поясничного отдела позвоночника. Горбунов А.В., Кошкарева З.В., Животенко А.П., Потапов В.Э., Скляренко О.В., Дамдинов Б.Б., Глотов С.Д. оФТаЛьмоЛоГия Диагностические критерии макулярных отёков, ассоциированных с венозными окклюзиями. Щуко А.Г., Букина В.В., Борисова А.В., Юрьева Т.Н. ПСихоЛоГия и ПСихиаТрия Электросудорожная терапия как корректор некоторых побочных эффектов антипсихотической терапии. Быков Ю.В., Беккер Р.А. ЭкСПерименТаЛьные иССЛедования Влияние антиоксидантного препарата «Мексидол» на белковые компоненты цитоплазматической мембраны эритроцита у больных язвенным колитом. Пивоваров Ю.И., Дмитриева Л.А., Сергеева А.С., Янькова Т.С., Сай О.В. Использование дренажных конструкций в абдоминальной хирургии в послеоперационный период (экспериментальное исследование). Шурыгина И.А., Аюшинова Н.И., Шурыгин М.Г., Дремина Н.Н., Лозовская Е.А., Невежина А.В., Чепурных Е.Е. Contents BioChemistry Lipid Peroxidation in the Pre-Reactive Period of Cold Injury. Nikolaev V.M., Sofronova S.I., Rumyantsev E.K., Alekseeva Z.N., Chirikova N.K.,Sleptsova N.A., Fedorova S.A. Morphology, physiology and pathophysiology Mexametric Assessment of Melanin Level in Children’s Skin. Shamrikova V.A., Sorokina E.D., Dubrovskaya E.V., Krakhaleva Y.A., Kurniavkina E.A., Krinitsyna Y.M., Yakubovich A.I., Sergeeva I.G. Peculiarities of the Expression of Immunohistochemical Marker HCV NS3 in the Autopsy Brain of the Patients Died in the Outcome of Chronic Infection, Caused by Hepatitis C Virus. Maybogin A.M. Expression of CD25+ and CD95+ Surface Markers on Peripheral Blood Lymphocytes in Patients with Vibration Disease. Kurchevenko S.I., Bodienkova G.M. neurology and neurosurgery Relationship of Cerebral Hemodynamics and Cerebral Bioelectrical Activity in Patients with Cervical Osteochondrosis. Kinash I.N., Verkhozina T.K., Ippolitova E.G. Puncture Surgical Technologies in the Treatment of Facet Syndrome for Spondylarthrosis in the Lumbar Spine (Literature Review). Potapov V.E., Koshkareva Z.V., Zhivotenko A.P., Gorbunov A.V., Sorokovikov V.A. The Effectiveness of Laser Vaporization in the Treatment of Intervertebral Hernias of the Lumbar Spine. Gorbunov A.V., Koshkareva Z.V., Zhivzenko A.P., Potapov V.E., Sklyarenko O.V., Damdinov B.B., Glotov S.D. ophtalmology Diagnostic Criteria for Macular Edema Associated with Venous Occlusions. Shchuko A.G., Bukina V.V., Borisova А.V., Iureva Т.N. psychology and psychiatry Electroconvulsive Therapy as a Corrector for Certain Side Effects of Antipsychotic Therapy. Bykov Yu.V., Bekker R.A. experiMental researches Effect of Antioxidant Preparation «Mexidol» on the Protein Components of the Erythrocyte Cytoplasmic Membrane in Patients with Ulcerative Colitis. Pivovarov Yu.I., Dmitrieva L.A., Sergeeva A.S., Yan'kova T.S., Saj O.V. The Use of Drainage Structures in Abdominal Surgery in the Postoperative Period (Experimental Study). Shurygina I.A., Ayushinova N.I., Shurygin M.G., Dremina N.N., Lozovskaya E.A., Nevezhina A.V., Chepurnykh E.E. 7 12 17 24 28 36 43 49 55 83 90
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Vol. 5, N 2
6
Contents
ЭПидемиоЛоГия
Характеристика заболеваемости по обращаемости
за медицинской помощью населения промышленных
городов Иркутской области. Лисовцов A.A., Лещенко Я.А.
иСТория медицины и юБиЛеи
50 лет первому академическому институту медицинской
науки в Сибири
Е.Г. Григорьев (к 70-летию со дня рождения)
epidemiology
Description of the Incidence among Population of Industrial
Cities in the Irkutsk Region. Lisovtsov A.A., Leschenko Ya.A.
history of Medicine and anniversaries
50th Anniversary of the First Academic Medical Institute
of Siberia
E.G. Grigoriev (to the 70th Anniversary)
96
102
104
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Том 5, № 2 Биохимия 7 Биохимия BIOCHEMISTRY DOI: 10.29413/ABS.2020-5.2.1 Перекисное окисление липидов в дореактивном периоде холодовой травмы Николаев В.М. 1, Софронова С.И. 1, Румянцев Е.К. 1, Алексеева З.Н. 1, Чирикова Н.К. 2, Слепцова Н.А. 3, Федорова С.А. 2 1 ФГБНУ «Якутский научный центр комплексных медицинских проблем» (677010, г. Якутск, Сергеляхское ш., 4 км); 2 ФГАОУ ВПО Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова (677000, г. Якутск, ул. Белинского, 58); 3 ФГБОУ ВПО Якутская государственная сельскохозяйственная академия (677007, г. Якутск, Сергеляхское ш., 3 км, 3) Автор, ответственный за переписку: Николаев Вячеслав Михайлович, e-mail: Nikolaev1126@mail.ru Резюме В связи с тем, что пациенты очень редко поступают в больницу в дореактивном периоде холодовой травмы, патологические процессы в нём мало изучены. Целью настоящего исследования является оценка морфологических и биохимических показателей крови в организме пациентов в дореактивном периоде холодовой травмы. Материалы и методы. Нами были обследованы 12 человек с холодовой травмой, поступивших в ожоговое отделение Республиканской больницы № 2 в дореактивном периоде. Интенсивность свободнорадикального окисления липидов определяли спектрофотометрическими методами по накоплению диеновых конъюгатов и малонового диальдегида. Показатели антиоксидантной защиты организма определяли по активности супероксиддисмутазы, каталазы, глутатионпероксидазы, глутатионредуктазы с помощью спектрофотометра SPECORD 40 (Analytik Jena, Германия). Клинико-биохимические показатели в сыворотке крови определяли на биохимическом автоматическом анализаторе Cobas Mira Plus (Roche, Швейцария). Был сделан общий анализ крови. Статистическую обработку полученных данных проводили с помощью пакета прикладных статистических программ IBM SPSS Statistics 19 (IBM, США). Результаты и обсуждение. Особенностью биохимического профиля крови в дореактивном периоде при холодовой травме является интенсивная секреция катехоламинов, о чём свидетельствуют повышение концентрации глюкозы и триацилглицеридов в крови, увеличение активности трансаминаз как следствие воспалительно-деструктивных процессов и снижение концентрации холестерина в крови больных. При этом дореактивный период холодовой травмы характеризуется повышением моноцитов по сравнению с контролем, что в сочетании с гипоксией приводит к интенсификации процессов перекисного окисления липидов. При этом антиоксидантная защита в дореактивном периоде в организме больных повышалась незначительно. Заключение. Согласно результатам наших исследований, уже на стадии дореактивного периода холодовой травмы наблюдается статистически значимая интенсификация свободнорадикального окисления липидов. Ключевые слова: дореактивный период, свободнорадикальное окисление липидов, холодовая травма Для цитирования: Николаев В.М., Софронова С.И., Румянцев Е.К., Алексеева З.Н., Чирикова Н.К., Слепцова Н.А., Федорова С.А. Перекисное окисление липидов в дореактивном периоде холодовой травмы. Acta biomedica scientifica. 2019; 5(2): 7-11. doi: 10.29413/ABS.2020-5.2.1. Lipid Peroxidation in the Pre-Reactive Period of Cold Injury Nikolaev V.M. 1, Sofronova S.I. 1, Rumyantsev E.K. 1, Alekseeva Z.N. 1, Chirikova N.K. 2, Sleptsova N.A. 3, Fedorova S.A.2 1 Yakut Science Centre of Complex Medical Problems (Sergelyakhskoe Hwy 4 km, Yakutsk 677010, Russian Federation); 2 North-Eastern Federal University named after M.K. Ammosov (Belinsky str. 58, Yakutsk 677000, Russian Federation); 3 Yakutsk State Agricultural Academy (Sergelyakhskoe Hwy 3 km 3, Yakutsk 677007, Russian Federation) Corresponding author: Vyacheslav M. Nikolaev, e-mail: Nikolaev1126@mail.ru Abstract Pathological processes in the pre-reactive period of cold injury have not been studied. The purpose of this study is to assess the morphological and biochemical parameters of blood in the body of patients in the pre-reactive period of cold injury. Material and methods. We examined patients with cold injury in the pre-reactive period. Determined: diene conjugates, malonic dialdehyde, the total content of low molecular weight antioxidants, superoxide dismutase activity, catalase,
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Vol. 5, N 2 8 Biochemistry glutathione peroxidase, glutathione reductase, using a SPECORD 40 spectrophotometer. The serum biochemical parameters in the serum were determined by biochemical automator analysis. Statistical processing of the data was performed using IBM SPSS Statistics 19. Results and discussion. Features of the biochemical profile of blood in the pre-reactive period of cold injury in the human body are an increase in concentration of glucose and triacylglycerides in blood, an increase in transaminase activity, as aresult of inflammatory and destructive processes, a decrease in the cholesterol concentration in the blood of patients. At the same time, the pre-reactive period of cold injury is characterized by an increase in monocytes compared with the control, which, in combination with hypoxia, leads to an intensification of lipid peroxidation processes. In addition, the antioxidant protection in the pre-reactive period in the body of patients increased slightly. Conclusion. According to the results of our research, already at the stage of the pre-reactive period of cold injury there is a significant intensification of free radical lipid oxidation processes. Key words: pre-reactive period, free radical lipid oxidation, cold injury For citation: Nikolaev V.M., Sofronova S.I., Rumyantsev E.K., Alekseeva Z.N., Chirikova N.K., Sleptsova N.A., Fedorova S.A. Lipid Peroxidation in the Pre-Reactive Period of Cold Injury. Acta biomedica scientifica. 2019; 5(2): 7-11. doi: 10.29413/ABS.2020-5.2.1. ВВЕдЕНИЕ В России из общего числа больных с холодовой травмой на северные регионы приходится 85 % всех случаев отморожений и общего охлаждения, в том числе 50 % – на Республику Саха (Якутия). В 2017 г. с отморожениями и общими охлаждениями в республике поступили на стационарное лечение 1187 больных, из них инвалидами стали 492 человека, 142 человека умерли. Распределение пострадавших от холодовой травмы по социальному статусу показало, что чаще страдают люди трудоспособного возраста (70 %), из которых 37 % работающих и 33 % неработающих, реже – лица без определённого места жительства, пенсионеры, студенты, школьники (7 %). Несмотря на определённые успехи, достигнутые в лечении холодовой травмы, некоторые вопросы патогенеза остаются малоизученными. При использовании традиционных методов лечения последствий холодовой травмы глубокими инвалидами становятся 40–60 % пострадавших [1, 2]. Этот чрезвычайно высокий уровень инвалидизации является ярким подтверждением нерешённости проблемы. Известно, что клиническое течение локальной холодовой травмы условно разделяется на два периода – дореактивный и реактивный [3]. Длительность дореактивного периода очень мала – несколько часов. Часто больные с холодовой травмой попадают в стационар не сразу, поэтому дореактивный период встречается в клинике очень редко. Характерной особенностью дореактивного периода является нарушение микроциркуляции, приводящее к ишемии тканей, изменению реологических свойств крови, а также понижение температуры тела. Все перечисленные нарушения приводят к развитию гипоксии, которая потенцирует генерацию активных форм кислорода (инициаторов перекисного окисления липидов) [4, 5, 6, 7]. Инициация липопероксидации является повреждающим агентом для мембран клеток и внутриклеточных органелл [8]. По нашему мнению, своевременное использование патогенетически обоснованных методов превентивного лечения в дореактивном периоде представляет реальную возможность предотвращения развития некробиотических изменений и повреждений, вызванных свободнорадикальным окислением липидов в поражённых холодом тканях. В связи с тем, что пациенты очень редко поступают в больницу в дореактивном периоде холодовой травмы, патологические процессы в нём мало изучены. Целью настоящего исследования является оценка морфологических и биохимических показателей крови в организме пациентов в дореактивном периоде холодовой травмы. МАтЕРИАлы И МЕтоды ИССлЕдоВАНИя Нами было обследовано 12 человек с холодовой травмой, поступивших в ожоговое отделение Республиканской больницы № 2 в дореактивном периоде (группа сравнения). В контрольную группу вошли 20 практически здоровых человек. Данное исследование одобрено локальным комитетом по биомедицинской этике при ФГБНУ «Якутский научный центр комплексных медицинских проблем» (протокол № 8 от 10 октября 2007 г.). У пациентов и здоровых испытуемых было получено информированное согласие на взятие биологических проб (венозная кровь) и проведение данного исследования. Интенсивность свободнорадикального окисления липидов определяли спектрофотометрическими методами по накоплению диеновых конъюгатов (ДК) [9] и малонового диальдегида (МДА) [10]. Показатели антиоксидантной защиты организма определяли по активности супероксиддисмутазы (СОД) (КФ 1.15.1.11) [11], каталазы (КАТ) (КФ 1.11.1.6) [12], глутатионпероксидазы (ГП) (КФ 1.11.1.9) [13] и глутатионредуктазы (ГР) (КФ 1.6.4.2) [13] с помощью спектрофотометра SPECORD 40 (Analytik Jena, Германия). Диеновые конъюгаты определяли после экстракции сыворотки крови в смеси гептан – изопропанол (2:1) и последующего добавления раствора HCI (pH = 2,0) в гептановой фазе при λ = 233 нм. При расчёте использовали коэффициент молярной экстинкции диеновых конъюгатов 2,2 × 105 М–1см–1, количество диеновых конъюгатов выражали в нМоль/л. Уровень малонового диальдегида в сыворотке крови определяли по окрашенному триметиновому комплексу, который образовывался в результате взаимодействия малонового диальдегида сыворотки крови с тиобарбитуровой кислотой при высокой температуре. Оптическую плотность окрашенного комплекса измеряли при λ = 532 нм. При расчёте использовали коэффициент молярной экстинкции малонового диальдегида – 1,56 × 105 М–1см–1. Концентрация малонового диальдегида выражалась в нМоль/л. Активность каталазы в сыворотке крови определяли при длине волны λ = 410 нм с помощью метода, основанного на способности пероксида водорода образовывать с молибдатом аммония стойкий окрашенный комплекс. При расчёте использовали миллимолярный коэффициент экстинции перекиси водорода, который был равен
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Том 5, № 2 Биохимия 9 22,2 × 103 мМ–1см–1. За единицу активности каталазы принимали то количество фермента, которое участвует в превращении 1 мкат перекиси водорода за 1 с при заданных условиях. Активность КАТ выражали в мкКат/л Активность СОД, ГП и ГР определяли в гемолизате, приготовленном из отмытых эритроцитов в соотношении 1:9. Метод определения активности СОД основан на способности СОД блокировать образование бисформазина, продукта восстановления тетранитротетразолиевого синего. Восстановление тетранитротетразолиевого синего происходит в результате образования супероксиданиона радикала в реакции рибофлавина с метионином в присутствии ультрафиолетового излучения. Молярный коэффициент экстинкции бисформазина при l = 560 нм был равен 3,98 × 10 3 М–1см–1. Активность СОД выражали в мкМоль/мин × Hb (г/л). Метод определения активности ГП основан на способности фермента катализировать реакцию расщепления гидроперекиси третбутила, используя в качестве субстрата восстановленный глутатион. С помощью 5,5’-дитиобис-(2-нитробензойной кислоты) (ДТНБ) определяли концентрацию оставшегося после реакции глутатиона. Об активности ГП судили по уровню израсходованного в результате реакции восстановленного глутатиона при длине волны l = 412 нм. Активность фермента выражали в мкМоль/мин × Hb (г/л). Измерение активности ГР проводили спектрофотометрически при длине волны l = 340 нм. О скорости реакции судили по падению оптической плотности в результате окисления НАДФН в ходе ферментативной реакции (восстановления дисульфидной связи окисленного глутатиона (GSSG) до его сульфгидрильной формы (GSH)). Активность фермента выражали в мкМоль НАДФН/мин*Hb (г/л). Клинико-биохимические показатели: активность аланин-аминотрансферазы (АЛТ), аспартат-аминотрансферазы (АСТ), щелочной фосфатазы (ЩФ), гамма-глутамилтранспептидазы (ГГТ), уровни общего белка, холестерина, глюкозы, триацилглицеридов (ТАГ), – в сыворотке крови определяли на биохимическом автоматическом анализаторе Cobas Mira Plus (Roche, Швейцария). Был сделан общий анализ крови. Статистическую обработку полученных данных проводили с помощью пакета прикладных статистических программ IBM SPSS Statistics 19 (IBM, США). Статистическую значимость различий между средними оценивали с помощью U-критерия Манна – Уитни. Данные в таблицах представлены в виде M ± m, где M – средняя, m – ошибка средней. Вероятность справедливости нулевой гипотезы принимали при p < 0,05. РЕЗультАты И обСуждЕНИЕ Согласно полученным данным, у больных с отморожениями конечностей в дореактивном периоде нами было отмечено повышение перекисного окисления липидов. У больных с холодовой травмой концентрация МДА составляла 2,67 ± 0,13 нМоль/л (р < 0,05), в контрольной группе значение этого показателя составляло 1,98 ± 0,05 нМоль/л. Концентрация ДК у больных была равна 1,52 ± 0,06 нМоль/л (р < 0,05), в контрольной группе – 1,25 ± 0,05 нМоль/л. У больных с холодовой травмой было отмечено изменение активности ферментов антиоксидантной защиты. Активность КАТ была выше в 1,2 раза по сравнению с контрольной группой и составляла 0,74 ± 0,03 мкКат/л (активность КАТ в контрольной группе – 0,60 ± 0,01 мкКат/л). Активность ГП повышалась в 1,5 раза (0,06 ± 0,01 мкМоль/мин × Hb (г/л)) по сравнению с контрольной группой (0,04 ± 0,01 мкМоль/ мин × Hb (г/л)), а активность ГР была статистически значимо ниже в 2,9 раза (0,29 ± 0,01 мкМоль НАДФН/ мин × Hb (г/л)) по сравнению с контрольным значением (0,86 ± 0,03 мкМоль НАДФН/мин × Hb (г/л)). Среднее значение активности СОД фактически не отличалось от контроля. Активность СОД у больных с холодовой травмой составляла 0,03 ± 0,01 мкМоль/ мин × Hb (г/л), активность этого фермента в контрольной группе составляла 0,03 ± 0,01 мкМоль/мин × Hb (г/л). Приведённые нами данные свидетельствуют о том, что в дореактивном периоде скорость свободнорадикального окисления липидов увеличивается, что выражается в статистически значимом повышении концентрации МДА и уменьшении уровня ДК в крови больных. Интенсификация ПОЛ у больных в дореактивном периоде сочетается с тенденцией к уменьшению активности СОД и недостоверным повышением активности КАТ и ГП. Отражением воспалительных процессов у больных в дореактивном периоде является увеличение активности ферментов, участвующих в обмене аминокислот. Активность АЛТ в крови больных была выше в 2,3 раза, АСТ – в 2,6 раза, ГГТ – в 1,7 раза по сравнению со здоровыми лицами (табл. 1). Таблица 1 Клинико-биохимические показатели у больных в дореактивном периоде Table 1 Clinical and biochemical parameters in patients in the pre-reactive period Клинико-биохимические показатели Контрольная группа Группа сравнения АЛТ (МЕ) 21,11 ± 0,50 50,33 ± 1,50* АСТ (МЕ) 27,90 ± 0,39 72,50 ± 4,12* ЩФ (Е/л) 116,20 ± 5,45 120,33 ± 7,54 gГТ (Е/л) 24,12 ± 1,35 42,00 ± 2,1* Холестерин (мМоль/л) 5,85 ± 0,30 4,22 ± 0,21 Общий белок (г/л) 73,57 ± 2,17 62,90 ± 3,15 Глюкоза (мМоль/л) 4,23 ± 0,21 5,63 ± 0,28 ТАГ (мМоль/л) 0,81 ± 0,03 1,23 ± 0,06* Примечание. * – различия с контрольной группой статистически значимы при р < 0,05. Увеличение концентрации глюкозы на 30 % и повышение уровня ТАГ на 50 % в крови больных, вероятно, обусловлено напряжением симпатоадреналовой системы (секрецией катехоламинов). Понижение холестерина в крови больных на 28 %, вероятно, можно объяснить увеличением скорости его утилизации, в частности биосинтезом антистрессовых стероидных гормонов. Морфологический состав крови у больных с холодовой травмой показал, что в дореактивном периоде наблюдалось статистически значимое уменьшение содержания лимфоцитов в 2,1 раза, повышение лейкоцитов в 2 раза, моноцитов в 1,3 раза по сравнению с контролем. Результаты морфологического состава крови больных с холодовой травмой в дореактивном периоде приведены в таблице 2.
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Vol. 5, N 2 10 Biochemistry Таблица 2 Морфологический состав крови у больных с холодовой травмой в дореактивном периоде Table 2 Morphological composition of blood in patients with cold injury in the pre-reactive period Морфологические показатели Контрольная группа Группа сравнения Эритроциты, 1012/л 4,20 ± 0,07 4,70 ± 0,23 Гемоглобин, г/л 141,40 ± 1,25 145,33 ± 5,25 Лейкоциты, 109/л 5,40 ± 0,12 11,33 ± 0,46* Эозинофилы, % 3,20 ± 0,08 – Нейтрофилы: п/я % 2,90 ± 0,11 8,00 ± 0,36* Нейтрофилы: с/я % 55,50 ± 0,60 64,00 ± 3,14* Лимфоциты, % 35,60 ± 0,58 16,66 ± 0,74* Моноциты, % 2,90 ± 0,12 4,00 ± 0,13* СОЭ, мм/ч 19,40 ± 0,31 15,00 ± 0,58* Примечание. * – различия с контрольной группой статистически значимы при р < 0,05. Вполне возможно, что интенсификация в организме больных свободнорадикального окисления связана с увеличением числа активных фагоцитирующих макрофагов, выделяющих большое число супероксид анионрадикала с помощью фермента НАДФH-оксидазы. Таким образом, особенностью биохимического профиля крови в дореактивном периоде при холодовой травме в организме человека является интенсивная секреция катехоламинов (напряжение симпатоадреналовой системы), о чём свидетельствуют повышение концентрации глюкозы и ТАГ в крови, увеличение активности трансаминаз (p < 0,05) как следствие воспалительно-деструктивных процессов, снижение концентрации холестерина в крови больных (вероятно, можно объяснить увеличением скорости его утилизации, в частности биосинтезом антистрессовых стероидных гормонов). При этом дореактивный период холодовой травмы характеризуется повышением моноцитов по сравнению с контролем, что в сочетании с гипоксией приводит к интенсификации процессов перекисного окисления липидов. При этом антиоксидантная защита в дореактивном периоде в организме больных повышалась незначительно. ЗАКлюЧЕНИЕ Согласно результатам наших исследований, уже на стадии дореактивного периода холодовой травмы наблюдается статистически значимая интенсификация процессов свободнорадикального окисления липидов. По нашему мнению, исследования метаболических изменений в организме при холодовой травме в дореактивном периоде позволят найти подходы к более тонкому их регулированию и могут быть использованы в разработке методов превентивного лечения, что позволит уменьшить развитие некробиотических повреждений в пораженных холодом тканях. Финансирование Исследование выполнено при финансовой поддержке РФФИ в рамках научного проекта № 19-09-00361. Результаты были получены в рамках выполнения государственного задания Минобрнауки России (FSRG-2020-0019). лИтЕРАтуРА 1. Романова А.Н., Алексеев Р.З., Николаев В.М., Софронова С.И. Проблемы диагностики и лечения холодовой травмы в Арктической зоне Республики Саха (Якутия). В кн.: Самсонова И.В., Неустроева А.И., Маляшева М.М. (ред.). Арктический вектор: стратегия развития: Материалы II А82 научно-практической конференции «Арктический вектор». Якутск: Академия наук Республики Саха (Якутия); 2019: 56-58. 2. Алексеев Р.З., Томский М.И., Гольдерова А.С., Потапов А.Ф., Алексеев Ю.Р., Семенова С.В. Предупреждение развития некроза при отморожениях с оледенением тканей. Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2015; (8-1): 35-41. 3. Шаповалов К.Г. Отморожения в практике врача анестезиолога-реаниматолога. Вестник анестезиологии и реаниматологии. 2019; 16(1): 63-68. doi: 10.21292/2078-56582019-16-1-63-68 4. Colburn TD, Ferguson SK, Holdsworth CT, Craig JC, Musch TI, Poole DC. Effect of sodium nitrite on local control of contracting skeletal muscle microvascular oxygen pressure in healthy rats. J Appl Physiol (1985). 2017; 122(1): 153-160. doi: 10.1152/japplphysiol.00367.2016 5. Шакиров Б.М., Тагаев К.Р. Наш опыт лечения местной холодовой травмы конечностей. Вестник экстренной медицины. 2017; X(1): 29-32. 6. Bhattacharya S. Reactive oxygen species and cellular defense system. In: Rani V, Yadav U. (eds.). Free Radicals in Human Health and Disease. New Delhi: Springer India; 2015. 17-29. doi: 10.1007/978-81-322-2035-0_2 7. Mayer D, Armstrong D, Schultz G, Percival S, Malone M, Romanelli M, et al. Cell salvage in acute and chronic wounds: a potential treatment strategy. Experimental data and early clinical results. J Wound Care. 2018; 27(9): 594-605. doi: 10.12968/ jowc.2018.27.9.594 8. Юртаева Е.Ю., Доровских В.А., Симонова Н.В., Анохина Р.А., Штарберг М.А. Эффективность природных антиоксидантов при адаптации организма к холоду. Бюллетень физиологии и патологии дыхания. 2017; (63): 70-74. doi: 10.12737/ article_58e453527d0fc8.57228180 9. Situnayake RD, Crump BJ, Zezulka AV, Davis M, McConkey B, Thurnham DI. Measurement of conjugated diene lipids by derivative spectroscopy in heptane extracts of plasma. Ann Clin Biochem. 1990; 27(3): 258-266. doi: 10.1177/000456329002700313 10. Nahar Z, Sarwar MS, Safiqul Islam M, Rahman A, Nazrul Islam S, Islam MS, et al. Determination of serum antioxidant vitamins, glutathione and MDA levels in panic disorder patients. Drug Res (Stuttg). 2013; 63(8): 424-428. doi: 10.1055/s-0033-1343494 11. Вартанян Л.С., Гуревич С.М. Исследование определения супероксиддисмутазной активности в тканях животных с тетранитротетразолиевым синим. Вопросы медицинской химии. 1982; 28(5): 23-26. 12. Королюк М.А., Иванова Л.И., Майорова И.Г., Токарев В.Е. Метод определения активности каталазы. Лабораторное дело. 1988; (1): 16-19. 13. Данилова Л.А. Справочник по лабораторным методам исследования. Санкт-Петербург: Питер; 2003. REFERENCES 1. Romanova AN, Alekseev RZ, Nikolaev VM, Sofronova SI. Problems of diagnostics and treatment of cold injury in the Arctic zone of the Republic of Sakha (Yakutia). In: Samsonova IV, Neustroeva AI, Malyasheva MM. (eds.). Arkticheskiy vektor: strategiya razvitiya: Materialy II A82 nauchno-prakticheskoy konferentsii «Arkticheskiy vektor». Yakutsk: Akademiya nauk Respubliki Sakha (Yakutiya); 2019: 56-58. (In Russ.) 2. Alekseev RZ, Tomskiy MI, Golderova AS, Potapov AF, Alekseev YuR, Semenova SV. Prevention of necrosis in frostbites with tissue icing. Mezhdunarodnyy zhurnal prikladnykh i fundamental’nykh issledovaniy. 2015; (8-1): 35-41. (In Russ.)
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Том 5, № 2 Биохимия 11 3. Shapovalov KG. Frostbites in the intensivist’s practice. Vestnik anesteziologii i reanimatologii. 2019; 16(1): 63-68. doi: 10.21292/2078-5658-2019-16-1-63-68. (In Russ.) 4. Colburn TD, Ferguson SK, Holdsworth CT, Craig JC, Musch TI, Poole DC. Effect of sodium nitrite on local control of contracting skeletal muscle microvascular oxygen pressure in healthy rats. J Appl Physiol (1985). 2017; 122(1): 153-160. doi: 10.1152/japplphysiol.00367.2016 5. Shakirov BM, Tagaev KR. Our experience of the treatment of local cold injury of the extremity. Vestnik ekstrennoy meditsiny. 2017; X(1): 29-32. (In Russ.) 6. Bhattacharya S. Reactive oxygen species and cellular defense system. In: Rani V, Yadav U. (eds.). Free Radicals in Human Health and Disease. New Delhi: Springer India; 2015. 17-29. doi: 10.1007/978-81-322-2035-0_2 7. Mayer D, Armstrong D, Schultz G, Percival S, Malone M, Romanelli M, et al. Cell salvage in acute and chronic wounds: a potential treatment strategy. Experimental data and early clinical results. J Wound Care. 2018; 27(9): 594-605. doi: 10.12968/ jowc.2018.27.9.594 8. Yurtaeva EYu, Dorovskikh VA, Simonova NV, Anokina RA, Shtarberg MA. The effectiveness of natural antioxidants in the adaptation of an organism to cold. Byulleten’ fiziologii i patologii dykhaniya. 2017; (63): 70-74. doi: 10.12737/article_58e453527d0fc8.57228180. (In Russ.) 9. Situnayake RD, Crump BJ, Zezulka AV, Davis M, McConkey B, Thurnham DI. Measurement of conjugated diene lipids by derivative spectroscopy in heptane extracts of plasma. Ann Clin Biochem. 1990; 27(3): 258-266. doi: 10.1177/000456329002700313 10. Nahar Z, Sarwar MS, Safiqul Islam M, Rahman A, Nazrul Islam S, Islam MS, et al. Determination of serum antioxidant vitamins, glutathione and MDA levels in panic disorder patients. Drug Res (Stuttg). 2013; 63(8): 424-428. doi: 10.1055/s-00331343494 11. Vartanyan LS, Gurevich SM. Study of the detection of superoxide dismutase activity in animal tissues using tetranitrotetrazolium blue. Voprosy meditsinskoy khimii. 1982; 28(5): 23-26. (In Russ.) 12. Korolyuk MA, Ivanova LI, Mayorova IG, Tokarev VE. Method of detection of catalase activity. Laboratornoe delo. 1988; (1): 1619. (In Russ.) 13. Danilova LA. Guide on the laboratory tests. Saint Petersburg: Piter; 2003. (In Russ.) Сведения об авторах Николаев Вячеслав Михайлович – кандидат медицинских наук, главный научный сотрудник, руководитель отдела изучения механизмов адаптации, ФГБНУ «Якутский научный центр комплексных медицинских проблем», e-mail: Nikolaev1126@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-4490-8910 Софронова Саргылана Ивановна – кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник, руководитель научно-организационного отдела, ФГБНУ «Якутский научный центр комплексных медицинских проблем», e-mail: sara2208@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-0010-9850 Румянцев Константин Максимович – младший научный сотрудник отдела изучения механизмов адаптации, ФГБНУ «Якутский научный центр комплексных медицинских проблем», e-mail: tzeentch1993@mail.ru Алексеева Зинаида Николаевна – младший научный сотрудник отдела хронических неинфекционных заболеваний, ФГБНУ «Якутский научный центр комплексных медицинских проблем», e-mail: gzinaida@mail.ru Чирикова Надежда Константиновна – кандидат фармацевтических наук, заместитель директора института естественных наук, ФГАОУ ВПО Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова, e-mail: hofnung@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-1130-3253 Слепцова Наталья Алексеевна – кандидат сельскохозяйственных наук, доцент кафедры агрономии и химии, ФГБОУ ВПО Якутская государственная сельскохозяйственная академия, e-mail: ysaa.ykt@gmail.com Федорова Сардана Аркадьевна – доктор биологических наук, заведующая научно-исследовательской лаборатории молекулярной биологии, ФГАОУ ВПО Северо-Восточный федеральный университет имени М.К. Аммосова, e-mail: sa.fedorova@s-vfu.ru, https://orcid.org/0000-0002-6952-3868 Information about the authors Vyacheslav M. Nikolaev – Cand. Sc. (Med.), Chief Research Officer, Head of the Department for Studying the Adaptation Mechanisms, Yakut Science Centre of Complex Medical Problems, e-mail: Nikolaev1126@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-4490-8910 Sargylana I. Sofronova – Cand. Sc. (Med.), Senior Research Officer, Head of the Scientific and Organizational Department, Yakut Science Centre of Complex Medical Problems, e-mail: sara2208@mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-0010-9850 Konstantin M. Rumyantsev – Junior Research Officer at the Department for Studying the Adaptation Mechanisms, Yakut Science Centre of Complex Medical Problems, e-mail: tzeentch1993@mail.ru Zinaida N. Alekseeva – Junior Research Officer at the Department of Chronic Non-Infectious Diseases, Yakut Science Centre of Complex Medical Problems, e-mail: gzinaida@mail.ru Nadezhda K. Chirikova – Cand. Sc. (Pharm.), Deputy Director of the Institute of Natural Sciences, North-Eastern Federal University named after M.K. Ammosov. e-mail: hofnung@ mail.ru, https://orcid.org/0000-0003-1130-3253 Natalia A. Sleptsova – Cand. Sc. (Agriculture), Associate Professor at the Department of Agronomy and Chemistry, Yakutsk State Agricultural Academy, e-mail: ysaa.ykt@gmail.com Sardana A. Fedorova – Dr. Sc. (Biol.), Head of the Research Laboratory of Molecular Biology, North-Eastern Federal University named after M.K. Ammosov, e-mail: sa.fedorova@s-vfu. ru, https://orcid.org/0000-0002-6952-3868 Вклад авторов Николаев В.М. – написание статьи. Софронова С.И., Слепцова Н.А. – сбор материала. Румянцев К.М., Алексеева З.Н. , Чирикова Н.К. – выполнение анализов. Федорова С.А. – научное консультирование. Статья получена:18.02.2019. Статья принята: 10.02.2020. Статья опубликована: 26.04.2020. Received: 18.02.2019. Accepted: 10.02.2020. Published: 26.04.2020.
ActA BiomedicA ScientificA, 2020, Vol. 5, N 2 12 Morphology, physiology and pathophysiology МОРФОЛОГИЯ, ФИЗИОЛОГИЯ И ПАТОФИЗИОЛОГИЯ Morphology, physiology and pathophysiology DOI: 10.29413/ABS.2020-5.2.2 Определение уровня меланина в коже детей методом мексаметрии Шамрикова В.А. 1, Сорокина Е.Д. 1, Дубровская Э.В. 3, Крахалева Ю.А. 1, Курнявкина Е.А. 2, Криницына Ю.М. 1, 4, Якубович А.И. 5, Сергеева И.Г. 1 1 ФГАОУ ВО «Новосибирский национальный исследовательский государственный университет» (630090, г. Новосибирск, ул. Пирогова, 2, Россия); 2 АО Санаторий «Краснозерский» (632901, Новосибирская область, Краснозерский район, п. Кайгородский, ул. Санаторий, 1, Россия); 3 МАОУ г. Новосибирска «Лицей № 9» (630132, г. Новосибирск, ул. 1905 года, 41, Россия); 4 ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины» (630117, г. Новосибирск, ул. Тимакова, 2, Россия); 5ФГБОУ ВО «Иркутский государственный медицинский университет» Минздрава России (664003, г. Иркутск, ул. Красного Восстания, 1, Россия) Автор, ответственный за переписку: Сорокина Елена Дмитриевна, e-mail: afonnikovadoc@gmail.com Резюме Обоснование. Высокая предрасположенность к получению солнечных ожогов в детском возрасте, и связанный с этим повышенный риск развития злокачественных новообразований кожи уменьшаются с возрастом. Существует вероятность взаимосвязи описанной тенденции и динамического изменения функционального состояния меланоцитов и меланина с увеличением возраста. Цель: оценить уровень содержания меланина в коже у детей разных возрастных групп. Материалы и методы. В исследовании участвовали 78 детей в возрасте от 7 до 17 лет. Методом случайной выборки были сформированы три группы наблюдений: группа 1 – 28 детей в возрасте от 7 до 9 лет, группа 2 – 25 детей в возрасте от 10 до 12 лет, группа 3 – 25 детей в возрасте от 16 до 17 лет. Критерием включения являлось отсутствие кожных заболеваний, ассоциированных с нарушением пигментации кожи. Уровень меланина в коже измеряли методом мексаметрии в области лица, туловища и конечностей. Результаты. Наибольший уровень меланина был зарегистрирован в области предплечий и голеней во всех возрастных группах (до 28,3 ± 10,8, 23,3 ± 8,6 и 26,7 ± 10,6 у.е. в группах 1, 2 и 3 соответственно), наименьший – в области щёк и груди (до 8,0 ± 4,7, 4,4 ± 3,4 и 9,5 ± 4,1 у.е. в группах 1, 2 и 3 соответственно). Установлена зависимость между уровнем меланина в коже и анатомической областью, зависимости уровня меланина от пола и возраста не наблюдали. Заключение. Уровень меланина в коже у детей в возрасте от 7 до 17 лет индивидуален у каждого ребёнка и зависит от локализации участка кожи, но не зависит от пола и возраста. При этом характер распределения меланина в коже стабилен и не изменяется с течением времени. Ключевые слова: детский возраст, меланин, здоровая кожа Для цитирования: Шамрикова В.А., Сорокина Е.Д., Дубровская Э.В., Крахалева Ю.А., Курнявкина Е.А., Криницына Ю.М., Якубович А.И., Сергеева И.Г. Определение уровня меланина в коже детей методом мексаметрии. Acta biomedica scientifica. 2020; 5(2): 12-16. doi: 10.29413/ABS.2020-5.2.2 Mexametric Assessment of Melanin Level in Children’s Skin Shamrikova V.A. 1, Sorokina E.D. 1, Dubrovskaya E.V. 3, Krakhaleva Y.A. 1, Kurniavkina E.A. 2, Krinitsyna Y.M. 1, 4, Yakubovich A.I. 5, Sergeeva I.G. 1 1 Novosibirsk State University (Pirogova str. 2, Novosibirsk 630090, Russian Federation); 2 Sanatorium Krasnozersky (Sanatorium str. 1, Kaigorodsky village, Krasnozersky district 632901, Novosibirsk Region, Russian Federation); 3 Lyceum N 9 (1905 year str. 41, Novosibirsk 632901, Russian Federation); 4 Federal Research Center of Fundamental and Translational Medicine (Timakova str. 2, Novosibirsk 630117, Novosibirsk Region, Russian Federation); 5 Irkutsk State Medical University (Krasnogo Vosstania str. 1, Irkutsk 664003, Russian Federation) Corresponding author: Elena D. Sorokina, e-mail: afonnikovadoc@gmail.com abstract Background. High predisposition to sunburn in childhood and associated increased risk of malignant skin tumors development, decrease with age. There is a likelihood of a relationship between the described trends and dynamic age related changes in functional state of melanocytes and melanin. Aim: to evaluate the level of melanin in the skin in children of different age.